Zinkfingernukleasen

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Zinkfingernukleasen (ZFN) sind künstlich hergestellte Restriktionsenzyme. Sie enthalten eine Zinkfingerdomäne, die an DNA bindet, und eine Nukleasedomäne, welche die DNA schneidet.[1] Die Zinkfingerdomäne kann so gebaut werden, dass sie eine bestimmte DNA-Sequenz erkennt. Das bedeutet, dass man mit ZFN ein komplexes Genom an einer ganz bestimmten Stelle schneiden kann und so einen zielgerichteten Einbau von fremder DNA ermöglicht.

Nukleasedomäne[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]

Zinkfingernukleasen enthalten in der Regel die unspezifisch schneidende Nukleasedomäne des Typ-IIS-Restriktionsenzyms FokI[2]. Diese Restriktionsdomäne ist nur aktiv, wenn sie dimerisiert vorliegt[3], weswegen zwei unterschiedlich gebaute ZFN-Monomere benötigt werden, um die DNA-Zielsequenz zu schneiden. Bei Standard-ZFN ist die Restriktionsdomäne über ihr N-terminales Ende an die DNA-bindende Zinkfingerdomäne gebunden. Damit die Nukleasedomänen dimerisieren und schneiden können, müssen die beiden unterschiedlichen ZFN-Monomere an die beiden unterschiedlichen Strängen der DNA binden, wobei ihre C-Termini einen bestimmten Abstand zueinander haben müssen.[4]

Mehrere verschiedene Protein-Engineering-Techniken werden eingesetzt, um einerseits die Enzymaktivität und andererseits Affinität und Spezifität der Zinkfingerdomäne zu steigern. So wurde beispielsweise „Gerichtete Evolution“ angewandt, um FokI-Varianten zu erzeugen, die eine erhöhte Nukleaseaktivität aufweisen.[5] Zudem wurde strukturelles Design eingesetzt, um mittels Austausch geladener Aminosäuren im Dimerisierungsinterface der Nukleasedomäne sogenannte "obligat-heterodimere" FokI-Varianten zu erzeugen, die eine deutlich erhöhte Restriktionsspezifität aufweisen.[6][7][8][9]

DNA-Bindedomäne[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]

Die DNA-Bindedomäne enthält typischerweise zwischen drei und sechs unterschiedliche Zinkfingermotive, wobei jedes individuelle Zinkfingermotiv 3 bp erkennt. Binden die Zinkfingerdomänen perfekt an ihre Erkennungssequenz, so reichen drei Zinkfinger pro ZFN-Monomer aus, um einen bestimmten Lokus in einem komplexen Genom spezifisch zu erkennen. Mehrere verschiedene Strategien wurden entwickelt, um Cys2His2 Zinkfinger herzustellen, die an gewünschte Sequenzen binden.[10] Diese Methoden umfassen sowohl das modulare Zusammenbauen (siehe unten) als auch Selektionsstrategien, wie das Phagendisplay, das Yeast-1-Hybrid-Systeme, das Bacterial one-hybrid System, das Bacterial two-hybrid System oder zelluläre Selektionssysteme.

Die einfachste Methode neue Zinkfingerarrays zu erzeugen ist die Kombination von Zinkfingern mit bekannter Spezifität. Der am weitesten verbreitete modulare Zusammenbauprozess ist das Kombinieren von drei unterschiedlichen Zinkfingern, die jeweils 3 bp erkennen, zu einem neuen Zinkfingerarray, der 9 bp erkennt. Der Hauptnachteil dieser Methode ist, dass sich die Spezifität eines Zinkfingers je nach benachbartem Zinkfinger im Array verändern kann, weshalb "kontextabhängige" Selektionsstrategien üblicherweise Zinkfingerarrays mit einer höheren Spezifität erzeugen.[11]

Anwendungen[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]

Zinkfingernukleasen sind nützlich, um die Genome vieler Pflanzen- und Tierarten zielgerichtet zu verändern, einschließlich der Genome von Arabidopsis[12][13], Tabak[14][15], Soja[16], Mais[17], Fruchtfliege[18], Fadenwurm[19], Platynereis dumerilii[20], Seeigel[21], Seidenraupe[22], Zebrafisch[23], Frosch[24], Maus[25], Ratte[26], Kaninchen[27], Schwein[28], Rind[29] und verschiedener Typen von Säugerzellen[30]. Darüber hinaus wurden ZFN in vivo in einem Mausmodell für Hämophilie angewandt[31] und eine klinischen Studie hat ergeben, dass autologe CD4-positive T-Zellen mit durch Zinkfingernukleasen ausgeschalteten CCR5-Gen sicher sind, um als Behandlung für HIV/AIDS dienen zu können [32]. Alternativ zu Zinkfingernukleasen können Transcription Activator-like Effector Nucleases und die CRISPR/Cas-Methode verwendet werden.

