„Methylotrophe Mikroben“ – Versionsunterschied

aus Wikipedia, der freien Enzyklopädie
Zur Navigation springen Zur Suche springen
[ungesichtete Version][gesichtete Version]
Inhalt gelöscht Inhalt hinzugefügt
Ergänzte und aktualisierte Übersetzung von en:Methylotroph
Zeile 1: Zeile 1:
'''Methylotrophe Organismen''' (kurz '''Methylotrophe''') sind eine vielfältige Gruppe von [[Mikroorganismen]], die [[Reduktion (Chemie)|reduzierte]] [[Chemische Verbindung|Verbindungen]] mit einem (einzigen) [[Kohlenstoff]]-Atom (C<sub>1</sub>-Verbindungen) wie [[Methanol]] (CH<sub>3</sub>OH), [[Methan]] (CH<sub>4</sub>), [[Formiat]] oder [[Kohlenmonoxid]] (CO) als Kohlenstoffquelle für ihr Wachstum nutzen können ([[Assimilation (Biologie)|Assimilation]]). Dabei sind Verbindungen mit mehreren Kohlenstoff-Atomen eingeschlossen, wenn diese keine direkten Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindungen<ref group="A.">Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindungen: [[Kovalente Bindung]]en C–C, C=C oder C≡C.</ref> enthalten, wie beispielsweise [[Dimethylether]] (H<sub>3</sub>C-O-CH<sub>3</sub> bzw. gleichwertig (CH<sub>3</sub>)<sub>2</sub>O) und [[Dimethylamin]] (CH<sub>3</sub>)<sub>2</sub>NH).
{{Short description|Bacteria that use one-carbon compounds as main carbon source}}
Mitglieder dieser Gruppe sind beispielsweise Mikroorganismen, die reduzierte Ein-Kohlenstoff-Verbindungen mit Hilfe von [[Kohlendioxid]] (CO<sub>2</sub>) über den [[Ribulose-1,5-bisphosphat|Ribulose-Biphosphat]]-[[Stoffwechselweg|Weg]] ([[Calvin-Zyklus]]) zu assimilieren.<ref name="Anthony1975"/><ref name="Anthony1982"/><ref name="SdW_Methylotroph"/>
'''Methylotrophs''' are a diverse group of [[microorganism]]s that can use [[redox|reduced]] one-carbon compounds, such as [[methanol]] or [[methane]], as the carbon source for their growth; and multi-carbon compounds that contain no carbon-carbon bonds, such as [[dimethyl ether]] and [[dimethylamine]]. This group of microorganisms also includes those capable of assimilating reduced one-carbon compounds by way of [[carbon dioxide]] using the [[ribulose bisphosphate]] pathway.<ref>Anthony, C. "The Biochemistry of Methylotrophs". Academic press, 1982, p. 2-3</ref> These organisms should not be confused with [[methanogen]]s which on the contrary produce methane as a by-product from various one-carbon compounds such as carbon dioxide.
Some methylotrophs can degrade the [[greenhouse gas]] [[methane]], and in this case they are called [[methanotroph]]s. The abundance, purity, and low price of methanol compared to commonly used sugars make methylotrophs competent organisms for production of [[amino acid]]s, vitamins, recombinant proteins, [[single-cell protein]]s, [[co-enzyme]]s and [[cytochrome]]s.


Diese Organismen sind nicht mit den [[Methanogene]]n (Methanbildnern) zu verwechseln, die im Gegenteil Methan als Nebenprodukt aus verschiedenen Ein-Kohlenstoff-Verbindungen wie Kohlendioxid ''erzeugen''.
== Metabolism ==
Einige methylotrophe Organismen können das [[Treibhausgas]] Methan dagegen ''abbauen'' und werden in diesem speziellen Fall auch als [[methanotrophe|methanotrophe Organismen]] bezeichnet.<ref name="SdW_Methanotroph"/>
[[File:Common methylotrophic metabolic pathways.svg|thumb|400px|General steps of methylotrophic metabolism displaying 4 known assimilatory methylotrophic pathways. The general catabolic pathway is also shown. Q denotes a membrane-bound quinone. Methane monooxygenase (MMO) and Formate dehydrogenase (FDH) may be membrane-associated or cytoplasmic while Methanol dehydrogenase (MDH) and Formaldehyde dehydrogenase (FALDH) are always membrane-associated.]]

Wegen der Menge, der Reinheit und des niedrigen Preises des zur Verfügung stehenden Methanols sind Methanol-verwertende Methylotrophe beispielsweise ideale Organismen für die Produktion von [[Aminosäuren]], [[Vitamine]]n, [[Einzellerprotein]]en ({{enS|single cell proteins}}), [[rekombinantes Protein|rekombinanter Proteine]] ({{enS|recombinant proteins}}),<ref group="A.">Einzellerproteine versus rekombinante Proteine: Erstere werden durch natürlich vorkommende Einzeller synthetisiert, letztere sind durch [[Gentechnisch veränderter Organismus|gentechnisch veränderten Organismen]] erzeugt, inklusive solcher, in die zusätzliche [[DNA]]-[[Molekül]]e (etwa als [[Plasmid]]e) eingeschleust wurden</ref> [[Coenzym]]en und [[Cytochrome]]n. Sie könne daher sogar besser geeignet als die üblicherweise verwendeten [[Zellkultur]]en, die mit [[Kohlenhydrate|Zuckern]] „gefüttert“ werden.

== Stoffwechsel ==
[[File:Common methylotrophic metabolic pathways.svg|thumb|500px|Allgemeine Schritte des methylotrophen Stoffwechsels mit Darstellung von vie bekannten [[Stoffwechselweg]]en zur methylotrophen [[Assimilation (Biologie)|Assimilation]]. Der allgemeine [[katabolisch]]e Weg ist ebenfalls dargestellt. ''Q'' steht für ein membrangebundenes [[Chinone|Chinon]]. [[Methan-Monooxygenase]] (MMO) und [[Formiat]]-[[Dehydrogenase]] (FDH) können membrangebunden oder frei im [[Zytoplasma]] (löslich) vorhanden sein, während Methanol-Dehydrogenase (MDH) und [[Formaldehyd]]-Dehydrogenase (FALDH) immer membranassoziiert sind.]]

Das wichtigste [[Zwischenprodukt]] des methylotrophen Stoffwechsels ist [[Formaldehyd]], über das entweder in assimilatorische oder [[Dissimilation (Biologie)|dissimilatorische]] Stoffwechselwege geleitet werden können.<ref name="Yurimoto2005"/>
Methylotrophe produzieren Formaldehyd durch [[Oxidation]] von Methanol und/oder Methan.
Für die Methanoxidation ist das Enzym [[Methan-Monooxygenase]] (MMO) erforderlich.<ref name="Nguyen2017"/><ref name="Ross2017"/>
Methylotrophe Organismen mit diesem Enzym werden als [[Methanotrophe]] bezeichnet.<ref name="SdW_Methanotroph"/>
Die Oxidation von Methan (oder Methanol) kann assimilatorisch oder dissimilatorisch ([[katabolisch]]) erfolgen (siehe Abbildung).
Im Falle der dissimilatorischen Oxidation wird das Formaldehyd-Zwischenprodukt vollständig oxidiert zu [[Kohlenstoffdioxid|CO<sub>2</sub>]], wobei ein [[Reduktionsmittel]] und Energie frei werden.<ref name="Hanson1996"/><ref name="Vorholt2002"/>
Bei der assimilatorischen Oxidation wird das Formaldehyd-Zwischenprodukt für die Synthese einer Dreifach-Kohlenstoff-Verbindung (C<sub>3</sub>-Verbindug) benutzt, mit deren Hilfe dann die Produktion von [[Biomasse]] erfolgt.<ref name="Yurimoto2005" /><ref name="Colby1979"/>
Viele Methylotrophe verwenden Multikohlenstoffverbindungen (C<sub>n</sub>) für den Aufbau von körpereigenen Stoffen [[Anabolismus]] und beschränken ihre Verwendung von Formaldehyd auf dissimilatorische Prozesse, während im Spezialfall der Methanotrophen diese sich im Allgemeinen auf den C<sub>1</sub>-Stoffwechsel beschränken.<ref name="Yurimoto2005" /><ref name="Hanson1996" />


