„Carotinoide“ – Versionsunterschied

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Bei Fischen, Amphibien und Reptilien entsteht die Farbe von Haut und Schuppen dadurch, dass Licht mit drei verschiedenen Typen von [[Chromatophore (Zelle)|Chromatophoren]] (Pigmentzellen, Farbstoffbildende Zellen) interagiert, den Melanophoren, Xanthophoren und Iridophoren. Die Xanthophoren enthalten neben [[Pteridin]]en und Flavinen auch aus der Nahrung aufgenommene Carotine. Diese drei Farbstofftypen sind für gelbliche oder rote Farben verantwortlich.<ref name="gamble">Tony Gamble, Jodi L. Aherns, and Virginia Card: {{Webarchiv|url=http://www.tc.umn.edu/~gambl007/publications/Gamble_etal_2006_Tyrosinase.pdf |wayback=20120127221530 |text=''Tyrosinase Activity in the Skin of Three Strains of Albino Gecko (Eublepharis macularius).'' |archiv-bot=2019-08-29 05:58:27 InternetArchiveBot }} Gekko 5: S. 39–44. (PDF; 767&nbsp;kB).</ref><ref name="xantophore">J. Odenthal, K. Rossnagel, P. Haffter, R. N. Kelsh, E. Vogelsang, M. Brand, F. J. van Eeden, M. Furutani-Seiki, M. Granato, M. Hammerschmidt, C. P. Heisenberg, Y. J. Jiang, D. A. Kane, M. C. Mullins, C. Nüsslein-Volhard: ''Mutations affecting xanthophore pigmentation in the zebrafish, Danio rerio.'' In: ''[[Development]].'' Band 123, Dezember 1996, S.&nbsp;391–398, PMID 9007257. </ref><ref name="Frost-Mason">Frost-Mason SK, Mason KA: ''What insights into vertebrate pigmentation has the axolotl model system provided?'' Int J Dev Biol. 1996 Aug;40(4):685–693, PMID 8877441.</ref>
Bei Fischen, Amphibien und Reptilien entsteht die Farbe von Haut und Schuppen dadurch, dass Licht mit drei verschiedenen Typen von [[Chromatophore (Zelle)|Chromatophoren]] (Pigmentzellen, Farbstoffbildende Zellen) interagiert, den Melanophoren, Xanthophoren und Iridophoren. Die Xanthophoren enthalten neben [[Pteridin]]en und Flavinen auch aus der Nahrung aufgenommene Carotine. Diese drei Farbstofftypen sind für gelbliche oder rote Farben verantwortlich.<ref name="gamble">Tony Gamble, Jodi L. Aherns, and Virginia Card: {{Webarchiv|url=http://www.tc.umn.edu/~gambl007/publications/Gamble_etal_2006_Tyrosinase.pdf |wayback=20120127221530 |text=''Tyrosinase Activity in the Skin of Three Strains of Albino Gecko (Eublepharis macularius).'' |archiv-bot=2019-08-29 05:58:27 InternetArchiveBot }} Gekko 5: S. 39–44. (PDF; 767&nbsp;kB).</ref><ref name="xantophore">J. Odenthal, K. Rossnagel, P. Haffter, R. N. Kelsh, E. Vogelsang, M. Brand, F. J. van Eeden, M. Furutani-Seiki, M. Granato, M. Hammerschmidt, C. P. Heisenberg, Y. J. Jiang, D. A. Kane, M. C. Mullins, C. Nüsslein-Volhard: ''Mutations affecting xanthophore pigmentation in the zebrafish, Danio rerio.'' In: ''[[Development]].'' Band 123, Dezember 1996, S.&nbsp;391–398, PMID 9007257. </ref><ref name="Frost-Mason">Frost-Mason SK, Mason KA: ''What insights into vertebrate pigmentation has the axolotl model system provided?'' Int J Dev Biol. 1996 Aug;40(4):685–693, PMID 8877441.</ref>