Einzelnachweise[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]

  1. T. Cathomen, J. K. Joung: Zinc-finger nucleases: the next generation emerges. In: Mol. Ther.. 16, Nr. 7, Juli 2008, S. 1200–7. doi:10.1038/mt.2008.114. PMID 18545224.
  2. Y. G. Kim, J. Cha, S. Chandrasegaran: Hybrid restriction enzymes: zinc finger fusions to Fok I cleavage domain. In: Proc Natl Acad Sci USA. 93, Nr. 3, 1996, S. 1156–60. doi:10.1073/pnas.93.3.1156. PMID 8577732. PMC 40048 (freier Volltext).
  3. J. Bitinaite, D. A. Wah, A. K. Aggarwal, I. Schildkraut: FokI dimerization is required for DNA cleavage. In: Proc Natl Acad Sci USA. 95, Nr. 18, 1998, S. 10570–5. doi:10.1073/pnas.95.18.10570. PMID 9724744. PMC 27935 (freier Volltext).
  4. Eva-Maria Händel, Stephen Alwin, Toni Cathomen: Expanding or Restricting the Target Site Repertoire of Zinc-finger Nucleases: The Inter-domain Linker as a Major Determinant of Target Site Selectivity. In: Molecular Therapy. 17, 2008, S. 104–111, doi:10.1038/mt.2008.233.
  5. doi:10.1016/j.jmb.2010.04.060
  6. DOI:10.1038/nbt1317
  7. Jeffrey C Miller, Michael C Holmes u. a.: An improved zinc-finger nuclease architecture for highly specific genome editing. In: Nature Biotechnology. 25, 2007, S. 778–785, doi:10.1038/nbt1319.
  8. Yannick Doyon, Thuy D Vo u. a.: Enhancing zinc-finger-nuclease activity with improved obligate heterodimeric architectures. In: Nature Methods. 8, 2010, S. 74–79, doi:10.1038/nmeth.1539.
  9. DOI:10.1016/j.jmb.2010.10.043
  10. C. O. Pabo, E. Peisach, R. A. Grant: Design and Selection of Novel Cys2His2 Zinc Finger Proteins. In: Annu. Rev. Biochem.. 70, 2001, S. 313–340. doi:10.1146/annurev.biochem.70.1.313. PMID 11395410.
  11. Cherie L Ramirez, Jonathan E Foley u. a.: Unexpected failure rates for modular assembly of engineered zinc fingers. In: Nature Methods. 5, 2008, S. 374–375, doi:10.1038/nmeth0508-374.
  12. F. Zhang, M. L. Maeder, E. Unger-Wallace, J. P. Hoshaw, D. Reyon, M. Christian, X. Li, C. J. Pierick, D. Dobbs, T. Peterson, J. K. Joung, D. F. Voytas: High frequency targeted mutagenesis in Arabidopsis thaliana using zinc finger nucleases. In: Proceedings of the National Academy of Sciences. 107, Nr. 26, 2010, S. 12028–12033. doi:10.1073/pnas.0914991107.
  13. K. Osakabe, Y. Osakabe, S. Toki: Site-directed mutagenesis in Arabidopsis using custom-designed zinc finger nucleases. In: Proceedings of the National Academy of Sciences. 107, Nr. 26, 2010, S. 12034–12039. doi:10.1073/pnas.1000234107.
  14. C. Q. Cai, Y. Doyon, W. M. Ainley, J. C. Miller, R. C. Dekelver, E. A. Moehle, J. M. Rock, Y. L. Lee, R. Garrison, L. Schulenberg, R. Blue, A. Worden, L. Baker, F. Faraji, L. Zhang, M. C. Holmes, E. J. Rebar, T. N. Collingwood, B. Rubin-Wilson, P. D. Gregory, F. D. Urnov, J. F. Petolino: Targeted transgene integration in plant cells using designed zinc finger nucleases. In: Plant Molecular Biology. 69, Nr. 6, 2008, ISSN 0167-4412, S. 699–709. doi:10.1007/s11103-008-9449-7. PMID 19112554.