The key intermediate in methylotrophic [[metabolism]] is formaldehyde, which can be diverted to either assimilatory or dissimilatory pathways.<ref name=":0">{{Cite journal|last1=Yurimoto|first1=Hiroya|last2=Kato|first2=Nobuo|last3=Sakai|first3=Yasuyoshi|date=2005-01-01|title=Assimilation, dissimilation, and detoxification of formaldehyde, a central metabolic intermediate of methylotrophic metabolism|journal=The Chemical Record|language=en|volume=5|issue=6|pages=367–375|doi=10.1002/tcr.20056|pmid=16278835|issn=1528-0691}}</ref> Methylotrophs produce formaldehyde through oxidation of methanol and/or methane. Methane oxidation requires the enzyme [[methane monooxygenase]] ('''MMO''').<ref>{{cite journal|last1=Nguyen|first1=Ngoc-Loi|last2=Yu|first2=Woon-Jong|last3=Yang|first3=Hye-Young|last4=Kim|first4=Jong-Geol|last5=Jung|first5=Man-Young|last6=Park|first6=Soo-Je|last7=Roh|first7=Seong-Woon|last8=Rhee|first8=Sung-Keun|title=A novel methanotroph in the genus Methylomonas that contains a distinct clade of soluble methane monooxygenase|journal=Journal of Microbiology|date=28 September 2017|volume=55|issue=10|pages=775–782|doi=10.1007/s12275-017-7317-3|pmid=28956349|s2cid=5004714}}</ref><ref name=":3">{{Cite journal|last1=Ross|first1=Matthew O.|last2=Rosenzweig|first2=Amy C.|date=2017-04-01|title=A tale of two methane monooxygenases|journal=Journal of Biological Inorganic Chemistry|language=en|volume=22|issue=2–3|pages=307–319|doi=10.1007/s00775-016-1419-y|pmid=27878395|issn=0949-8257|pmc=5352483}}</ref> Methylotrophs with this enzyme are given the name [[methanotroph]]s. The oxidation of methane (or methanol) can be assimilatory or dissimilatory in nature (see figure). If dissimilatory, the formaldehyde intermediate is oxidized completely into <chem>CO2</chem> to produce reductant and energy.<ref name=":1">{{Cite journal|last1=Hanson|first1=R. S.|last2=Hanson|first2=T. E.|date=1996-06-01|title=Methanotrophic bacteria.|url= |journal=Microbiological Reviews|language=en|volume=60|issue=2|pages=439–471|doi=10.1128/mr.60.2.439-471.1996|issn=1092-2172|pmid=8801441|pmc=239451}}</ref><ref name=":4">{{Cite journal|last=Vorholt|first=Julia A.|date=2002-10-01|title=Cofactor-dependent pathways of formaldehyde oxidation in methylotrophic bacteria|journal=Archives of Microbiology|language=en|volume=178|issue=4|pages=239–249|doi=10.1007/s00203-002-0450-2|pmid=12209256|s2cid=22031009|issn=0302-8933}}</ref> If assimilatory, the formaldehyde intermediate is used to synthesize a 3-Carbon (<chem>C3</chem>) compound for the production of biomass.<ref name=":0" /><ref name=":2">{{Cite journal|last1=J Colby|last2=H Dalton|last3=Whittenbury|first3=and R.|date=1979|title=Biological and Biochemical Aspects of Microbial Growth on C1 Compounds|journal=Annual Review of Microbiology|volume=33|issue=1|pages=481–517|doi=10.1146/annurev.mi.33.100179.002405|pmid=386931}}</ref> Many methylotrophs use multi-carbon compounds for anabolism, thus limiting their use of formaldehyde to dissimilatory processes, however methanotrophs are generally limited to only <chem display="inline">C1</chem>metabolism.<ref name=":0" /><ref name=":1" />
{| class="wikitable"
{| class="wikitable"
|+
|+
Verbindungen, die bekannterweise den methylotrophen Stoffwechsel unterstützen<ref name="Colby1979" /><ref name="Oremland1989"/><ref name="Holmes1997"/><ref name="Kelly1994"/><ref name="Firsova2009"/>
Compounds known to support methylotrophic metabolism<ref name=":2" /><ref>{{Cite journal|author1-link=Ronald Oremland|last1=Oremland|first1=Ronald S.|last2=Kiene|first2=Ronald P.|last3=Mathrani|first3=Indra|last4=Whiticar|first4=Michael J.|last5=Boone|first5=David R.|date=1989-04-01|title=Description of an Estuarine Methylotrophic Methanogen Which Grows on Dimethyl Sulfide|journal=Applied and Environmental Microbiology|language=en|volume=55|issue=4|pages=994–1002|doi=10.1128/AEM.55.4.994-1002.1989|issn=0099-2240|pmid=16347900|pmc=184236|bibcode=1989ApEnM..55..994O}}</ref><ref>{{Cite journal|last1=Holmes|first1=Andrew J.|last2=Kelly|first2=D. P.|last3=Baker|first3=Simon C.|last4=Thompson|first4=A. S.|last5=Marco|first5=Paolo De|last6=Kenna|first6=Elizabeth M.|last7=Murrell|first7=J. Colin|date=1997-01-01|title=Methylosulfonomonas methylovora gen. nov., sp. nov., and Marinosulfonomonas methylotropha gen. nov., sp. nov.: novel methylotrophs able to grow on methanesulfonic acid|journal=Archives of Microbiology|language=en|volume=167|issue=1|pages=46–53|doi=10.1007/s002030050415|pmid=9000341|s2cid=7060466|issn=0302-8933}}</ref><ref>{{Cite journal|last1=Kelly|first1=Don P.|last2=Baker|first2=Simon C.|last3=Trickett|first3=Jim|last4=Davey|first4=Margaret|last5=Murrell|first5=J. Colin|date=1994|title=Methanesulphonate utilization by a novel methylotrophic bacterium involves an unusual monooxygenase|journal=Microbiology|volume=140|issue=6|pages=1419–1426|doi=10.1099/00221287-140-6-1419|doi-access=free}}</ref><ref name=":5">{{Cite journal|last1=Firsova|first1=Julia|last2=Doronina|first2=Nina|last3=Lang|first3=Elke|last4=Spröer|first4=Cathrin|last5=Vuilleumier|first5=Stéphane|last6=Trotsenko|first6=Yuri|title=Ancylobacter dichloromethanicus sp. nov. – a new aerobic facultatively methylotrophic bacterium utilizing dichloromethane|journal=Systematic and Applied Microbiology|volume=32|issue=4|pages=227–232|doi=10.1016/j.syapm.2009.02.002|pmid=19346095|year=2009}}</ref>
!Ein-Kohlenstoff-Verbindungen (C<sub>1</sub>)
!Single Carbon Compounds
![[Chemische Formel]]
!Chemical Formula
!Mehrfach-Kohlenstoff-Verbindungen (C<sub>n</sub>)
!Multi-Carbon Compounds
!Chemische Formel
!Chemical Formula
|-
|-
|[[Carbon monoxide]]
|[[Kohlenmonoxid]]
|<chem>CO</chem>
|<chem>CO</chem>
|[[Dimethylether]] (DME)
|[[Dimethyl ether]]
|<chem>(CH3)2O</chem>
|<chem>(CH3)2O</chem>
|-
|-
|[[Formaldehyde]]
|[[Formaldehyd]]
|<chem>CH2O</chem>
|<chem>CH2O</chem>
|[[Dimethylamine]]
|[[Dimethylamin]]
|<chem>(CH3)2NH</chem>
|<chem>(CH3)2NH</chem>
|-
|-
|[[Formamide]]
|[[Formamid]]
|<chem>HCONH2</chem>
|<chem>HCONH2</chem>
|[[Dimethylsulfid]] (DMS)
|[[Dimethyl sulfide]]
|<chem>(CH3)2S</chem>
|<chem>(CH3)2S</chem>
|-
|-
|[[Ameisensäure]] ([[Formiat]])
|[[Formic acid]]
|<chem>HCOOH</chem>
|<chem>HCOOH</chem>
|[[Tetramethylammonium]]
|[[Tetramethylammonium]]<ref name="CAS_51-92-3"/>
|<chem>(CH3)4N+</chem>
|<chem>(CH3)4N+</chem>
|-
|-
|[[Methane]]
|[[Methan]]
|<chem>CH4</chem>
|<chem>CH4</chem>
|[[Trimethylamine]]
|[[Trimethylamin]]
|<chem>(CH3)3N</chem>
|<chem>(CH3)3N</chem>
|-
|-
|[[Methanol]]
|[[Methanol]]
|<chem>CH3OH</chem>
|<chem>CH3OH</chem>
|[[Trimethylaminoxid|Trimethylamin-''N''-Oxid]]
|[[Trimethylamine N-oxide|Trimethylamine ''N''-oxide]]
|<chem>(CH3)3NO</chem>
|<chem>(CH3)3NO</chem>
|-
|-
|[[Methylamine]]
|[[Methylamin]]
|<chem>CH3NH2</chem>
|<chem>CH3NH2</chem>
|[[Trimethylsulfonium|Trimethylsuphonium]]
|[[Trimethylsulfonium]]<ref name="CAS_676-84-6"/>
|<chem>(CH3)3S+</chem>
|<chem>(CH3)3S+</chem>
|-
|-
|[[Halogenmethane]]
|[[Halomethane|Methyl halide]]
|<chem>CH3X</chem>
|<chem>CH3X</chem>
|
|
Zeile 56: Zeile 68:
|}
|}


=== Catabolism ===
=== [[Katabolismus]] ===
Methylotrophe Organismen nutzen die [[Elektronentransportkette]], um Energie aus der [[Oxidation]] von C<sub>1</sub>-Verbindungen zu gewinnen. Um den Abbau des chemisch stabilem Methans zu ermöglichen ist im methanotrophen Stoffwechsel ist ein zusätzlicher Aktivierungsschritt erforderlich. Die Oxidation zu Methanol wird durch die [[Methan-Monooxygenase]] (MMO) katalysiert, die ein Sauerstoffatom aus [[Disauerstoff|O<sub>2</sub>]] ins Methanmolekül einbaut und das andere Sauerstoffatom zu Wasser (H<sub>2</sub>O) reduziert<!--??, wofür zwei Äquivalente Reduktionskraft erforderlich sind, en Original: requiring two equivalents of reducing power -->.<ref name="Ross2017" /><ref name="Hanson1996" />
Methylotrophs use the [[electron transport chain]] to conserve energy produced from the oxidation of <chem>C1</chem> compounds. An additional activation step is required in methanotrophic metabolism to allow degradation of chemically-stable methane. This oxidation to methanol is catalyzed by MMO, which incorporates one oxygen atom from <chem>O2</chem> into methane and reduces the other oxygen atom to water, requiring two equivalents of reducing power.<ref name=":3" /><ref name=":1" /> Methanol is then oxidized to formaldehyde through the action of [[methanol dehydrogenase]] ('''MDH''') in bacteria,<ref>{{Cite journal|last1=Duine|first1=J.a.|last2=Frank|first2=J.|last3=Berkhout|first3=M.p.j.|date=1984-03-26|title=NAD-dependent, PQQ-containing methanol dehydrogenase: a bacterial dehydrogenase in a multienzyme complex|journal=FEBS Letters|language=en|volume=168|issue=2|pages=217–221|doi=10.1016/0014-5793(84)80249-5|pmid=6373362|issn=1873-3468|doi-access=free}}</ref> or a non-specific alcohol oxidase in yeast.<ref>{{Cite journal|last1=Murray|first1=William D.|last2=Duff|first2=Sheldon J. B.|last3=Lanthier|first3=Patricia H.|date=1989-11-01|title=Induction and stability of alcohol oxidase in the methylotrophic yeast Pichia pastoris|journal=Applied Microbiology and Biotechnology|language=en|volume=32|issue=1|pages=95–100|doi=10.1007/BF00164829|s2cid=29012249|issn=0175-7598}}</ref> Electrons from methanol oxidation are passed to a membrane-associated quinone of the electron transport chain to produce <chem>ATP</chem>.<ref>{{Cite journal|last1=Verseveld|first1=H. W. Van|last2=Stouthamer|first2=A. H.|author-link2=Ad Stouthamer|date=1978-07-01|title=Electron-transport chain and coupled oxidative phosphorylation in methanol-grown Paracoccus denitrificans|journal=Archives of Microbiology|language=en|volume=118|issue=1|pages=13–20|doi=10.1007/BF00406068|pmid=29587|s2cid=20362810|issn=0302-8933}}</ref>
Methanol wird dann in Bakterien durch die Methanol-[[Dehydrogenase]] (MDH)<ref name="Duine1984"/> oder in [[Saccharomyces|Hefe]] durch eine unspezifische [[Alkoholoxidase]]<ref name="Murray1989"/> zu Formaldehyd oxidiert. Die Elektronen aus der Methanoloxidation werden an ein membranassoziiertes [[Chinon]] der Elektronentransportkette weitergeleitet, wodurch die Energie in Form von [[Adenosintriphosphat]] (ATP) gewonnen wird.<ref name="Verseveld1978"/>