=== Dinoflagellaten und Bakterien ===

Bei den [[Dinoflagellaten]], den einzelligen Algen, die im Süß-und Salzwasser vorkommen und zum [[Phytoplankton]] gehören, trägt [[Peridinin]] zur Pigmentierung bei. Dieses Carotinoid bildet mit Chlorophyll a einen wasserlöslichen [[Lichtsammelkomplex]]. Dieser Peridinin-Chlorophyll-a-Protein-Komplex in dem Verhältnis von 4:1 Peridinin/ Chlorophyll, sammelt bei der [[Fotosynthese]] Licht in Form von Energie und überträgt diese auf das zentrale Chlorophyllatom.<ref>Donatella Carbonera, Marilena Di Valentin, Riccardo Spezia, and Alberto Mezzetti:''The Unique Photophysical Properties of the Peridinin-Chlorophyll-a-Protein''. In: ''[[Curr Protein Pept Sci.]] 15(4), Juni 2014, S. 332–350, {{ DOI|10.2174/1389203715666140327111139}}, PMID 24678668,{{PMC|4030626}}.</ref>
Für die in nährstoffreichen Gewässern durch starke Vermehrung der Dinoflagelatten hervorgerufene rote, toxische Algenblüte, bekannt als [[red tide]], ist Peridinin verantwortlich.<ref>Furuichi N1, Hara H, Osaki T, Nakano M, Mori H, Katsumura S.:''Stereocontrolled total synthesis of a polyfunctional carotenoid, peridinin.''In.:''[[J Org Chem.]] 69 (23), 12. November 2004, S. 7949-59,{{DOI|10.1021/jo048852v}},PMID 15527275.</ref>
Weitere wichtige photosynthetisch aktive Carotinoide sind [[Fucoxanthin]] und deren Derivate, die als [[akzessorische Pigmente]] bei der Photosynthese mitwirken.<ref>T. Polívka, RG Hiller, D. Zigmantas,V. Sundström. ''Excited state dynamics of the carotenoid peridinin.''In:''[[Femtochemistry and Femtobiology]], Dezember 2004, S.445-452, {{DOI|10.1016/B978-044451656-5/50087-6}}.</ref>

Verschiedene gykosylierte und nicht glykosylierte Carotinoide kommen in den Zellmembranen von Bakterien vor und schützen diese vor photooxidativen Zerstörung durch Radikale und UV-Licht. Bei dem marinen ''[[Micrococcus luteus]]'' ist das schwach gelbe Carotinoid [[Sarcinaxanthin]] vertreten, ein glycosyliertes zyklische C50 Xanthophyll, das in seiner Struktur dem im Mais vorkommenden Farbstoff, dem [[Zeaxanthin]] sehr ähnelt.<ref>Netzer R, Stafsnes MH, Andreassen T, Goksøyr A, Bruheim P, Brautaset T.:
''Biosynthetic pathway for γ-cyclic sarcinaxanthin in ''Micrococcus luteus'': heterologous expression and evidence for diverse and multiple catalytic functions of C(50) carotenoid cyclases''. In: ''[[J. Bacteriol]] 192, 21 November 2010, S 56.88-99, {{DOI| 10.1128/JB.00724-10}}.</ref><ref> R. Netzer, M. H. Stafsnes u. a.: ''Biosynthetic pathway for γ-cyclic sarcinaxanthin in Micrococcus luteus: heterologous expression and evidence for diverse and multiple catalytic functions of C(50) carotenoid cyclases''.''In:''[[Journal of bacteriology]], Band 192, (21), November 2010, S. 5688–5699,{{DOI|10.1128/JB.00724-10}},PMID 20802040,{{PMC|2953688}}(freier Volltext).</ref>
Das gelbe Carotinoid [[Decaprenoxanthin]] kommt neben dem [[Sarcinaxanthin]] in den Corynebakterien vor. Typische Vertretern sind hier: ''[[Corynebacterkum glutamicum]]'', ''Corynebacterium callunae'' und ''C. marinum''.<ref>Heider SA1, Peters-Wendisch P, Wendisch VF:''Carotenoid biosynthesis and overproduction in ''Corynebacterium glutamicum''.''In.''[[BMC Microbiol.]],12 (198), 10. Sepember 2012, {{DOI|10.1186/1471-2180-12-198}}.</ref><ref>Henke NA, Heider SAE, Hannibal S, Wendisch VF, Peters-Wendisch P:''
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Bei ''[[Staphylococcus aureus]]'' ist für die gelborangene Färbung [[Staphyloxanthin]] verantwortlich, das neben der Stabilisierung der Membran, der antioxidativen Wirkung auch zur Pathogenität dieses Erregers beiträgt.<ref>A. Popov, A. S. Kaprel'iants, D. N. Ostrovskiĭ, V. V. Ignatov: ''Study of the membranes of pigment-free mutant of ''Staphylococcus aureus''. ''In:'' [[Biokhimiia]] 41 (6), Juli 1976, S. 1116–1120, PMID 1027489.</ref><ref> Chia-I Liu, George Y. Liu, Yongcheng Song, Fenglin Yin, Mary E. Hensler, Wen-Yin Jeng, Victor Nizet, Andrew H.-J. Wang, Eric Oldfield:'' A Cholesterol Biosynthesis Inhibitor Blocks Staphylococcus aureus Virulence''.''In: [[Science]] 319 (5868), März 2008, S. 1391–1394,{{DOI|10.1126/science.1153018}}, PMC 2747771 (freier Volltext).</ref>


