„CRISPR/Cas-Methode“ – Versionsunterschied

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== Eigenschaften ==
== Eigenschaften ==
Das CRISPR/Cas-System entstammt einem adaptiven antiviralen Abwehrmechanismus aus Bakterien, dem [[CRISPR]].<ref>R. Sorek, V. Kunin, P. Hugenholtz: ''CRISPR–a widespread system that provides acquired resistance against phages in bacteria and archaea.'' In: ''Nature reviews. Microbiology.'' Band 6, Nummer 3, März 2008, S.&nbsp;181–186, {{ISSN|1740-1534}}. {{DOI|10.1038/nrmicro1793}}. PMID 18157154.</ref> Die [[Endonuklease]] ''Cas9'' (von {{enS}} ''CRISPR-associated'', veraltet auch ''Cas5, Csn1'' oder ''Csx12'') kann eine bestimmte RNA-Sequenz (''crRNA repeat'', Teilsequenz GUUUUAGAGCU(A/G)UG(C/U)UGUUUUG)<ref>G. Gasiunas, R. Barrangou, P. Horvath, V. Siksnys: ''Cas9-crRNA ribonucleoprotein complex mediates specific DNA cleavage for adaptive immunity in bacteria.'' In: ''Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America.'' Band 109, Nummer 39, September 2012, S.&nbsp;E2579–E2586, {{ISSN|1091-6490}}. {{DOI|10.1073/pnas.1208507109}}. PMID 22949671. {{PMC|3465414}}.</ref> binden. Wird an diese RNA-Sequenz eine weitere zu einer DNA-Zielsequenz komplementäre RNA-Sequenz angefügt und zu einer zur DNA-Sequenz analogen RNA (''tracrRNA'', von engl. ''trans-acting CRISPR RNA'') hinzugegeben, schneidet ''Cas9'' die DNA nahe der Zielsequenz. Die beiden RNA-Sequenzen können auch in einem einzelnen, [[Hybridisierung (Molekularbiologie)|selbsthybridisierenden]] RNA-Strang untergebracht werden.<ref>M. Jinek, K. Chylinski, I. Fonfara, M. Hauer, J. A. Doudna, E. Charpentier: ''A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity.'' In: ''Science (New York, N.Y.).'' Band 337, Nummer 6096, August 2012, S.&nbsp;816–821, {{ISSN|1095-9203}}. {{DOI|10.1126/science.1225829}}. PMID 22745249.</ref> Durch das ''Cas9'' mit den entsprechenden RNA-Sequenzen kann sequenzspezifisch doppelsträngige, teilweise komplementäre DNA geschnitten werden, wodurch gezielte [[Deletion]]en erzeugt werden können. Durch [[Transformation (Genetik)|Transformation]] oder [[Transfektion]] von einem [[Vektor (Gentechnik)|Vektor]] können Lebewesen mit dem CRISPR/Cas-System ergänzt werden, die es natürlich nicht besitzen, z. B. manche Bakterienstämme,<ref name="pmid23360965">W. Jiang, D. Bikard, D. Cox, F. Zhang, L. A. Marraffini: ''RNA-guided editing of bacterial genomes using CRISPR-Cas systems.'' In: ''Nature biotechnology.'' Band 31, Nummer 3, März 2013, S.&nbsp;233–239, {{ISSN|1546-1696}}. {{DOI|10.1038/nbt.2508}}. PMID 23360965. {{PMC|3748948}}.</ref> [[Bäckerhefe]],<ref name="pmid23460208">J. E. DiCarlo, J. E. Norville, P. Mali, X. Rios, J. Aach, G. M. Church: ''Genome engineering in Saccharomyces cerevisiae using CRISPR-Cas systems.'' In: ''Nucleic acids research.'' Band 41, Nummer 7, April 2013, S.&nbsp;4336–4343, {{ISSN|1362-4962}}. {{DOI|10.1093/nar/gkt135}}. PMID 23460208. {{PMC|3627607}}.</ref> [[Taufliege]]n,<ref name="pmid2408874">G. W. Thickbroom, F. L. Mastaglia: ''Cerebral events preceding self-paced and visually triggered saccades. A study of presaccadic potentials.'' In: ''Electroencephalography and clinical neurophysiology.'' Band 62, Nummer 4, Juli 1985, S.