In dissimilatory processes, formaldehyde is completely oxidized to <chem>CO2
</chem> and excreted. Formaldehyde is oxidized to formate via the action of [[Formaldehyde dehydrogenase]] ('''FALDH'''), which provides electrons directly to a membrane associated quinone of the electron transport chain, usually cytochrome b or c.<ref name=":0" /><ref name=":1" /> In the case of <chem>NAD+</chem> associated dehydrogenases, <chem>NADH</chem> is produced.<ref name=":2" />

Finally, formate is oxidized to <chem>CO2</chem> by cytoplasmic or membrane-bound [[Formate dehydrogenase]] ('''FDH'''), producing <chem>NADH</chem><ref>{{Cite journal|last1=Chistoserdova|first1=Ludmila|last2=Crowther|first2=Gregory J.|last3=Vorholt|first3=Julia A.|last4=Skovran|first4=Elizabeth|last5=Portais|first5=Jean-Charles|last6=Lidstrom|first6=Mary E.|date=2007-12-15|title=Identification of a Fourth Formate Dehydrogenase in Methylobacterium extorquens AM1 and Confirmation of the Essential Role of Formate Oxidation in Methylotrophy|journal=Journal of Bacteriology|language=en|volume=189|issue=24|pages=9076–9081|doi=10.1128/jb.01229-07|issn=0021-9193|pmid=17921299|pmc=2168636}}</ref> and <chem>CO2</chem>.

=== Anabolism ===
The main metabolic challenge for methylotrophs is the assimilation of single carbon units into biomass. Through de novo synthesis, methylotrophs must form carbon-carbon bonds between 1-Carbon (<chem>C1</chem>) molecules. This is an energy intensive process, which facultative methylotrophs avoid by using a range of larger organic compounds.<ref>{{Cite journal|last1=Reed|first1=William M.|last2=Dugan|first2=Patrick R.|date=1987|title=Isolation and Characterization of the Facultative Methylotroph Mycobacterium ID-Y|journal=Microbiology|volume=133|issue=5|pages=1389–1395|doi=10.1099/00221287-133-5-1389|pmid=3655742|doi-access=free}}</ref> However, obligate methylotrophs must assimilate <chem>C1</chem> molecules.<ref name=":0" /><ref name=":1" /> There are four distinct assimilation pathways with the common theme of generating one <chem>C3</chem> molecule.<ref name=":0" /> Bacteria use three of these pathways<ref name=":2" /><ref name=":5" /> while Fungi use one.<ref name=":6">{{Cite journal|last1=van der Klei|first1=Ida J.|last2=Yurimoto|first2=Hiroya|last3=Sakai|first3=Yasuyoshi|last4=Veenhuis|first4=Marten|title=The significance of peroxisomes in methanol metabolism in methylotrophic yeast|journal=Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research|volume=1763|issue=12|pages=1453–1462|doi=10.1016/j.bbamcr.2006.07.016|pmid=17023065|year=2006|s2cid=17710312 |url=https://pure.rug.nl/ws/files/2868233/2006BiochimBiophysActavdKlei2.pdf}}</ref> All four pathways incorporate 3 <chem>C1</chem> molecules into multi-carbon intermediates, then cleave one intermediate into a new <chem>C3</chem> molecule. The remaining intermediates are rearranged to regenerate the original multi-carbon intermediates.


Bei dissimilatorischen Prozessen wird Formaldehyd vollständig zu CO<sub>2</sub> oxidiert und ausgeschieden. Formaldehyd wird durch die Wirkung der Formaldehyd-Dehydrogenase (FALDH) zu [[Formiat]] oxidiert und das Elektronen direkt an ein membranassoziiertes Chinon der Elektronentransportkette abgibt (in der Regel [[Cytochrome|Cytochrom b oder c]].<ref name="Yurimoto2005" /><ref name="Hanson1996" />
==== Bacteria ====
Im Falle von [[NAD+|NAD<sup>+</sup>]]-assoziierten Dehydrogenasen wird [[NADH]] gebildet.<ref name="Colby1979" />
Each species of methylotrophic bacteria has a single dominant assimilation pathway.<ref name=":1" /> The three characterized pathways for carbon assimilation are the ribulose monophosphate (RuMP) and serine pathways of formaldehyde assimilation as well as the ribulose bisphosphate (RuBP) pathway of {{CO2}} assimilation.<ref name=":0" /><ref name=":2" /><ref name=":5" /><ref>{{Cite journal|last1=TAYLOR|first1=STEPHEN C.|last2=DALTON|first2=HOWARD|last3=DOW|first3=CRAWFORD S.|date=1981|title=Ribulose-1,5-bisphosphate Carboxylase/Oxygenase and Carbon Assimilation in Methylococcus capsulatus (Bath)|journal=Microbiology|volume=122|issue=1|pages=89–94|doi=10.1099/00221287-122-1-89|doi-access=free}}</ref>


Schließlich wird das Formiat zu CO<sub>2</sub> oxidiert durch eine zytoplasmatische (lösliche) oder membrangebundene [[Formiat-Dehydrogenase]] (FDH) oxidiert, wodurch NADH und CO<sub>2</sub> produziert werden.<ref name="Chistoserdova2007"/>
===== Ribulose bisphosphate (RuBP) cycle =====


=== [[Anabolismus]] ===
Unlike the other assimilatory pathways, bacteria using the RuBP pathway derive all of their organic carbon from <chem>CO2</chem> assimilation.<ref name=":1" /><ref name=":7">{{Cite journal|last=Raines|first=Christine A.|date=2003-01-01|title=The Calvin cycle revisited|journal=Photosynthesis Research|language=en|volume=75|issue=1|pages=1–10|doi=10.1023/A:1022421515027|pmid=16245089|s2cid=21786477|issn=0166-8595}}</ref> This pathway was first elucidated in photosynthetic autotrophs and is better known as the Calvin Cycle.<ref name=":7" /><ref name=":8">{{Cite journal|last1=Champigny|first1=Marie-Louise|last2=Bismuth|first2=Evelyne|date=1976-01-01|title=Role of Photosynthetic Electron Transfer in Light Activation of Calvin Cycle Enzymes|journal=Physiologia Plantarum|language=en|volume=36|issue=1|pages=95–100|doi=10.1111/j.1399-3054.1976.tb05034.x|issn=1399-3054}}</ref> Shortly thereafter, methylotrophic bacteria who could grow on reduced <chem>C1</chem> compounds were found using this pathway.<ref>{{Cite journal|last1=Taylor|first1=Stephen|last2=Dalton|first2=Howard|last3=Dow|first3=Crawford|date=1980-07-01|title=Purification and initial characterisation of ribulose 1,5-bisphosphate carboxylase from Methylococcus capsulatus (Bath)|journal=FEMS Microbiology Letters|volume=8|issue=3|pages=157–160|doi=10.1016/0378-1097(80)90021-x|doi-access=free}}</ref>
Die wichtigste Herausforderung für den Stoffwechsel der Methylotrophen ist die [[Assimilation (Biologie)|Assimilation]] von C<sub>1</sub>-Molekülen zu Biomasse. Die Methylotrophen müssen dazu ''[[de novo]]'' Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindungen zwischen den bisherigen C<sub>1</sub>-Molekülen bilden.
Fakultativ Methylotrophe vermeiden diesen energieintensiven Prozess, indem sie – wenn möglich – eine Reihe größerer organischer Verbindungen benutzen.<ref name="Reed1987"/>
Obligat Methylotrophe müssen jedoch die C<sub>1</sub>-Moleküle assimilieren.<ref name="Yurimoto2005" /><ref name="Hanson1996" />
Eine Zwischenstellung nehmen sog. eingeschränkt fakultativ Methylotrophe ({{enS|restricted facultative methylotrophs}}) ein, die außer C<sub>1</sub>-Verbindungen lediglich eine begrenzte Anzahl komplexerer organischer Verbindungen nutzen können. Zu dieser Gruppe gehören Vertreter der Bakteriengattungen ''[[Hansschlegelia]]''<ref name="Madhaiyan"/> und ''[[Methylobrevis]]''<ref name="NCBI_Mbp"/><ref name="Poroshina2015"/> (beide zu [[Ordnung (Biologie)|Ordnung]] [[Hyphomicrobiales]] der [[Alphaproteobakterien]]) sowie ''[[Methylovorus]]''<ref name="NCBI_Mv"/><ref name="Govorukhina1991"/> (Ordnung [[Nitrosomonadales]] der [[Betaproteobakterien]]).{{#tag:ref|Die Bezeichnungsweise ist etwas irreführend. Der Begriff „eingeschränkt“ ({{enS|restricted}}) zusammen mit „fakultativ“ bezieht sich auf die Methylotrophie dieser Mikroben und bedeutet, dass sie sich nicht '''zwingend''' methylotroph ernähren müssen. Es handelt sich also tatsächlich um eine Erweiterung des Spektrums an nutzbaren Verbindungen. Beispielsweise nutzt die eingeschränkt fakultativ heterotrophe ''Hansschlegelia plantiphila'' je nach [[Stamm (Biologie)#Bakterienstämme|Stamm]] neben den C<sub>1</sub>-Verbindungen Methanol, Methylamin bzw. Formiat ([[Ameisensäure]])<ref name="Ivanova2007"/> zusätzlich noch [[Glycerin]], [[Inulin]], Succinat ([[Bernsteinsäure]]), Fumarat ([[Fumarsäure]]) und/oder Acetat ([[Essigsäure]]).<ref name="Agafonova2020" /> Von der Gattung ''Methylobrevis'' ist die Art ''Methylobrevis pamukkalensis''<ref name="NCBI_Mbp"/> als eingeschränkt fakultativ methylotroph bekannt.<ref name="Poroshina2015"/>|group="A."}}


Es gibt insgesamt vier verschiedene Assimilationswege mit dem gemeinsamen Thema, der Biosynthese eines C<sub>3</sub>-Moleküls.<ref name="Yurimoto2005" />
First, 3 molecules of ribulose 5-phosphate are phosphorylated to [[ribulose 1,5-bisphosphate]] ('''RuBP'''). The enzyme ribulose bisphosphate carboxylase ('''[[RuBisCO]]''') carboxylates these RuBP molecules which produces 6 molecules of [[3-Phosphoglyceric acid|3-phosphoglycerate]] ('''PGA'''). The enzyme [[phosphoglycerate kinase]] phosphorylates PGA into [[1,3-diphosphoglycerate]] (DPGA). Reduction of 6 DPGA by the enzyme [[Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (phosphorylating)|glyceraldehyde phosphate dehydrogenase]] generates 6 molecules of the <chem>C3</chem> compound [[Glyceraldehyde 3-phosphate|glyceraldehyde-3-phosphate]] ('''GAP'''). One GAP molecule is diverted towards biomass while the other 5 molecules regenerate the 3 molecules of ribulose 5-phosphate.<ref name=":2" /><ref name=":8" />
Alle vier Wege bauen drei C<sub>1</sub>-Moleküle in Multi-Kohlenstoff-Zwischenprodukte ein, und spalten dann von einem Zwischenprodukt ein neues C<sub>3</sub>-Molekül ab. Die verbliebenen Reste der Zwischenprodukte werden anschließend umgeordnet, um die ursprünglichen Multi-Kohlenstoff-Zwischenprodukte zu regenerieren.