== Funktion bei der Photosynthese ==
== Funktion bei der Photosynthese ==

Version vom 21. Januar 2020, 23:02 Uhr

Carotinoide bewirken eine gelbliche bis rötliche Färbung nicht nur bei Karotten. Als fettlösliche Pigmente in oberflächennahen Anteilen von Früchten, Blüten, Federkleid oder einem Chitinpanzer prägen sie das Aussehen verschiedener Pflanzen und Tiere. Auch das Eigelb und Lebensmittel wie Käse oder Margarine verdanken ihre charakteristische Farbe dem Vorliegen von Carotinoiden – gelegentlich erst nach Zugabe als Lebensmittelfarbstoff.

Als Carotinoide, auch Karotinoide,[1] wird eine umfangreiche Klasse natürlich vorkommender fettlöslicher Pigmente (Lipochrome) bezeichnet, denen chemisch als Grundgerüst ein Tetraterpen gemeinsam ist.

Ihr System von konjugierten Doppelbindungen absorbiert Licht kurzer Wellenlängen und verleiht je nach Anzahl, Lage und Seitenkette im Carotinoid diesem einen gelblichen bis rötlichen Farbton. Die mittlerweile über 800 bekannten Carotinoide werden in die Carotine und die sauerstoffhaltigen Xanthophylle unterschieden. Carotinoide gehören zu den Isoprenoiden.[2]

Vorkommen

Vorkommen in Lebensmitteln[3]
Carotinoid (E-Nummer) Vorkommen
Astaxanthin (E 161j) Garnele, Hummer, Lachs
β-Carotin (E 160a) Möhre, Spinat, Aprikose, Einkorn
Canthaxanthin (E 161g) Garnele, Hummer, Pfifferling
Capsanthin (E 160c) Paprika
Capsorubin Paprika
Cryptoxanthin Orange
Lutein (E 161b) Grünkohl, Spinat, Eidotter
Luteoxanthin Orange
Lycopin (E 160d) Tomate, Wassermelone
Zeaxanthin (E 161h) Mais

Carotinoide kommen zunächst in salzliebenden Archaeen (Halobakterien), in Bakterien, in den Chromoplasten und Plastiden von Pflanzen und in manchen Pilzen vor. Diese Organismen sind in der Lage, Tetraterpene de novo zu synthetisieren. Weiterhin treten sie in verschiedenen Tieren auf, die mit ihrer Nahrung farbstoffhaltiges Pflanzenmaterial aufnehmen. So finden sich Carotinoide dann in Schneckenhäusern, Muschelschalen oder Panzern sowie auch in Federn und Eigelb von Vögel oder beim Menschen in Haut und Netzhaut. Abgesehen von einzelnen Ausnahmen wie manchen Arten von Blattläusen[4] und Spinnmilben[5] besitzen tierische Organismen keine Gene für eine Carotinoid-Synthese.

Einige Carotinoide sind in der EU zugelassen als Lebensmittelzusatzstoffe; sie tragen die E-Nummern E 160a bis E 160g und E 161a bis E 161h.[6] Manche dienen der farblichen Gestaltung von Produkten.