&nbsp;277–289, {{ISSN|0013-4694}}. PMID 2408874.</ref> [[Zebrabärbling]],<ref name="pmid23360964">W. Y. Hwang, Y. Fu, D. Reyon, M. L. Maeder, S. Q. Tsai, J. D. Sander, R. T. Peterson, J. R. Yeh, J. K. Joung: ''Efficient genome editing in zebrafish using a CRISPR-Cas system.'' In: ''Nature biotechnology.'' Band 31, Nummer 3, März 2013, S.&nbsp;227–229, {{ISSN|1546-1696}}. {{DOI|10.1038/nbt.2501}}. PMID 23360964. {{PMC|3686313}}.</ref> [[Mäuse]]n,<ref name="pmid23643243">H. Wang, H. Yang, C. S. Shivalila, M. M. Dawlaty, A. W. Cheng, F. Zhang, R. Jaenisch: ''One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering.'' In: ''Cell.'' Band 153, Nummer 4, Mai 2013, S.&nbsp;910–918, {{ISSN|1097-4172}}. {{DOI|10.1016/j.cell.2013.04.025}}. PMID 23643243. {{PMC|3969854}}.</ref> und [[Mensch]]en.<ref name="pmid23287722">P. Mali, L. Yang, K. M. Esvelt, J. Aach, M. Guell, J. E. DiCarlo, J. E. Norville, G. M. Church: ''RNA-guided human genome engineering via Cas9.'' In: ''Science (New York, N.Y.).'' Band 339, Nummer 6121, Februar 2013, S.&nbsp;823–826, {{ISSN|1095-9203}}. {{DOI|10.1126/science.1232033}}. PMID 23287722. {{PMC|3712628}}.</ref>
Das CRISPR/Cas-System entstammt einem adaptiven antiviralen Abwehrmechanismus aus Bakterien, dem [[CRISPR]].<ref>R. Sorek, V. Kunin, P. Hugenholtz: ''CRISPR–a widespread system that provides acquired resistance against phages in bacteria and archaea.'' In: ''Nature reviews. Microbiology.'' Band 6, Nummer 3, März 2008, S.&nbsp;181–186, {{ISSN|1740-1534}}. {{DOI|10.1038/nrmicro1793}}. PMID 18157154.</ref> Es existieren mehr als 40 verschiedene ''Cas''-Proteinfamilien.<ref>D. H. Haft, J. Selengut, E. F. Mongodin, K. E. Nelson: ''A guild of 45 CRISPR-associated (Cas) protein families and multiple CRISPR/Cas subtypes exist in prokaryotic genomes.'' In: ''PLoS computational biology.'' Band 1, Nummer 6, November 2005, S.&nbsp;e60, {{ISSN|1553-7358}}. {{DOI|10.1371/journal.pcbi.0010060}}. 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Band 41, Nummer 7, April 2013, S.&nbsp;4336–4343, {{ISSN|1362-4962}}. {{DOI|10.1093/nar/gkt135}}. PMID 23460208. {{PMC|3627607}}.</ref> [[Taufliege]]n,<ref name="pmid2408874">G. W. Thickbroom, F. L. Mastaglia: ''Cerebral events preceding self-paced and visually triggered saccades. A study of presaccadic potentials.'' In: ''Electroencephalography and clinical neurophysiology.'' Band 62, Nummer 4, Juli 1985, S.&nbsp;277–289, {{ISSN|0013-4694}}. PMID 2408874.</ref> [[Zebrabärbling]],<ref name="pmid23360964">W. Y. Hwang, Y. Fu, D. Reyon, M. L. Maeder, S. Q. Tsai, J. D. Sander, R. T. Peterson, J. R. Yeh, J. K. Joung: ''Efficient genome editing in zebrafish using a CRISPR-Cas system.'' In: ''Nature biotechnology.'' Band 31, Nummer 3, März 2013, S.&nbsp;227–229, {{ISSN|1546-1696}}. {{DOI|10.1038/nbt.2501}}. PMID 23360964. {{PMC|3686313}}.</ref> [[Mäuse]]n,<ref name="pmid23643243">H. Wang, H. Yang, C. S. Shivalila, M. M. Dawlaty, A. W. Cheng, F. Zhang, R. 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== Anwendungen ==
== Anwendungen ==