Bakterien nutzen drei dieser Wege,<ref name="Colby1979" /><ref name="Firsova2009" /> während Pilze ([[Hefen]]) nur einen nutzen.
===== Ribulose monophosphate (RuMP) cycle =====
* Jede [[Art (Biologie)|Spezies]] methylotropher [[Bakterien]] hat unter diesen drei bakteriellen einen spezifischen dominanten Assimilationsweg.<ref name="Hanson1996" /> Die drei charakterisierten Wege für die Kohlenstoffassimilation sind bei der Formaldehydassimilation der [[Ribulosemonophosphatweg|Ribulosemonophosphatweg]] (RuMP, Typ I), der [[Serinweg]] (Typ II) sowie für die CO<sub>2</sub>-Assimilation der [[Ribulosebiphosphatweg]] (RuBP, alias [[Calvin-Benson-Bassham-Zyklus]], CBB).<ref name="Yurimoto2005" /><ref name="Colby1979" /><ref name="Firsova2009" /><ref name="Taylor1981"/>
[[Image:RuMP pathway.svg|thumb|400px|right|RuMP pathway in type I methanotrophs]]
* Der Stoffwechsel der methylotrophen [[Hefen|Hefepilze]]{{#tag:ref|Nach Yurimoto (2011) sind als Gattungen methylotropher Hefen bekannt: ''[[Candida]]'', ''[[Pichia]]'', ''[[Ogataea]]'',<ref name="NCBI_Opm"/> ''[[Kuraishia]]'' und ''[[Komagataella]]''; alle in der [[Ordnung(Biologie)|Ordnung]] [[Saccharomycetales]] (Echte Hefen).<ref name="Yurimoto2011"/><ref name="NCBI_o_Saccharom"/>|group="A."}} unterscheidet sich von dem der Bakterien vor allem durch die verwendeten Enzyme und den Weg der Kohlenstoffassimilation.
[[File:HR170765 bw.png|thumb|left|upright=0.66|3-hexulose 6-phos&shy;phate (hexu&shy;lose phos&shy;phate)]]
Während Bakterien zur [[Oxidation]] von [[Methanol]] eine bakterielle [[Methanoldehydrogenase]] (MDH, [[EC-Nummer|EC]] 1.1.3.7<ref name="EC_1.1.2.7"/>) nutzen, oxidieren methylotrophe [[Hefen]] Methanol in ihren [[Peroxisom]]en mit einer unspezifischen Alkohol[[oxidase]] (AOX<ref name="Wegat2022"/>).
A new pathway was suspected when [[RuBisCO]] was not found in the methanotroph ''Methylmonas methanica''.<ref name=":9">{{Cite journal|last=Quayle|first=J. R.|date=1980-02-01|title=Microbial assimilation of C1 compounds|journal=Biochemical Society Transactions|language=en|volume=8|issue=1|pages=1–10|doi=10.1042/bst0080001|issn=0300-5127|pmid=6768606}}</ref> Through radio-labelling experiments, it was shown that ''M. methanica'' used the Ribulose monophate (RuMP) pathway. This has led researchers to propose that the RuMP cycle may have preceded the RuBP cycle.<ref name=":1" />
Dabei entstehen sowohl Formaldehyd als auch [[Wasserstoffperoxid]] (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>).<ref name="Yurimoto2011"/><ref name="Gonchar2002"/>
Durch die [[Zellkompartiment|Kompartimentierung]] dieser Reaktion in den Peroxisomen wird wahrscheinlich das entstehende Wasserstoffperoxid [[Sequestrierung von Toxinen|sequestriert]]. In den Peroxisomen wird [[Katalase]] produziert, um dieses schädliche Nebenprodukt zu beseitigen.<ref name="Klei2006" /><ref name="Yurimoto2011" />


==== {{Anker|Ribulosebiphosphatweg|RuBP}}Bakterien: Ribulosebiphosphatweg (RuBP) =====
Like the RuBP cycle, this cycle begins with 3 molecules of ribulose-5-phosphate. However, instead of phosphorylating ribulose-5-phosphate, 3 molecules of formaldehyde form a C-C bond through an aldol condensation, producing 3 <chem>C6</chem> molecules of 3-hexulose 6-phosphate (hexulose phosphate). One of these molecules of hexulose phosphate is converted into GAP and either [[pyruvate]] or [[dihydroxyacetone phosphate]] ('''DHAP'''). The pyruvate or DHAP is used towards biomass while the other 2 hexulose phosphate molecules and the molecule of GAP are used to regenerate the 3 molecules of ribulose-5-phosphate.<ref name=":4" /><ref name=":9" />
{{Hauptartikel|Calvin-Zyklus}}
[[Datei:Calvin cycle.svg|mini|350px|Calvin-Zyklus (Ribulosebiphosphatweg, RuBP)]]
Im Gegensatz zu den anderen Assimilationswegen beziehen Bakterien, die den RuBP-Weg nutzen, ihren gesamten organischen Kohlenstoff durch CO<sub>2</sub>-Assimilation.<ref name="Hanson1996" /><ref name="Raines2003"/>
Dieser Stoffwechselweg wurde zuerst bei [[Photosynthese|photosynthetischen]] [[Autotroph]]en<ref group="A.">Organismen, die ihre Baustoffe (und organischen [[Reservestoffe]]) ausschließlich aus [[Anorganik|anorganischen]] Stoffen aufzubauen und die Energie dazu aus dem {{nowrap|(Sonnen-)}}<wbr>Licht beziehen.</ref> aufgeklärt und ist besser bekannt als [[Calvin-Zyklus]].<ref name="Raines2003" /><ref name="Champigny1976"/>
Kurz darauf wurden methylotrophe Bakterien gefunden, die auf reduzierten C<sub>1</sub>-Verbindungen wachsen können und diesen Stoffwechselweg nutzen.<ref name="Taylor1980"/>


Zunächst werden drei Moleküle [[Ribulose-5-phosphat]] zu [[Ribulose-1,5-bisphosphat]] (RuBP, auch RuP<sub>2</sub>) [[Phosphorylierung|phosphoryliert]].<ref group="A.>Je nach Darstellung kann dieser Schritt auch als letzter Regenerationsschritt dargestellt werden.</ref> Das Enzym [[Ribulosebisphosphatcarboxylase]] (RuBisCO) [[Carboxylierung|carboxyliert]] die RuBP-Moleküle, wodurch sechs Moleküle [[3-Phosphoglycerat]] (PGA, auch 3-PG) entstehen. Das Enzym [[Phosphoglyceratkinase]] phosphoryliert PGA zu [[1,3-Biphosphoglycerinsäure|1,3-Diphosphoglycerat]] (DPGA). Bei der Reduktion von sechs DPGA durch das Enzym [[Glycerinaldehyd-3-phosphat-Dehydrogenase|Glyceraldehydphosphat-Dehydrogenase]] (GADPH) entstehen sechs Moleküle der C<sub>3</sub>-Verbindung Glyceraldehyd-3-phosphat (GAP oder G3P<ref name="Wegat2022"/>). Ein GAP-Molekül wird in die Biomasse umgeleitet, während die anderen fünf Moleküle zuletzt die drei Moleküle von Ribulose-5-Phosphat regenerieren, die im nächsten Durchlauf des Zyklus wieder zu RuBP phosphoryliert werden.<ref name="Colby1979" /><ref name="Champigny1976" />
===== Serine cycle =====


==== {{Anker|Ribulosemonophosphatweg|RuMP}}Bakterien: Ribulosemonophosphatweg (RuMP) ====
Unlike the other assimilatory pathways, the serine cycle uses carboxylic acids and amino acids as intermediates instead of carbohydrates.<ref name=":1" /><ref name=":10">{{Cite journal|last1=Chistoserdova|first1=L. V.|last2=Lidstrom|first2=M. E.|date=1994-12-01|title=Genetics of the serine cycle in Methylobacterium extorquens AM1: identification, sequence, and mutation of three new genes involved in C1 assimilation, orf4, mtkA, and mtkB.|journal=Journal of Bacteriology|language=en|volume=176|issue=23|pages=7398–7404|doi=10.1128/jb.176.23.7398-7404.1994|issn=0021-9193|pmid=7961516|pmc=197134}}</ref> First, 2 molecules of formaldehyde are added to 2 molecules of the amino acid [[glycine]]. This produces two molecules of the amino acid [[serine]], the key intermediate of this pathway. These serine molecules eventually produce 2 molecules of [[2-Phosphoglycerate|2-phosphoglycerate]], with one <chem>C3</chem> molecule going towards biomass and the other being used to regenerate glycine. Notably, the regeneration of glycine requires a molecule of <chem>CO2</chem> as well, therefore the Serine pathway also differs from the other 3 pathways by its requirement of both formaldehyde and <chem>CO2</chem>.<ref name=":9" /><ref name=":10" />
{{Hauptartikel|Ribulosemonophosphatweg}}
[[Datei:Ribulosemonophosphatweg.svg|mini|350px|Der Ribulosemonophosphatweg (RuMP-Weg) zur Assimilation von Formaldehyd in Typ-I-[[Methanotrophe]]n.]]
[[Datei:HR170765 ion.png|mini|links|hochkant=0.75|3-[[Hexulose]]-6-[[phosphat]] (Hexulosephosphat, HU6P), Anion]]
Als in dem [[methanotrophe]]n [[Gammaproteobakterien|Gammaproteobakterium]] ''[[Methylomonas methanica]]'' ([[Methylococcaceae]])<ref name="NCBI_Mmm"/> kein RuBisCO gefunden wurde, vermutete man bereits 1980 einen neuen Stoffwechselweg.<ref name="Quayle1980"/>
Mit Hilfe der [[Isotopenmarkierung]] konnte dann 1996 gezeigt werden, dass ''M. methanica'' den Ribulosemonophosphatweg (RuMP, auch Hexulosephosphatzyklus genannt) nutzt.
Die Entdeckung veranlasste die Autoren zudem zu der [[These]], dass der RuMP-Weg dem RuBP-Weg [[Evolutionsgeschichte|entwicklungsgeschichtlich]] (in der [[Evolution]]) vorausgegangen sein könnte.<ref name="Hanson1996" />