Struktur

Lycopin, ein Carotin
β-Carotin, ein Carotin
Lutein, ein Xanthophyll

Typische Carotinoide haben die Grundstruktur von Tetraterpenen, aus acht Isopreneinheiten aufgebaute Verbindungen, und enthalten somit 40 C-Atome. Die ungesättigten Kohlenwasserstoffketten können an einem Ende oder beiden cyclisiert sein (Ionon-Ringe) oder nicht, wie beim Lycopin mit der Summenformel C40H56. Abwandlungen bestehen daneben in De-/Hydrierungen und den verschiedenen Arten von Oxidationsprodukten. Carotinoide werden unterteilt in die beiden Hauptgruppen

Die Maxima der Absorptionsspektren von Carotinoiden liegen meist bei Wellenlängen um 400 bis 500 Nanometer.

Bedeutung als Provitamin A

Retinol – kein Carotinoid, sondern ein Vitamin A

Tiere und Menschen sind nicht zur de-novo-Synthese von Vitamin A fähig und müssen daher ihren Bedarf über die Nahrung decken. Während Fleischfresser Vitamin A überwiegend in Form von Retinylestern oder Retinol aufnehmen, nutzen Pflanzenfresser bestimmte Carotinoide als Vorstufe. Von etwa 50 Carotinoiden ist eine Provitamin-A-Aktivität bekannt, sie können im biologischen Körper zu Vitamin A umgewandelt werden. Von diesen hat β-Carotin die größte Aktivität.[7]

Physiologie beim Menschen

Der Mensch kann zur Vitamin-A-Bedarfsdeckung sowohl Retinol und Retinylester als auch Provitamin A nutzen. Die Aktivität von Nahrungscarotinoiden als Provitamin A drückt man mit Hilfe sogenannter Retinoläquivalente aus, wobei etwa 6 mg β-Carotin und 12 mg gemischte Carotinoide einem Retinoläquivalent entsprechen. Den Carotinoiden wird auch sonst große gesundheitliche Bedeutung zugesprochen. Im menschlichen Körper spielen 6 Carotinoide eine wesentliche Rolle: β-Carotin, α-Carotin, Lycopin, β-Cryptoxanthin, Lutein und Zeaxanthin. Die meisten von ihnen haben die Funktion von Antioxidantien. Dadurch sollen sie vielen Erkrankungen wie Krebs, Arteriosklerose, Rheuma, Alzheimer und Parkinson, Grauem Star oder der Hautalterung vorbeugen.

Von allen Nahrungscarotinoiden hat Lycopin (z. B. in Tomaten) das größte antioxidative Potenzial und gilt als wirksamster Schutz vor dem besonders reaktiven Singulett-Sauerstoff. Lycopin hemmt auch das Wachstum von Tumorzellen effektiver als α- oder β-Carotin.

Die antikanzerogene Wirkung der Carotinoide ergibt sich theoretisch auch aus ihrer Eigenschaft, eine gut funktionierende Kommunikation zwischen den Zellen herstellen zu können. Insbesondere β-Carotin, Cryptoxanthin und Canthaxanthin, regen den Austausch zwischen den Zellen an, indem sie die Synthese von Connexin bewirken. Diese Verbindung ist maßgeblich an der Bildung der Gap Junctions beteiligt, deren Anzahl bei Krebszellen vermindert ist. Carotinoide sollen jedoch nur in der Prävention eingesetzt werden, da sie in der eigentlichen Krebstherapie oder in der Vorbeugung gegen Rückfälle keine Wirkung zeigen. Besonders bei bereits an Krebs erkrankten Patienten sei mit hochdosierten Präparaten Vorsicht geboten.

In Leber, Augen, Haut und Fettgewebe liegen bestimmte Carotinoide in deutlich höherer Konzentration vor als in anderen Körpergeweben. In der Netzhaut des Auges, im sogenannten gelben Fleck (Macula), kommen die Carotinoide Lutein und Zeaxanthin in größeren Mengen vor. Diese Carotinoide wirken hier vermutlich als natürliche Schutzmechanismen, da die Netzhaut mit ihren besonders oxidationsempfindlichen mehrfach ungesättigten Fettsäuren besonders anfällig für den Angriff von freien Radikalen ist.