  15. J. A. Townsend, D. A. Wright, R. J. Winfrey, F. Fu, M. L. Maeder, J. K. Joung, D. F. Voytas: High-frequency modification of plant genes using engineered zinc-finger nucleases. In: Nature. 459, Nr. 7245, 2009, S. 442–445. bibcode:2009Natur.459..442T. doi:10.1038/nature07845. PMID 19404258. PMC 2743854 (freier Volltext).
  16. S. J. Curtin, F. Zhang, J. D. Sander, W. J. Haun, C. Starker, N. J. Baltes, D. Reyon, E. J. Dahlborg, M. J. Goodwin, A. P. Coffman, D. Dobbs, J. K. Joung, D. F. Voytas, R. M. Stupar: Targeted Mutagenesis of Duplicated Genes in Soybean with Zinc-Finger Nucleases. In: Plant Physiology. 156, Nr. 2, 2011, S. 466–473. doi:10.1104/pp.111.172981. PMID 21464476. PMC 3177250 (freier Volltext).
  17. V.K. Shukla, Y. Doyon, J.C. Miller: Precise genome modification in the crop species Zea mays using zinc-finger nucleases. In: Nature. 459, Nr. 7245, May 2009, S. 437–41. bibcode:2009Natur.459..437S. doi:10.1038/nature07992. PMID 19404259.
  18. M. Bibikova, K. Beumer, J. Trautman, D. Carroll: Enhancing Gene Targeting with Designed Zinc Finger Nucleases. In: Science. 300, Nr. 5620, 2003, S. 764. doi:10.1126/science.1079512. PMID 12730594.
  19. A. J. Wood, T. -W. Lo, B. Zeitler, C. S. Pickle, E. J. Ralston, A. H. Lee, R. Amora, J. C. Miller, E. Leung, X. Meng, L. Zhang, E. J. Rebar, P. D. Gregory, F. D. Urnov, B. J. Meyer: Targeted Genome Editing Across Species Using ZFNs and TALENs. In: Science. 333, Nr. 6040, 2011, S. 307. doi:10.1126/science.1207773. PMID 21700836. PMC 3489282 (freier Volltext).
  20. Martin Gühmann, Huiyong Jia, Nadine Randel, Csaba Verasztó, Luis A. Bezares-Calderón, Nico K. Michiels, Shozo Yokoyama, Gáspár Jékely: Spectral Tuning of Phototaxis by a Go-Opsin in the Rhabdomeric Eyes of Platynereis. In: Current Biology. 25, Nr. 17, August 2015, S. 2265–2271. doi:10.1016/j.cub.2015.07.017.
  21. H. Ochiai, K. Fujita, K. I. Suzuki, M. Nishikawa, T. Shibata, N. Sakamoto, T. Yamamoto: Targeted mutagenesis in the sea urchin embryo using zinc-finger nucleases. In: Genes to Cells. 15, Nr. 8, 2010, S. no. doi:10.1111/j.1365-2443.2010.01425.x. PMID 20604805.
  22. Y. Takasu, I. Kobayashi, K. Beumer, K. Uchino, H. Sezutsu, S. Sajwan, D. Carroll, T. Tamura, M. Zurovec: Targeted mutagenesis in the silkworm Bombyx mori using zinc finger nuclease mRNA injection. In: Insect Biochemistry and Molecular Biology. 40, Nr. 10, 2010, S. 759–765. doi:10.1016/j.ibmb.2010.07.012. PMID 20692340.
  23. S.C. Ekker: Zinc Finger–Based Knockout Punches for Zebrafish Genes. In: Zebrafish. 5, Nr. 2, 2008, S. 1121–3. doi:10.1089/zeb.2008.9988. PMID 18554175. PMC 2849655 (freier Volltext).
  24. J. J. Young, J. M. Cherone, Y. Doyon, I. Ankoudinova, F. M. Faraji, A. H. Lee, C. Ngo, D. Y. Guschin, D. E. Paschon, J. C. Miller, L. Zhang, E. J. Rebar, P. D. Gregory, F. D. Urnov, R. M. Harland, B. Zeitler: Efficient targeted gene disruption in the soma and germ line of the frog Xenopus tropicalis using engineered zinc-finger nucleases. In: Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, Nr. 17, 2011, S. 7052–7057. doi:10.1073/pnas.1102030108.