Wie der RuBP-Weg beginnt auch dieser Stoffwechselweg mit 3 Molekülen Ribulose-5-phosphat.
==== Yeasts ====
Aber anstatt das Ribulose-5-phosphat zu phosphorylieren, bilden hier jedoch 3 Moleküle Formaldehyd durch eine [[Aldolkondensation]] eine C-C-[[Kovalente Bindung|Bindung]], wodurch 3 C<sub>6</sub>-Moleküle von D-''Arabino''-3-[[Hexulose]]-6-[[phosphat]] (HU6P,<ref name="Wegat2022"/> Hexulosephosphat, [[Chemical Abstracts Service|CAS]] 53010-97-2<ref name="CAS_53010-97-2"/><ref name="Hairu"/><ref name="MetaCyc"/>), vermittelt durch eine
Methylotrophic yeast metabolism differs from bacteria primarily on the basis of the enzymes used and the carbon assimilation pathway. Unlike bacteria which use bacterial MDH, methylotrophic yeasts oxidize methanol in their [[peroxisome]]s with a non-specific alcohol oxidase. This produces formaldehyde as well as hydrogen peroxide.<ref name=":11">{{Cite journal|last1=Yurimoto|first1=Hiroya|last2=Oku|first2=Masahide|last3=Sakai|first3=Yasuyoshi|date=2011|title=Yeast Methylotrophy: Metabolism, Gene Regulation and Peroxisome Homeostasis|journal=International Journal of Microbiology|language=en|volume=2011|pages=101298|doi=10.1155/2011/101298|pmid=21754936|pmc=3132611|issn=1687-918X|doi-access=free}}</ref><ref>{{Cite journal|last1=Gonchar|first1=Mykhailo|last2=Maidan|first2=Mykola|last3=Korpan|first3=Yaroslav|last4=Sibirny|first4=Volodymyr|last5=Kotylak|first5=Zbigniew|last6=Sibirny|first6=Andrei|date=2002-08-01|title=Metabolically engineered methylotrophic yeast cells and enzymes as sensor biorecognition elements|journal=FEMS Yeast Research|volume=2|issue=3|pages=307–314|doi=10.1016/s1567-1356(02)00124-1|pmid=12702280|issn=1567-1356|doi-access=free}}</ref> Compartmentalization of this reaction in peroxisomes likely sequesters the hydrogen peroxide produced. Catalase is produced in the peroxisomes to deal with this harmful by-product.<ref name=":6" /><ref name=":11" />
[[Hexulose-6-phosphat-Synthase]] (HPS<ref name="Wegat2022"/>) entstehen.<ref name="Vorholt2002" /><ref name="Quayle1980" /><ref name="SdW_RuMP"/>
Diese Reaktion wird durch eine Hexulosephosphat-Synthase (HPS)<ref name="Wegat2022"/><ref name="EC_4.1.2.43"/> katalysiert.


Eines dieser Hexulosephosphat-Moleküle wird in [[Glycerinaldehyd-3-phosphat]] (GAP, auch G3P) und entweder in [[Pyruvat]] ([[Brenztraubensäure]]) oder [[Dihydroxyacetonphosphat]] (DHAP) umgewandelt. Das Pyruvat oder DHAP wird für die Produktion der Biomasse verwendet, während die anderen beiden Hexulosephosphat-Moleküle und das GAP-Molekül zur Regeneration der drei Ribulose-5-phosphat-Moleküle verwendet werden.<ref name="Vorholt2002" /><ref name="Quayle1980" />
===== Dihydroxyacteone (DHA) cycle =====


==== {{Anker|Serinweg}}Bakterien: Serinweg ====
The [[dihydroxyacetone]] (DHA) pathway, also known as the xylulose monophosphate (XuMP) pathway, is found exclusively in yeast.<ref name=":11" /><ref>{{Cite journal|last1=Gleeson|first1=M. A.|last2=Sudbery|first2=P. E.|date=1988-03-01|title=The methylotrophic yeasts|journal=Yeast|language=en|volume=4|issue=1|pages=1–15|doi=10.1002/yea.320040102|s2cid=85256824|issn=1097-0061}}</ref> This pathway assimilates three molecules of formaldehyde into 1 molecule of DHAP using 3 molecules of [[xylulose 5-phosphate]] as the key intermediate.
{{Hauptartikel|Serinweg}}
[[Datei:Ribulosemonophosphatweg.svg|mini|350px|Serinweg ({{enS|serine pathway}} oder {{lang|en|''cycle''}}), um [[Formaldehyd]] zu [[Assimilation (Biologie)|fixieren]].]]
Im Gegensatz zu den anderen Assimilationswegen werden beim Serinweg (Serinzyklus) anstelle von [[Kohlenhydrat]]en [[Carbonsäuren]] und [[Aminosäuren]] als Zwischenprodukte verwendet.<ref name="Hanson1996" /><ref name="Chistoserdova1994"/>
Zunächst werden zwei Moleküle Formaldehyd zu zwei Molekülen der Aminosäure [[Glycin]] hinzugefügt. Dadurch entstehen zwei Moleküle der Aminosäure [[Serin]], dem wichtigsten Zwischenprodukt dieses Stoffwechselwegs.
Aus diesen Serinmolekülen entstehen schließlich zwei Moleküle [[2-Phosphoglycerat]] (2-Phosphoglycerinsäure), wobei ein C<sub>3</sub>-Molekül in die Biomasse geht und das andere zur Regeneration von Glycin verwendet wird.
Wichtig ist: Für die Regeneration von Glycin wird zusätzlich ein Molekül CO<sub>2</sub> benötigt.
Daher unterscheidet sich der Serin-Weg auch von den anderen drei Wegen durch seinen Bedarf an Formaldehyd '''und''' CO<sub>2</sub>.<ref name="Quayle1980" /><ref name="Chistoserdova1994" />


==== {{Anker|Dihydroxyacteon-Weg|Dihydroxyacteonweg|Xylulosemonophosphat-Weg|Xylulosemonophosphatweg}}Hefen: Dihydroxyacteonweg (DHA) ====
DHA synthase acts as a transferase (transketolase) to transfer part of xylulose 5-phosphate to DHA. Then these 3 molecules of DHA are phosphorylated to DHAP by [[triokinase]]. Like the other cycles, 3 <chem>C3</chem> molecules are produced with 1 molecule being directed for use as cell material. The other 2 molecules are used to regenerate xylulose 5-phosphate.<ref>{{Cite journal|last1=WAITES|first1=M. J.|last2=QUAYLE|first2=J. R.|date=1981|title=The Interrelation between Transketolase and Dihydroxyacetone Synthase Activities in the Methylotrophic Yeast Candida boidinii|journal=Microbiology|volume=124|issue=2|pages=309–316|doi=10.1099/00221287-124-2-309|pmid=6276498|doi-access=free}}</ref>
[[Datei:13068 2022 2210 Fig2 HTML.webp|mini|350px|Vergleich von RuMP-Weg (Bakterien) und XuMP-Weg (Hefen).<ref name="Wegat2022"/>]]
Der [[Dihydroxyaceton]]weg (DHA-Weg), auch als [[Xylulose-5-phosphat|Xylulosemonophosphat]]weg (XuMP-Weg) bezeichnet, kommt ausschließlich in Hefen vor.<ref name="Yurimoto2011" /><ref name="Gleeson1988"/>
Bei diesem Stoffwechselweg werden drei Moleküle Formaldehyd zu einem Molekül [[Dihydroxyacetonphosphat]] (DHAP) assimiliert, wobei drei Moleküle Xylulose-5-Phosphat (XU5P)<ref name="Wegat2022"/><ref name="CAS_60802-29-1"/> als Schlüsselzwischenprodukt Verwendung finden.
Die DHA-Synthase wirkt als [[Transferase]] (genauer: [[Transketolase]]), um einen Teil des Xylulose-5-Phosphats auf [[Dihydroxyaceton]] (DHA) zu übertragen. Anschließend werden diese drei DHA-Moleküle von der [[Triokinase]] zu DHAP [[phosphoryliert]].
Wie bei den anderen Zyklen werden drei C<sub>3</sub>-Moleküle synthetisiert, wobei eines dieser Moleküle für die Verwendung als Zellmaterial ([[Biomasse]]) bestimmt ist. Die beiden anderen Moleküle werden für die Regeneration von Xylulose-5-Phosphat verwendet.<ref name="Waites1981"/>


== Bedeutung für die Umwelt und Anwendungen ==
==Environmental Implications==
=== Nahrungskreisläufe und Klima ===
Als wichtige Akteure im [[Kohlenstoffkreislauf]] tragen Methylotrophe vor allem durch die Aufnahme von [[Methan]] und anderen [[Treibhausgase]]n (wie Methan und [[Kohlenstoffdioxid|CO<sub>2</sub>]]) zur Verringerung der [[Globale Erwärmung|globalen Erwärmung]] bei.
In wässrigem Milieu produzieren [[Methanbildner|methanogene Mikroorganismen]] 40-50 % des weltweit produzierten Methans.
Durch die [[Symbiose]] (siehe [[Vergesellschaftung (Biologie)#Mikroben|Vergesellschaftung (Biologie) §Mikroben]]) zwischen methanogenen und methanotrophen Bakterien wird die Menge des in die Atmosphäre freigesetzten Methans erheblich verringert.<ref name="Borrel2011"/>