Für Carotinoide gilt, wie für andere sekundäre Pflanzenstoffe, dass sie nicht in Form von isolierten, hochkonzentrierten Präparaten aufgenommen werden sollten, sondern im natürlichen Verbund mit anderen Nahrungsinhaltsstoffen. Die Einnahme hochdosierter Präparate birgt sogar Gefahren. Eine regelrechte Vergiftung mit Carotinoiden ist zwar nicht möglich, β-Carotin-Supplemente können aber möglicherweise das Krebsrisiko erhöhen.[3]

Farbe von Haut, Schuppen und Federn

Männchen der Kohlmeise (Parus major)
Bachforelle (Salmo trutta f. fario)
Im Unkenreflex ihre Warnfärbung präsentierende Gelbbauchunke (Bombina variegata)

Vögel

Neben Melaninen spielen bei Vögeln für die Gefiederfärbung auch verschiedene Carotinoide eine Rolle. Mit der Nahrung aufgenommen, metabolisch abgewandelt und in die wachsenden Federn eingelagert, können sie zu gelblichen bis rötlichen Farbtönen führen. Auffälligere Beispiele für carotinoidgefärbtes Gefieder unter den Singvögeln sind die Blaumeise (Cyanistes caeruleus), die Kohlmeise (Parus major), die Schafstelze (Motacilla flava), der Pirol (Oriolus oriolus) oder der Buntspecht. Die rote Brust des Rotkehlchens (Erithacus rubecula) dagegen wird durch rotbräunliches Phäomelanin verursacht. Bei Gänsevögeln sind Carotinoide als Federpigmente selten und bisher nur bei der (wahrscheinlich ausgestorbenen) Rosenkopfente und der australischen Rosenohrente spektroskopisch nachgewiesen.[8] Wenn die Nahrung zu wenig oder keine Carotinoide enthält, sind die entsprechenden Federbereiche nach der nächsten Mauser weiß. Mutationen, die zu Störungen der Carotinoidanreicherung in der Feder führen, sind selten, solche mit veränderter Melanineinlagerung häufiger.[9]

Fische, Amphibien und Reptilien

Bei Fischen, Amphibien und Reptilien entsteht die Farbe von Haut und Schuppen dadurch, dass Licht mit drei verschiedenen Typen von Chromatophoren (Pigmentzellen, Farbstoffbildende Zellen) interagiert, den Melanophoren, Xanthophoren und Iridophoren. Die Xanthophoren enthalten neben Pteridinen und Flavinen auch aus der Nahrung aufgenommene Carotine. Diese drei Farbstofftypen sind für gelbliche oder rote Farben verantwortlich.[10][11][12]

Dinoflagellaten und Bakterien

Bei den Dinoflagellaten, den einzelligen Algen, die im Süß-und Salzwasser vorkommen und zum Phytoplankton gehören, trägt Peridinin zur Pigmentierung bei. Dieses Carotinoid bildet mit Chlorophyll a einen wasserlöslichen Lichtsammelkomplex. Dieser Peridinin-Chlorophyll-a-Protein-Komplex in dem Verhältnis von 4:1 Peridinin/ Chlorophyll, sammelt bei der Fotosynthese Licht in Form von Energie und überträgt diese auf das zentrale Chlorophyllatom.[13] Für die in nährstoffreichen Gewässern durch starke Vermehrung der Dinoflagelatten hervorgerufene rote, toxische Algenblüte, bekannt als red tide, ist Peridinin verantwortlich.[14] Weitere wichtige photosynthetisch aktive Carotinoide sind Fucoxanthin und deren Derivate, die als akzessorische Pigmente bei der Photosynthese mitwirken.[15]

Verschiedene gykosylierte und nicht glykosylierte Carotinoide kommen in den Zellmembranen von Bakterien vor und schützen diese vor photooxidativen Zerstörung durch Radikale und UV-Licht. Bei dem marinen Micrococcus luteus ist das schwach gelbe Carotinoid Sarcinaxanthin vertreten, ein glycosyliertes zyklische C50 Xanthophyll, das in seiner Struktur dem im Mais vorkommenden Farbstoff, dem Zeaxanthin sehr ähnelt.[16][17] Das gelbe Carotinoid Decaprenoxanthin kommt neben dem Sarcinaxanthin in den Corynebakterien vor. Typische Vertretern sind hier: Corynebacterkum glutamicum, Corynebacterium callunae und C. marinum.[18][19] Bei Staphylococcus aureus ist für die gelborangene Färbung Staphyloxanthin verantwortlich, das neben der Stabilisierung der Membran, der antioxidativen Wirkung auch zur Pathogenität dieses Erregers beiträgt.[20][21]