Version vom 20. Juni 2014, 09:58 Uhr

Das CRISPR/Cas-System ist eine biochemische Methode zur Erzeugung von gentechnisch veränderten Organismen.

Eigenschaften

Das CRISPR/Cas-System entstammt einem adaptiven antiviralen Abwehrmechanismus aus Bakterien, dem CRISPR.[1] Es existieren mehr als 40 verschiedene Cas-Proteinfamilien.[2] Die Endonuklease Cas9 (von englisch CRISPR-associated, veraltet auch Cas5, Csn1 oder Csx12) kann eine bestimmte RNA-Sequenz (crRNA repeat, Sequenz GUUUUAGAGCU(A/G)UG(C/U)UGUUUUG)[3] binden. Die crRNA repeat-Sequenz bildet eine RNA-Sekundärstrukur.[4] Als zweiten Teil besitzt die crRNA eine Sequenz, welche komplementär zur Ziel-DNA ist und an die Ziel-DNA bindet (crRNA spacer). Wird an eine crRNA repeat-Sequenz anstatt der natürlich vorkommenden crRNA spacer-Sequenz eine andere, zu einer DNA-Zielsequenz komplementäre RNA-Sequenz angefügt und zu einer zur DNA-Sequenz analogen RNA (tracrRNA, von engl. trans-acting CRISPR RNA) hinzugegeben, schneidet Cas9 die DNA nahe der Zielsequenz. Die beiden RNA-Sequenzen können auch in einem einzelnen, selbsthybridisierenden RNA-Strang untergebracht werden.[5] Durch das Cas9 mit den entsprechenden RNA-Sequenzen kann sequenzspezifisch doppelsträngige, teilweise komplementäre DNA geschnitten werden, wodurch gezielte Deletionen erzeugt werden können. Durch Transformation oder Transfektion von einem Vektor können Lebewesen mit dem CRISPR/Cas-System ergänzt werden, die es natürlich nicht besitzen, z. B. manche Bakterienstämme,[6] Bäckerhefe,[7] Taufliegen,[8] Zebrabärbling,[9] Mäusen,[10] und Menschen.[11]

Anwendungen

Blockade der Genexpression durch eine Cas9-Mutante (CRISPRi).

Das CRISPR/Cas-System kann unter anderem zum Genome Editing und damit auch zur Gentherapie verwendet werden.[12][13] Durch Doppelstrangbrüche kann die Häufigkeit einer homologen Rekombination deutlich erhöht werden,[14] wodurch ein sequenzspezifischer Schnitt durch Cas9 auch zum Einfügen von DNA-Sequenzen (z. B. im Zuge der Gentherapie) verwendet werden kann, sofern die anschließend einzufügende DNA an beiden Enden jeweils eine zur jeweiligen Zielsequenz überlappende Sequenz aufweist.[15] Die Änderung mehrerer DNA-Zielsequenzen wird als Multiplex Genome Editing bezeichnet.