Diese Symbiose ist auch in [[Meer|marinen]] Umgebungen von großer Bedeutung. Marine Bakterien sind sehr wichtig für die [[Nahrungskette]] ({{enS}} auch {{lang|en|food web}} genannt) und biogeochemische [[Stoffkreislauf|Stoffkreisläufe]]. Dies gilt insbesondere für küstennahe [[Oberflächengewässer]], aber auch für anderen wichtigen [[Ökosystem]]e wie [[Raucher (Hydrothermie)|hydrothermale Schloten]].
As key players in the [[carbon cycle]], methylotrophs work to reduce global warming primarily through the uptake of methane and other greenhouse gases. In aqueous environments, methanogenic bacteria produce 40-50% of the world's methane. Symbiosis between methanogens and methanotrophic bacteria greatly decreases the amount of methane released into the atmosphere.<ref>Guillaume Borrel, Didier Jézéquel, Corinne Biderre-Petit, Nicole Morel-Desrosiers, Jean-Pierre Morel, Pierre Peyret, Gérard Fonty, Anne-Catherine Lehours, Production and consumption of methane in freshwater lake ecosystems, In Research in Microbiology, Volume 162, Issue 9, 2011, Pages 832-847, ISSN 0923-2508, https://doi.org/10.1016/j.resmic.2011.06.004.</ref>
Es werden weit verbreitete und vielfältige Gruppen von Methylotrophen im [[Ozean]] vermutet, mit dem Potenzial, die Ökosysteme der Meere und [[Ästuar|Flussmündungen]] erheblich zu beeinflussen.<ref name="Dinasquet2018"/> 
Ein-Kohlenstoff-Verbindungen (C<sub>1</sub>-Verbindungen), die von Methylotrophen als Quelle von Biomasse und Energie genutzt werden, finden sich überall im Ozean.
Zu diesen Verbindungen gehören [[Methan]] (bzw. [[Methanhydrat]]), [[Methanol]], [[methyl]]ierte [[Amine]], [[Methylhalogenid]]e und methylierte [[Schwefel#Verbindungen|Schwefelverbindungen]] wie [[Dimethylsulfid]] (DMS, H<sub>3</sub>C-S-CH<sub>3</sub>) und Dimethylsulfoxid (DMSO, (CH<sub>3</sub>)<sub>2</sub>S).<ref name="Neufeld2008"/>
Einige dieser Verbindungen werden vom [[Phytoplankton]] produziert, andere stammen aus der [[Erdatmosphäre|Atmosphäre]].
Studien, die ein breiteres Spektrum von Ein-Kohlenstoff-Substraten (C<sub>1</sub>-[[Substrat (Ökologie)|Substraten]]) einbeziehen, haben eine zunehmende Vielfalt von Methylotrophen festgestellt, ein Umstand, der darauf hindeutet, dass die Vielfalt dieser Gruppe von Bakterien (und anderen Mikroben) bei weitem noch nicht vollständig erforscht ist.<ref name="Neufeld2008" />


Da diese Verbindungen [[Flüchtige organische Verbindungen|flüchtig]] sind und sich auf das [[Klima]] und die [[Erdatmosphäre|Atmosphäre]] auswirken, kann die Erforschung der Interaktion dieser Organismen mit den C<sub>1</sub>-Verbindungen auch zum Verständnis des Austausches zwischen der Atmosphäre und dem Ozean beitragen – und welchen Einfluss dieser auf das Klima hat, wichtig für Klimavorhersagen.<ref name="Faria2006"/><ref name="Dinasquet2018" />
This symbiosis is also important in the marine environment. Marine bacteria are very important to [[food web]]s and [[biogeochemical cycle]]s, particularly in coastal surface waters but also in other key ecosystems such as [[hydrothermal vent]]s. There is evidence of widespread and diverse groups of methylotrophs in the ocean that have potential to significantly impact marine and [[estuarine]] ecosystems.<ref name=":12">{{Cite journal|last1=Dinasquet|first1=Julie|last2=Tiirola|first2=Marja|last3=Azam|first3=Farooq|date=2018|title=Enrichment of Bacterioplankton Able to Utilize One-Carbon and Methylated Compounds in the Coastal Pacific Ocean|journal=Frontiers in Marine Science|volume=5|pages=307|doi=10.3389/fmars.2018.00307|issn=2296-7745|doi-access=free}}</ref>  One-carbon compounds used as a carbon and energy source by methylotrophs are found throughout the ocean. These compounds include [[methane]], [[methanol]], [[methylated amines]], methyl halides, and methylated sulfur compounds, such as [[Dimethyl sulfide|dimethylsulfide]] (DMS) and dimethylsulfoxide ([[DMSO]]).<ref name=":13">{{Cite journal|last1=Neufeld|first1=Josh D.|last2=Boden|first2=Rich|last3=Moussard|first3=Hélène|last4=Schäfer|first4=Hendrik|last5=Murrell|first5=J. Colin|date=2008-12-01|title=Substrate-Specific Clades of Active Marine Methylotrophs Associated with a Phytoplankton Bloom in a Temperate Coastal Environment|journal=Applied and Environmental Microbiology|volume=74|issue=23|pages=7321–7328|doi=10.1128/AEM.01266-08|pmc=2592898|pmid=18849453|bibcode=2008ApEnM..74.7321N}}</ref> Some of these compounds are produced by [[phytoplankton]] and some come from the atmosphere. Studies incorporating a wider range of one-carbon substrates have found increasing diversity of methylotrophs, suggesting that the diversity of this bacterial group has not yet fully been explored.<ref name=":13" />
Es ist beispielsweise derzeit (Stand 2018) ungewiss, ob der Ozean als [[Quelle und Senke|Nettoquelle oder -senke]] für atmosphärisches Methanol fungiert, während eine Reihe von Methylotrophen Methanol als ihre Hauptenergiequelle nutzt.
In einigen Regionen haben sich Methylotrophe als Netto-Senke für Methanol erwiesen,<ref name="Yang2014"/> während in anderen Regionen [[Methylamin]] (CH<sub>3</sub>N-H<sub>2</sub>) als ein Produkt der Aktivität von Methylotrophen aus dem Ozean emittiert wird und [[Aerosol]]e bildet.<ref name="Dinasquet2018" />
Die Nettorichtung dieser Ströme hängt von der genauen Nutzung durch die verschiedenen Methylotrophen ab.


Untersuchungen haben ergeben, dass die Auswirkungen der Methylotrophie wahrscheinlich saisonal schwanken, denn die methylotrophe Kapazität geht einher mit der Produktivität eines Systems.
Because these compounds are volatile and impact the climate and atmosphere, research on the interaction of these bacteria with these one-carbon compounds can also help understanding of air-sea fluxes of these compounds, which impact climate predictions.<ref name=":14">{{Cite journal|last1=Faria|first1=Daphne|last2=Bharathi|first2=P. A. Loka|date=2006|title=Marine and estuarine methylotrophs: their abundance, activity and identity|url=https://www.jstor.org/stable/24091957|journal=Current Science|volume=90|issue=7|pages=984–989|jstor=24091957|issn=0011-3891}}</ref><ref name=":12" /> For example, it is uncertain whether the ocean acts as a net source or sink of atmospheric methanol, but a diverse set of methylotrophs use methanol as their main energy source. In some regions, methylotrophs have been found to be a net sink of methanol,<ref>{{Cite journal|last1=Yang|first1=M.|last2=Beale|first2=R.|last3=Liss|first3=P.|last4=Johnson|first4=M.|last5=Blomquist|first5=B.|last6=Nightingale|first6=P.|date=2014-07-24|title=Air–sea fluxes of oxygenated volatile organic compounds across the Atlantic Ocean|url=https://acp.copernicus.org/articles/14/7499/2014/|journal=Atmospheric Chemistry and Physics|language=English|volume=14|issue=14|pages=7499–7517|doi=10.5194/acp-14-7499-2014|bibcode=2014ACP....14.7499Y|issn=1680-7316|doi-access=free}}</ref> while in others a product of methylotroph activity, [[methylamine]], has been found to be emitted from the ocean and form aerosols.<ref name=":12" /> The net direction of these fluxes depends on the utilization by methylotrophs.
Da einige der von Methylotrophen verstoffwechselten C<sub>1</sub>-Verbindungen wie Methanol und [[Trimethylaminoxid]] (TMAO) von [[Phytoplankton]] produziert werden, schwankt ihre Verfügbarkeit zeitlich und saisonal in Abhängigkeit von [[Algenblüte|Phytoplanktonblüten]], [[Liste von Wetterereignissen in Europa|Wetterereignissen]] und anderen Einträgen (Inputs) in das Ökosystem.<ref name="Beale2011"/>
Dies bedeutet, dass der methylotrophe Stoffwechsel insgesamt voraussichtlich einer ähnlichen Dynamik folgt, was sich wiederum auf die biogeochemischen Zyklen (Stoffkreislauf) wie Kohlenstoffflüsse auswirkt.<ref name="Dinasquet2018" />