Funktion bei der Photosynthese

Die primäre Aufgabe der Carotinoide bei der pflanzlichen Photosynthese ist es, Chlorophyllmoleküle vor Zerstörung durch Photooxidation zu schützen. Dabei fungieren sie als photoprotektive Agenzien, die die Pflanzenzelle durch nonphotochemisches Quenching vor reaktiven Sauerstoffspezies schützen. Außerdem erweitern sie das Absorptionsspektrum der photosynthetischen Organismen im blau-grünen Spektralbereich und sind teilweise auch am Energietransfer innerhalb der Antennenkomplexe und Photosysteme beteiligt. Dort arbeiten sie als Lichterntepigmente im Lichtsammelkomplex, die Photonen absorbieren und die Energie ans photosynthetische Reaktionszentrum weiterleiten. Man bezeichnet sie deshalb zusammen mit den Phycobilinen als akzessorische Pigmente der Photosynthese. Im Xanthophyllzyklus, der in den Chloroplasten stattfindet, wird überschüssige Lichtstrahlung absorbiert und in unschädliche Wärme umgewandelt.

Schätzungen über die jährliche Carotinoidsynthese durch Pflanzen belaufen sich auf 100 Millionen Tonnen im Jahr.

Die Zuteilung der Carotinoide zu den sekundären Pflanzenstoffen ist somit nicht ganz korrekt, da ihnen, entgegen der Definition der sekundären Pflanzenmetaboliten, klare primäre Funktionen in der Photosynthese zugeordnet werden können.

Technische Bedeutung und Synthese

Von den ca. 700 bekannten natürlichen Carotinoiden besitzen einige eine größere technische Bedeutung und werden im industriellen Maßstab synthetisiert: β-Carotin, Astaxanthin, Canthaxanthin, 8'-Apo-β-carotinsäureethylester, 8'-Apo-β-carotinaldehyd, Citranaxanthin, Lycopin und Zeaxanthin.[22] Die technische Herstellung der naturidentischen Carotinoide wurde zuerst bei der Hoffmann-La Roche AG und bei der BASF SE entwickelt. Die Verfahren sind komplex und beinhalten als universelle Verknüpfungsmethoden:

Da häufig (E,Z)-Isomerengemische entstehen, schließt sich oft eine photochemische Isomerisierung (Umwandlung) der meist unerwünschten (Z)-Form in die gewünschte (E)-Form an.[23]

Biotechnologische Herstellung

Es ist möglich, Gene zur Biosynthese von Carotinoiden in Pilze, Bakterien und Pflanzen einzubringen oder den Gehalt geschwindigkeitsbestimmender Enzymen zu erhöhen, um die Carotinoidproduktion zu steigern. Der Hefepilz Phaffia rhodozyma kann so genetisch verändert werden, dass er mehr Astaxanthin und auch artfremde Carotinoide herstellt. Ebenso ist es möglich, die Anreicherung von Zeaxanthin in Kartoffelknollen deutlich zu steigern.[24] Speziell für Entwicklungsländer wurde die transgene Reissorte mit dem Spitznamen Goldener Reis entwickelt, um der Vitamin-A-Unterversorgung entgegenzuwirken.