  25. A. D. Goldberg, L. A. Banaszynski, K. M. Noh, P. W. Lewis, S. J. Elsaesser, S. Stadler, S. Dewell, M. Law, X. Guo, X. Li, D. Wen, A. Chapgier, R. C. Dekelver, J. C. Miller, Y. L. Lee, E. A. Boydston, M. C. Holmes, P. D. Gregory, J. M. Greally, S. Rafii, C. Yang, P. J. Scambler, D. Garrick, R. J. Gibbons, D. R. Higgs, I. M. Cristea, F. D. Urnov, D. Zheng, C. D. Allis: Distinct Factors Control Histone Variant H3.3 Localization at Specific Genomic Regions. In: Cell. 140, Nr. 5, 2010, S. 678–691. doi:10.1016/j.cell.2010.01.003. PMID 20211137. PMC 2885838 (freier Volltext).
  26. A. M. Geurts, G. J. Cost, Y. Freyvert, B. Zeitler, J. C. Miller, V. M. Choi, S. S. Jenkins, A. Wood, X. Cui, X. Meng, A. Vincent, S. Lam, M. Michalkiewicz, R. Schilling, J. Foeckler, S. Kalloway, H. Weiler, S. Menoret, I. Anegon, G. D. Davis, L. Zhang, E. J. Rebar, P. D. Gregory, F. D. Urnov, H. J. Jacob, R. Buelow: Knockout Rats via Embryo Microinjection of Zinc-Finger Nucleases. In: Science. 325, Nr. 5939, 2009, S. 433–433. doi:10.1126/science.1172447. PMID 19628861. PMC 2831805 (freier Volltext).
  27. T. Flisikowska, I. S. Thorey, S. Offner, F. Ros, V. Lifke, B. Zeitler, O. Rottmann, A. Vincent, L. Zhang, S. Jenkins, H. Niersbach, A. J. Kind, P. D. Gregory, A. E. Schnieke, J. Platzer: Efficient Immunoglobulin Gene Disruption and Targeted Replacement in Rabbit Using Zinc Finger Nucleases. In: PLoS ONE. 6, Nr. 6, 2011, S. e21045. doi:10.1371/journal.pone.0021045. PMID 21695153. PMC 3113902 (freier Volltext).
  28. J. Hauschild, B. Petersen, Y. Santiago, A. -L. Queisser, J. W. Carnwath, A. Lucas-Hahn, L. Zhang, X. Meng, P. D. Gregory, R. Schwinzer, G. J. Cost, H. Niemann: Efficient generation of a biallelic knockout in pigs using zinc-finger nucleases. In: Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, Nr. 29, 2011, S. 12013. doi:10.1073/pnas.1106422108.
  29. S. Yu, J. Luo, Z. Song, F. Ding, Y. Dai, N. Li: Highly efficient modification of beta-lactoglobulin (BLG) gene via zinc-finger nucleases in cattle. In: Cell Research. 2011. doi:10.1038/cr.2011.153.
  30. D. Carroll: Zinc-finger Nucleases as Gene Therapy Agents. In: Gene Therapy. 15, Nr. 22, 2008, S. 1463–1468. doi:10.1038/gt.2008.145. PMID 18784746. PMC 2747807 (freier Volltext).
  31. H. Li, V. Haurigot, Y. Doyon, T. Li, S. Y. Wong, A. S. Bhagwat, N. Malani, X. M. Anguela, R. Sharma, L. Ivanciu, S. L. Murphy, J. D. Finn, F. R. Khazi, S. Zhou, D. E. Paschon, E. J. Rebar, F. D. Bushman, P. D. Gregory, M. C. Holmes, K. A. High: In vivo genome editing restores haemostasis in a mouse model of haemophilia. In: Nature. 475, Nr. 7355, 2011, S. 217–221. doi:10.1038/nature10177. PMID 21706032. PMC 3152293 (freier Volltext).
  32. Pablo Tebas, David Stein, Winson W. Tang, Ian Frank, Shelley Q. Wang, Gary Lee, S. Kaye Spratt, Richard T. Surosky, Martin A. Giedlin, Geoff Nichol, Michael C. Holmes, Philip D. Gregory, Dale G. Ando, Michael Kalos, Ronald G. Collman, Gwendolyn Binder-Scholl, Gabriela Plesa, Wei-Ting Hwang, Bruce L. Levine, Carl H. June: Gene Editing of CCR5 in Autologous CD4 T Cells of Persons Infected with HIV. In: New England Journal of Medicine. 370, Nr. 10, 6. März 2014, S. 901–910. doi:10.1056/NEJMoa1300662. PMID 24597865.

Weblinks[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]