Mit dem CRISPR/Cas-System wurden Bakteriophagen-resistente Bakterienstämme erzeugt, durch eine adaptive Resistenz bei Hinzufügen entsprechender RNA bei industriell wichtigen Bakterien, z. B. in der Milch- oder Weinindustrie. Durch ein mutiertes Cas ohne funktionsfähige Endonuklease kann ein DNA-bindendes Protein erzeugt werden, welches analog zur RNAi zu einem Knockdown von endogenen Genen führt, z. B. durch Transformation mit einem Plasmid, aus dem Cas9 und eine CRISPR-RNA transkribiert wird (CRISPRi).[16] Anhand charakteristischer CRISPR-Sequenzen können CRISPR/Cas enthaltende Bakterienstämme identifiziert werden (spoligotyping). Ein grün fluoreszierendes Protein kann mit einer Cas-Mutante als Fusionsprotein zur Markierung von DNA-Sequenzen (auch repetitiver Sequenzen wie Telomere) verwendet werden.[17] Durch das CRISPR/Cas-System konnte die Herstellungzeit von transgenen Tieren wie transgenen Mäusen von bis zu zwei Jahren auf wenige Wochen verkürzt werden.[10]

Einzelnachweise

  1. R. Sorek, V. Kunin, P. Hugenholtz: CRISPR–a widespread system that provides acquired resistance against phages in bacteria and archaea. In: Nature reviews. Microbiology. Band 6, Nummer 3, März 2008, S. 181–186, ISSN 1740-1534. doi:10.1038/nrmicro1793. PMID 18157154.
  2. D. H. Haft, J. Selengut, E. F. Mongodin, K. E. Nelson: A guild of 45 CRISPR-associated (Cas) protein families and multiple CRISPR/Cas subtypes exist in prokaryotic genomes. In: PLoS computational biology. Band 1, Nummer 6, November 2005, S. e60, ISSN 1553-7358. doi:10.1371/journal.pcbi.0010060. PMID 16292354. PMC 1282333 (freier Volltext).
  3. G. Gasiunas, R. Barrangou, P. Horvath, V. Siksnys: Cas9-crRNA ribonucleoprotein complex mediates specific DNA cleavage for adaptive immunity in bacteria. In: Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. Band 109, Nummer 39, September 2012, S. E2579–E2586, ISSN 1091-6490. doi:10.1073/pnas.1208507109. PMID 22949671. PMC 3465414 (freier Volltext).
  4. V. Kunin, R. Sorek, P. Hugenholtz: Evolutionary conservation of sequence and secondary structures in CRISPR repeats. In: Genome biology. Band 8, Nummer 4, 2007, S. R61, ISSN 1465-6914. doi:10.1186/gb-2007-8-4-r61. PMID 17442114. PMC 1896005 (freier Volltext).
  5. M. Jinek, K. Chylinski, I. Fonfara, M. Hauer, J. A. Doudna, E. Charpentier: A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity. In: Science (New York, N.Y.). Band 337, Nummer 6096, August 2012, S. 816–821, ISSN 1095-9203. doi:10.1126/science.1225829. PMID 22745249.
  6. W. Jiang, D. Bikard, D. Cox, F. Zhang, L. A. Marraffini: RNA-guided editing of bacterial genomes using CRISPR-Cas systems. In: Nature biotechnology. Band 31, Nummer 3, März 2013, S. 233–239, ISSN 1546-1696. doi:10.1038/nbt.2508. PMID 23360965. PMC 3748948 (freier Volltext).
  7. J. E. DiCarlo, J. E. Norville, P. Mali, X. Rios, J. Aach, G. M. Church: Genome engineering in Saccharomyces cerevisiae using CRISPR-Cas systems. In: Nucleic acids research. Band 41, Nummer 7, April 2013, S. 4336–4343, ISSN 1362-4962. doi:10.1093/nar/gkt135. PMID 23460208. PMC 3627607 (freier Volltext).