Verwendung als Farbstoff

Küchenfertiger Lachs, als Steak geschnitten

Carotinoide werden häufig als Futtermittelzusatzstoff zugesetzt, um beispielsweise die Farbe des Fleisches beim Zuchtlachs zu beeinflussen, das bei Fütterung mit Fischmehlbrocken in Gefangenschaft ohne Zusatz grau wäre. Wildlachse nehmen den Farbstoff normalerweise durch Verzehr kleiner Krustentiere auf. Auch diese stellen ihn nicht selbst her, sondern fressen kleine Algen, die das Xanthophyll Astaxanthin enthalten.[25]

Astaxanthin, ein Xanthophyll

Aus ähnlichem Grund werden Flamingos im Zoo zusätzlich mit Carotinoiden gefüttert, denn sie können dort keine carotinoidhaltigen Krebse und Algen aufnehmen und verlören sonst ihre Gefiederfärbung. Ebenfalls kann die Färbung des Eidotters durch Zusätze im Futtermittel für Hühner beeinflusst werden, insbesondere, wenn die Tiere kaum Gräser oder Mais finden, die natürliche Carotinoide enthalten. Lebensmittel, die direkt mit Carotinoiden eingefärbt werden, sind zum Beispiel Margarine und Fruchtsäfte.[26]