Auch in [[Raucher (Hydrothermie)|hydrothermalen Schloten]] der [[Tiefsee]] wurde die Bedeutung von Methylotrophen untersucht.
Studies have found that methylotrophic capacity varies with the productivity of a system, so the impacts of methylotrophy are likely seasonal. Because some of the one-carbon compounds used by methylotrophs, such as [[methanol]] and [[Trimethylamine N-oxide|TMAO]], are produced by phytoplankton, their availability will vary temporally and seasonally depending on [[phytoplankton bloom]]s, weather events, and other ecosystem inputs.<ref>{{Cite journal|last1=Beale|first1=Rachael|last2=Liss|first2=Peter S.|last3=Dixon|first3=Joanna L.|last4=Nightingale|first4=Philip D.|date=2011-11-07|title=Quantification of oxygenated volatile organic compounds in seawater by membrane inlet-proton transfer reaction/mass spectrometry|url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0003267011011226|journal=Analytica Chimica Acta|language=en|volume=706|issue=1|pages=128–134|doi=10.1016/j.aca.2011.08.023|pmid=21995919|issn=0003-2670}}</ref> This means that methylotrophic metabolism is expected to follow similar dynamics, which will then impact biogeochemical cycles and carbon fluxes.<ref name=":12" />
Methylotrophe Mikroorganismen [[Genexpression|exprimierten]] zusammen mit [[Schwefeloxidierende Bakterien|Schwefeloxidierern]] und [[Eisenoxidierende Mikroorganismen|Eisenoxidierern]] Schlüsselproteine, die mit der [[Kohlenstofffixierung]] in Verbindung stehen.<ref name="Mattes2013"/>
Solche Studien können zum weiteren Verständnis des Kohlenstoffkreislaufs sowohl in der Tiefsee selbst als auch der Zusammenhänge zwischen dem Kohlenstoffkreislauf in der Tiefsee und an der Oberfläche beitragen.
In der letzten Zeit hat die Ausweitung der „[[-omik|omik]]“"-Technologien ([[Genomik]], [[Metagenomik]], [[Proteomik]], [[Transkriptomik]] etc.) die Erforschung der Methylotrophen bzgl. ihrer [[Biodiversität|Vielfalt]], ihre Häufigkeit und ihrer Aktivität in einer Vielzahl von [[Ökologische Nische|Umweltnischen]] beschleunigt, wozu auch die Interaktionen zwischen verschiedenen Arten gehört, die sich einen Lebensraum ([[Habitat]]) teilen.<ref name="Chistoserdova2017"/>
Weitere Forschungen über diese Mikroben und die Gesamtwirkung des mikrobiellen Abbaus einerseits wie der Umwandlung von C<sub>1</sub>-Verbindungen im Ozean andererseits sind noch durchzuführen. Derzeitige Erkenntnisse deuten darauf hin, dass die Methylotrophen im Ozean eine potenziell wichtige Rolle nicht nur im Kohlenstoffkreislauf spielen, sondern auch im globalen Stickstoff-, Schwefel- und Phosphorkreislauf, sowie im Austausch von Kohlenstoffverbindungen zwischen Luft und Meer ({{enS|air-sea flux}}), insbesondere im Hinblick auf Auswirkungen auf das globale Klima.<ref name="Faria2006" />


=== Anwendungen ===
Impacts of methylotrophs were also found in [[Hydrothermal vent|deep-sea hydrothermal vents]]. Methylotrophs, along with sulfur oxidizers and iron oxidizers, expressed key proteins associated with [[carbon fixation]].<ref>{{Cite journal|last1=Mattes|first1=Timothy E.|last2=Nunn|first2=Brook L.|last3=Marshall|first3=Katharine T.|last4=Proskurowski|first4=Giora|last5=Kelley|first5=Deborah S.|last6=Kawka|first6=Orest E.|last7=Goodlett|first7=David R.|last8=Hansell|first8=Dennis A.|last9=Morris|first9=Robert M.|date=December 2013|title=Sulfur oxidizers dominate carbon fixation at a biogeochemical hot spot in the dark ocean|journal=The ISME Journal|language=en|volume=7|issue=12|pages=2349–2360|doi=10.1038/ismej.2013.113|issn=1751-7370|pmc=3834846|pmid=23842654}}</ref> These types of studies will contribute to further understanding of deep sea [[carbon cycling]] and the connectivity between deep ocean and surface carbon cycling. The expansion of [[omics]] technologies has accelerated research on the diversity of methylotrophs, their abundance and activity in a variety of [[environmental niche]]s, and their interspecies interactions.<ref>{{Cite journal|last=Chistoserdova|first=Ludmila|date=2017|title=Application of Omics Approaches to Studying Methylotrophs and Methylotroph Communities|journal=Current Issues in Molecular Biology|volume=24|language=en|pages=119–142|doi=10.21775/cimb.024.119|pmid=28686571|issn=1467-3037|doi-access=free}}</ref> Further research must be done on these bacteria and the overall effect of bacterial drawdown and transformation of one-carbon compounds in the ocean. Current evidence points to a potentially substantial role for methylotrophs in the ocean in the cycling of carbon but also potentially in the global nitrogen, sulfur and phosphorus cycles as well as the air-sea flux of carbon compounds, which could have global climate impacts.<ref name=":14" />
Die Verwendung von Methylotrophen in der [[Landwirtschaft]] ist eine weitere Möglichkeit potenzieller Auswirkungen auf die Umwelt. Herkömmliche chemische [[Dünger|Düngemittel]] liefern zwar Nährstoffe, die im Boden nicht oder nicht ausreichend verfügbar sind, können jedoch negative Auswirkungen auf die Umwelt haben und sind in der Herstellung teuer.<ref name="Kumar2016"/>
Methylotrophe haben ein großes Potenzial als alternative [[Biodünger]] und Bioinokulantien,<ref group="A.">Bioinokulantien, auch Mikrobielle Inokulantien oder Bodeninokulantien genannt, sind landwirtschaftliche Zusatzstoffe, die nützliche rhizosphärische ([[Knöllchenbakterien]] im weiteren Sinn) oder endophytische (im Innern der Pflanzen lebende) Mikroben zur Förderung der Pflanzengesundheit einsetzen.</ref> da sie in der Lage sind, [[Mutualismus|mutualistische Beziehungen]] mit verschiedenen Pflanzenarten einzugehen.<ref name="Iguchi2015"/> Methylotrophe Pflanzen versorgen die Pflanzen mit Nährstoffen wie löslichem [[Phosphor]] und gebundenem [[Stickstoff]] und spielen auch eine Rolle bei der Aufnahme der genannten Nährstoffe.<ref name="Kumar2016" /><ref name="Iguchi2015" />
Darüber hinaus können sie Pflanzen durch die Produktion von [[Phytohormon]]en dabei helfen, auf Umwelt[[stressor]]en zu reagieren.<ref name="Kumar2016" />
Methylotrophes Wachstum hemmt zudem das Wachstum schädlicher Pflanzenpathogene und führt zu systemischer Resistenz.<ref name="Iguchi2015" />
Methylotrophe Hefen (''Ogataea polymorpha'' syn. ''Hansenula polymorpha'') lassen sich seit dem Jahr 2000 zur Reinigung von [[Schmutzwasser]] einsetzen.<ref name="Wegat2022"/>
Methylotrophe Biodünger, die entweder allein oder zusammen mit chemischen Düngemitteln verwendet werden, erhöhen nachweislich sowohl den Ertrag als auch die Qualität der Pflanzen, ohne dass Nährstoffe verloren gehen.<ref name="Kumar2016" />
Eine [[Nachhaltigkeit|nachhaltige]] Produktion von [[Kraftstoff]]en (z.&nbsp;B. [[Isopentanol]]) und anderen [[Chemikalie]]n durch [[Gentechnisch]] veränderte methylotrophe Hefen wurde 2022 von Vanessa Wegat ''et&nbsp;al.'' untersucht, insbesondere im Hinblick auf das angestrebte [[1,5-Grad-Ziel]] für die [[globale Erwärmung]]. In dieser Studie wurden insbesondere auch neue, [[Synthetische Biologie|synthetische]] methylotrophe Stoffwechselwege in Betracht gezogen.<ref name="Wegat2022"/>


== Anmerkungen ==
The use of methylotrophs in the agricultural sector is another way in which they can potentially impact the environment. Traditional [[chemical fertilizer]]s supply nutrients not readily available from soil but can have some negative environmental impacts and are costly to produce.<ref name="Kumar 2016">{{cite journal | doi = 10.1007/s11274-016-2074-8 | pmid=27263015 | volume=32 | issue=7 | pages=120 | title=Methylotrophic bacteria in sustainable agriculture | year=2016 | journal=World Journal of Microbiology and Biotechnology | last1 = Kumar | first1 = Manish | last2 = Singh Tomar | first2 = Rajesh | last3 = Lade | first3 = Harshad | last4 = Paul | first4 = Diby| s2cid=23566439 }}</ref> Methylotrophs have high potential as alternative [[biofertilizer]]s and [[Microbial inoculant|bioinoculants]] due to their ability to form mutualistic relationships with several plant species.<ref name="Iguchi 2015">{{cite journal | last1 = Iguchi | first1 = H. | last2 = Yurimoto | first2 = H. | last3 = Sakai | first3 = Y. | year = 2015 | title = Interactions of methylotrophs with plants and other heterotrophic bacteria | journal = Microorganisms | volume = 3 | issue = 2| pages = 137–151 | doi = 10.3390/microorganisms3020137 | pmid = 27682083 | pmc = 5023238 | doi-access = free }}</ref> Methylotrophs provide plants with nutrients such as soluble phosphorus and fixed nitrogen and also play a role in the uptake of said nutrients.<ref name="Kumar 2016" /><ref name="Iguchi 2015" /> Additionally, they can help plants respond to environmental stressors through the production of [[Plant hormone|phytohormones]].<ref name="Kumar 2016" /> Methylotrophic growth also inhibits the growth of harmful plant pathogens and induces systemic resistance.<ref name="Iguchi 2015" /> Methylotrophic biofertilizers used either alone or together with chemical fertilizers have been shown to increase both crop yield and quality without loss of nutrients.<ref name="Kumar 2016" />
<references group="A."/>