  8. G. W. Thickbroom, F. L. Mastaglia: Cerebral events preceding self-paced and visually triggered saccades. A study of presaccadic potentials. In: Electroencephalography and clinical neurophysiology. Band 62, Nummer 4, Juli 1985, S. 277–289, ISSN 0013-4694. PMID 2408874.
  9. W. Y. Hwang, Y. Fu, D. Reyon, M. L. Maeder, S. Q. Tsai, J. D. Sander, R. T. Peterson, J. R. Yeh, J. K. Joung: Efficient genome editing in zebrafish using a CRISPR-Cas system. In: Nature biotechnology. Band 31, Nummer 3, März 2013, S. 227–229, ISSN 1546-1696. doi:10.1038/nbt.2501. PMID 23360964. PMC 3686313 (freier Volltext).
  10. a b H. Wang, H. Yang, C. S. Shivalila, M. M. Dawlaty, A. W. Cheng, F. Zhang, R. Jaenisch: One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. In: Cell. Band 153, Nummer 4, Mai 2013, S. 910–918, ISSN 1097-4172. doi:10.1016/j.cell.2013.04.025. PMID 23643243. PMC 3969854 (freier Volltext).
  11. P. Mali, L. Yang, K. M. Esvelt, J. Aach, M. Guell, J. E. DiCarlo, J. E. Norville, G. M. Church: RNA-guided human genome engineering via Cas9. In: Science (New York, N.Y.). Band 339, Nummer 6121, Februar 2013, S. 823–826, ISSN 1095-9203. doi:10.1126/science.1232033. PMID 23287722. PMC 3712628 (freier Volltext).
  12. Y. Wang, Z. Li, J. Xu, B. Zeng, L. Ling, L. You, Y. Chen, Y. Huang, A. Tan: The CRISPR/Cas System mediates efficient genome engineering in Bombyx mori. In: Cell research. Band 23, Nummer 12, Dezember 2013, S. 1414–1416, ISSN 1748-7838. doi:10.1038/cr.2013.146. PMID 24165890. PMC 3847576 (freier Volltext).
  13. T. R. Sampson, D. S. Weiss: Exploiting CRISPR/Cas systems for biotechnology. In: BioEssays : news and reviews in molecular, cellular and developmental biology. Band 36, Nummer 1, Januar 2014, S. 34–38, ISSN 1521-1878. doi:10.1002/bies.201300135. PMID 24323919.
  14. N. Rudin, E. Sugarman, J. E. Haber: Genetic and physical analysis of double-strand break repair and recombination in Saccharomyces cerevisiae. In: Genetics. Band 122, Nummer 3, Juli 1989, S. 519–534, ISSN 0016-6731. PMID 2668114. PMC 1203726 (freier Volltext).
  15. P. D. Hsu, E. S. Lander, F. Zhang: Development and Applications of CRISPR-Cas9 for Genome Engineering. In: Cell. Band 157, Nummer 6, Juni 2014, S. 1262–1278, ISSN 1097-4172. doi:10.1016/j.cell.2014.05.010. PMID 24906146. PDF.
  16. M. H. Larson, L. A. Gilbert, X. Wang, W. A. Lim, J. S. Weissman, L. S. Qi: CRISPR interference (CRISPRi) for sequence-specific control of gene expression. In: Nature protocols. Band 8, Nummer 11, November 2013, S. 2180–2196, ISSN 1750-2799. doi:10.1038/nprot.2013.132. PMID 24136345. PMC 3922765 (freier Volltext).
  17. B. Chen, L. A. Gilbert, B. A. Cimini, J. Schnitzbauer, W. Zhang, G. W. Li, J. Park, E. H. Blackburn, J. S. Weissman, L. S. Qi, B. Huang: Dynamic Imaging of Genomic Loci in Living Human Cells by an Optimized CRISPR/Cas System. In: Cell. Band 155, Nummer 7, Dezember 2013, S. 1479–1491, ISSN 1097-4172. doi:10.1016/j.cell.2013.12.001. PMID 24360272.