Einzelnachweise

  1. ↑ duden.de: Karotinoid, chemisch fachsprachlich Carotinoid.
  2. ↑ Zdzislaw Z. E. Sikorski: Chemical and Functional Properties of Food Lipids. CRC Press, 2010, ISBN 978-1-420-03199-7, S. 41.
  3. ↑ a b UGB: Carotinoide: Rot und gelb halten fit
  4. ↑ N. Moran, T. Jarvik: Lateral transfer of genes from fungi underlies carotenoid production in aphids. In: Science. Band 328. Jahrgang, 2010, S. 624–627, doi:10.1126/science.1187113, PMID 20431015.
  5. ↑ B. Altincicek, J. Kovacs, N. Gerardo: Horizontally transferred fungal carotenoid genes in the two-spotted spider mite Tetranychus urticae. In: Biology Letters. Band 8. Jahrgang, Nr. 2, 2012, S. 253–257, doi:10.1098/rsbl.2011.0704, PMID 21920958, PMC 3297373 (freier Volltext).
  6. ↑ Wissenschaft-Online-Lexika: Eintrag zu Xanthophylle im Lexikon der Ernährung, abgerufen am 7. März 2009
  7. ↑ Thomas Arnhold: 1.4.1 Vitamin-A-Quellen In: Untersuchungen zum Metabolismus von Vitamin A / Retinoiden im Hinblick auf eine Risikoabschätzung ihrer teratogenen Wirkung beim Menschen; S. 6–7; Dissertation; Braunschweig, 7. März 2000. Volltext
  8. ↑ Daniel B. Thomas and Helen F. James: Non-destructive Raman spectroscopy confirms carotenoid-pigmented plumage in the Pink-headed Duck In: Volume 133, 2016, S. 147–154 doi:10.1642/AUK-15-152.1 pdf
  9. ↑ Hein van Grouw: Not every white bird is an albino: sense and nonsense about colour aberrations in birds. Dutch Birding, Vol. 28, no. 2, 2006 S. 79–89 (PDF; 458 kB).
  10. ↑ Tony Gamble, Jodi L. Aherns, and Virginia Card: Tyrosinase Activity in the Skin of Three Strains of Albino Gecko (Eublepharis macularius). (Memento des Originals vom 27. Januar 2012 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.tc.umn.edu Gekko 5: S. 39–44. (PDF; 767 kB).
  11. ↑ J. Odenthal, K. Rossnagel, P. Haffter, R. N. Kelsh, E. Vogelsang, M. Brand, F. J. van Eeden, M. Furutani-Seiki, M. Granato, M. Hammerschmidt, C. P. Heisenberg, Y. J. Jiang, D. A. Kane, M. C. Mullins, C. Nüsslein-Volhard: Mutations affecting xanthophore pigmentation in the zebrafish, Danio rerio. In: Development. Band 123, Dezember 1996, S. 391–398, PMID 9007257.
  12. ↑ Frost-Mason SK, Mason KA: What insights into vertebrate pigmentation has the axolotl model system provided? Int J Dev Biol. 1996 Aug;40(4):685–693, PMID 8877441.
  13. ↑ Donatella Carbonera, Marilena Di Valentin, Riccardo Spezia, and Alberto Mezzetti:The Unique Photophysical Properties of the Peridinin-Chlorophyll-a-Protein. In: Curr Protein Pept Sci. 15(4), Juni 2014, S. 332–350, doi:10.2174/1389203715666140327111139, PMID 24678668,PMC 4030626 (freier Volltext).
  14. ↑ Furuichi N1, Hara H, Osaki T, Nakano M, Mori H, Katsumura S.:Stereocontrolled total synthesis of a polyfunctional carotenoid, peridinin.In.:J Org Chem. 69 (23), 12. November 2004, S. 7949-59,doi:10.1021/jo048852v,PMID 15527275.
  15. ↑ T. Polívka, RG Hiller, D. Zigmantas,V. Sundström. Excited state dynamics of the carotenoid peridinin.In:Femtochemistry and Femtobiology, Dezember 2004, S.445-452, doi:10.1016/B978-044451656-5/50087-6.
  16. ↑ Netzer R, Stafsnes MH, Andreassen T, Goksøyr A, Bruheim P, Brautaset T.: Biosynthetic pathway for γ-cyclic sarcinaxanthin in Micrococcus luteus: heterologous expression and evidence for diverse and multiple catalytic functions of C(50) carotenoid cyclases. In: J. Bacteriol 192, 21 November 2010, S 56.88-99, doi:10.1128/JB.00724-10.
  17. ↑ R. Netzer, M. H. Stafsnes u. a.: Biosynthetic pathway for γ-cyclic sarcinaxanthin in Micrococcus luteus: heterologous expression and evidence for diverse and multiple catalytic functions of C(50) carotenoid cyclases.In:Journal of bacteriology, Band 192, (21), November 2010, S. 5688–5699,doi:10.1128/JB.00724-10,PMID 20802040,PMC 2953688 (freier Volltext)(freier Volltext).
  18. ↑ Heider SA1, Peters-Wendisch P, Wendisch VF:Carotenoid biosynthesis and overproduction in Corynebacterium glutamicum.In.BMC Microbiol.,12 (198), 10. Sepember 2012, doi:10.1186/1471-2180-12-198.
  19. ↑ Henke NA, Heider SAE, Hannibal S, Wendisch VF, Peters-Wendisch P: Isoprenoid Pyrophosphate-Dependent Transcriptional Regulation of Carotenogenesis in Corynebacterium glutamicum. In:Microbiol., 24, 8. April 2017, S. 633 doi:10.3389/fmicb.2017.00633.
  20. ↑ A. Popov, A. S. Kaprel'iants, D. N. Ostrovskiĭ, V. V. Ignatov: Study of the membranes of pigment-free mutant of Staphylococcus aureus. In: Biokhimiia 41 (6), Juli 1976, S. 1116–1120, PMID 1027489.
  21. ↑ Chia-I Liu, George Y. Liu, Yongcheng Song, Fenglin Yin, Mary E. Hensler, Wen-Yin Jeng, Victor Nizet, Andrew H.-J. Wang, Eric Oldfield: A Cholesterol Biosynthesis Inhibitor Blocks Staphylococcus aureus Virulence.In: Science 319 (5868), März 2008, S. 1391–1394,doi:10.1126/science.1153018, PMC 2747771 (freier Volltext).
  22. ↑ Bernd Schäfer: Naturstoffe der chemischen Industrie, Elsevier GmbH, Spektrum Verlag, 2007, S. 407–434, ISBN 978-3-8274-1614-8.
  23. ↑ Karl Meyer: Carotinoide – Bedeutung und technische Synthesen: Farbenfrohe Antioxidantien. In: Chemie in unserer Zeit. Band 36, Nr. 3, 2002, S. 178–192, doi:10.1002/1521-3781(200206)36:3<178::AID-CIUZ178>3.0.CO;2-#.
  24. ↑ Goethe Universität Frankfurt am Main, Institut für Molekulare Biowissenschaften AK Sandmann: Carotinoid Biosynthese in Pflanzen und Mikroorganismen (Memento des Originals vom 24. Juni 2009 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.uni-frankfurt.de.
  25. ↑ farbimpulse.de - Wie die Farbe in den (Zucht-)Lachs kommt, 24. September 2008.
  26. ↑ Barbara Reye: Wie mehr Farbe auf den Teller und in den Zoo kommt, 10. Februar 2009.

Weblinks

Commons: Carotinoide – Sammlung von Bildern, Videos und Audiodateien
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