== Einzelnachweise ==
==References==
<references />
<references>
<ref name="SdW_Methylotroph">
[https://www.spektrum.de/lexikon/biologie-kompakt/methylotrophe/7562 Methylotrophe]. Kompaktlexikon der Biologie; auf: [[spektrum.de]].
</ref>
<ref name="SdW_Methanotroph">
[https://www.spektrum.de/lexikon/biologie-kompakt/methanotrophe/7554 Methanotrophe]. Kompaktlexikon der Biologie; auf: [[spektrum.de]].
</ref>
<ref name="SdW_RuMP">
[https://www.spektrum.de/lexikon/biologie/ribulosemonophosphat-zyklus/56988 Ribulosemonophosphat-Zyklus]. Lexikon der Biologie. Auf: [[spektrum.de]].
</ref>
<ref name="NCBI_Mmm">
[[National Center for Biotechnology Information|NCBI]] Taxonomy Browser: [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Tree&id=421&lvl=3&lin=f&keep=1&srchmode=1&unlock Methylomonas methanica]! Details: [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Info&id=421&srchmode=1 ''Methylomonas methanica'' (ex Söhngen 1906) Whittenbury and Krieg 1984] (species).
</ref>
<ref name="NCBI_Mbp">
[[National Center for Biotechnology Information|NCBI]] Taxonomy Browser: [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Info&id=1439726&srchmode=1 ''Methylobrevis pamukkalensis'' Poroshina et&nbsp;al. 2015] (species).
</ref>
<ref name="NCBI_Mv">
[[National Center for Biotechnology Information|NCBI]] Taxonomy Browser: [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Tree&id=81682&lvl=3&p=has_linkout&p=blast_url&p=genome_blast&keep=1&srchmode=1 Methylovorus], Details: [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Info&id=81682&srchmode=1 ''Methylovorus'' Govorukhina and Trotsenko 1991 emend. Doronina et&nbsp;al. 2005] (species).
</ref>
<ref name="NCBI_o_Saccharom">
[[National Center for Biotechnology Information|NCBI]] Taxonomy Browser: [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Tree&id=4892&lvl=2&p=has_linkout&p=blast_url&p=genome_blast&lin=f&keep=1&srchmode=1 Saccharomycetales], Details: [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Info&id=4892&srchmode=1 Saccharomycetales] (order)
</ref>
<ref name="NCBI_Opm">
[[National Center for Biotechnology Information|NCBI]] Taxonomy Browser: [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Info&id=460523&srchmode=3 ''Ogataea polymorpha'' (Morais & M.H. Maia) Y. Yamada, K. Maeda & Mikata, 1994] (specie), [[basionym]]: Hansenula polymorpha Morais & M.H. Maia, 1959.
</ref>
<ref name="Hairu">
[https://www.hairuichem.com/en/53010-97-2.html Arabino-3-hexulose-6-phosphate]. Auf: Hairu (hairuchem.com).
</ref>
<ref name="MetaCyc">
Pathway: formaldehyde assimilation II (assimilatory RuMP Cycle). Auf: MetaCyc (biocyc.org/META)
* [https://biocyc.org/META/NEW-IMAGE?type=PATHWAY&object=PWY-1861 Main Compunds Only], [https://web.archive.org/web/20211120030249/https://biocyc.org/META/NEW-IMAGE?type=PATHWAY&object=PWY-1861 Memento] im Webarchiv (web.archive.org) vom 20. Mai 2021.
* [https://biocyc.org/META/NEW-IMAGE?type=PATHWAY&object=PWY-1861&detail-level=3 Main compund structures]<!--, [https://archive.li/7RUqV Memento] im Webarchiv (archive.li) vom 12.. August 2023.--Auflösung zu schlecht, archive.org kann diese URL nicht archivieren-->
</ref>
<ref name="CAS_53010-97-2">
[https://commonchemistry.cas.org/detail?cas_rn=53010-97-2 CAS 53010-97-2]. D-''arabino''-3-Hexulose, 6-(dihydrogen phosphate). Auf: [[Chemical Abstracts Service]].
</ref>
<ref name="CAS_60802-29-1">
[https://commonchemistry.cas.org/detail?cas_rn=60802-29-1 CAS 60802-29-1]. Pentulose, 5-phosphate. Auf: [[Chemical Abstracts Service]].
</ref>
<ref name="CAS_51-92-3">
[https://commonchemistry.cas.org/detail?cas_rn=51-92-3 CAS 51-92-3]. Tetramethylammonium. Auf: [[Chemical Abstracts Service]].
</ref>
<ref name="CAS_676-84-6">
[https://commonchemistry.cas.org/detail?cas_rn=676-84-6 CAS 676-84-6]. Trimethylsulfonium. Auf: [[Chemical Abstracts Service]].
</ref>
<ref name="EC_4.1.2.43">
{{EC|4.1.2.43}} 3-hexulose-6-phosphate synthase (Hexulosephosphat-Synthase, HPS). Auf: [[Expasy]].
</ref>
<!--
<ref name="EC_5.3.1.27">
{{EC|5.3.1.27}} 6-phospho-3-hexuloisomerase (Hexulosephosphat-Isomerase, PHI). Auf: [[Expasy]].
</ref>
-->
<ref name="EC_1.1.2.7">
{{EC|1.1.2.7}} methanol dehydrogenase (cytochrome c), MDH (Hexulosephosphat-Isomerase). Auf: [[Expasy]].
</ref>
<!------------------------------------------>
<ref name="Agafonova2020">
Nadezhda V. Agafonova, Elena N. Kaparullina, Denis S. Grouzdev and Nina V. Doronina: ''&#x200B;''Hansschlegelia quercus'' sp. nov., a novel methylotrophic bacterium isolated from oak buds.'' In: ''International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology'', Band 70, Nr.&nbsp;8, 15. Juli 2020, S.&nbsp;4646&#x200B;–4652; [[doi:10.1099/ijsem.0.004323]].
</ref>
<ref name="Anthony1975">
C. Anthony: ''The biochemistry of methylotrophic micro-organisms''. In: ''Science Progress'', Band 62, Nr.&nbsp;246, Oxford, Sommer 1975, S.&nbsp;167-206; {{JSTOR|43420299}}, PMID 810884.
</ref>
<ref name="Anthony1982">
C. Anthony: ''The Biochemistry of Methylotrophs''. In: ''Academic Press'', London, New York, 1. Juni 1982, Band 160, Nr.&nbsp;1–2, August 1983, S.&nbsp;2-3; [http://www.chris-anthony.co.uk/pdf_files/Biochemistryofmeths.pdf PDF]. Dazu:
* P.&nbsp;H. Clark: [https://febs.onlinelibrary.wiley.com/doi/pdf/10.1016/0014-5793(83)80989-2 Vorwort], [[doi:10.1016/0014-5793(83)80989-2]].
* Review ''Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology'', Band 75, Nr.&nbsp;3, 1983, Page 497; [[doi:10.1016/0300-9629(83)90116-0]].
</ref>
<ref name="Beale2011">
{{Cite journal
|last1=Beale|first1=Rachael |last2=Liss|first2=Peter S. |last3=Dixon|first3=Joanna L. |last4=Nightingale|first4=Philip D. |date=2011-11-07 |title=Quantification of oxygenated volatile organic compounds in seawater by membrane inlet-proton transfer reaction/mass spectrometry |<!--url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0003267011011226 |-->journal=Analytica Chimica Acta |language=en |volume=706|issue=1 |pages=128–134 |doi=10.1016/j.aca.2011.08.023 |pmid=21995919 |issn=0003-2670 }}
</ref>
<ref name="Borrel2011">
Guillaume Borrel, Didier Jézéquel, Corinne Biderre-Petit, Nicole Morel-Desrosiers, Jean-Pierre Morel, Pierre Peyret, Gérard Fonty, Anne-Catherine Lehours: ''Production and consumption of methane in freshwater lake ecosystems''. In: ''Research in Microbiology'', Band 162, Nr.&nbsp;9, November 2011, S.&nbsp;832-847, ISSN 0923-2508; [[doi:10.1016/j.resmic.2011.06.004]].
</ref>
<ref name="Champigny1976">
{{Cite journal
|last1=Champigny|first1=Marie-Louise |last2=Bismuth|first2=Evelyne |date=1976-01-01 |title=Role of Photosynthetic Electron Transfer in Light Activation of Calvin Cycle Enzymes |journal=Physiologia Plantarum |language=en |volume=36|issue=1 |pages=95–100 |doi=10.1111/j.1399-3054.1976.tb05034.x |issn=1399-3054 }}
</ref>
<ref name="Chistoserdova1994">
{{Cite journal
|last1=Chistoserdova|first1=L.&nbsp;V. |last2=Lidstrom|first2=M.&nbsp;E. |date=1994-12-01 |title=Genetics of the serine cycle in Methylobacterium extorquens AM1: identification, sequence, and mutation of three new genes involved in C1 assimilation, orf4, mtkA, and mtkB |journal=Journal of Bacteriology |language=en |volume=176|issue=23 |pages=7398&#x200B;–7404 |doi=10.1128/jb.176.23.7398-7404.1994 |issn=0021-9193 |pmid=7961516 |pmc=197134 }}
</ref>
<ref name="Chistoserdova2007">
Ludmila Chistoserdova, Gregory J. Crowther, Julia A. Vorholt, Elizabeth Skovran, Jean-Charles Portais, Mary E. Lidstrom: ''Identification of a Fourth Formate Dehydrogenase in ''Methylobacterium extorquens'' AM1 and Confirmation of the Essential Role of Formate Oxidation in Methylotrophy''. In: ''Journal of Bacteriology'', Band 189, Nr.&nbsp;24, 15. Dezember 2007, ISSN 0021-9193, S.&nbsp;9076&#x200B;–9081; [[doi:10.1128/jb.01229-07]], PMID 17921299, {{PMC|2168636}} ({{enS}}).
</ref>
<ref name="Chistoserdova2017">
{{Cite journal
|last=Chistoserdova|first=Ludmila |date=2017-07-06 |title=Application of Omics Approaches to Studying Methylotrophs and Methylotroph Communities |journal=Current Issues in Molecular Biology |volume=24|language=en |pages=119–142 |doi=10.21775/cimb.024.119 |pmid=28686571 |issn=1467-3037 }}
</ref>
<ref name="Colby1979">
{{Cite journal
|author=J. Colby, H. Dalton, Whittenbury|first3=R. |date=1979 |title=Biological and Biochemical Aspects of Microbial Growth on C1 Compounds |journal=Annual Review of Microbiology |volume=33|issue=1 |pages=481–517 |doi=10.1146/annurev.mi.33.100179.002405 |pmid=386931 |language=en }}
</ref>
<ref name="Dinasquet2018">
{{Cite journal
|last1=Dinasquet|first1=Julie |last2=Tiirola|first2=Marja |last3=Azam|first3=Farooq |date=2018-09-06 |title=Enrichment of Bacterioplankton Able to Utilize One-Carbon and Methylated Compounds in the Coastal Pacific Ocean |journal=Frontiers in Marine Science |volume=5 |pages=307 |doi=10.3389/fmars.2018.00307 |issn=2296-7745|language=en }}
</ref>
<ref name="Duine1984">
{{Cite journal
|author=J.&nbsp;A. Duine, J. Frank, M.&nbsp;P.&nbsp;J. Berkhout |date=1984-03-26 |title=NAD-dependent, PQQ-containing methanol dehydrogenase: a bacterial dehydrogenase in a multienzyme complex |journal=FEBS Letters |language=en |volume=168 |issue=2 |pages=217–221 |doi=10.1016/0014-5793(84)80249-5 |pmid=6373362 |issn=1873-3468 }}
</ref>
<ref name="Faria2006">
{{Cite journal
|author=Daphne Faria, LokaBharathi Adikesavan Ponnapakkam |date=2006-04 |title=Marine and estuarine methylotrophs: their abundance, activity and identity <!--|url=https://www.jstor.org/stable/24091957 -->|journal=Current Science |volume=90 |issue=7 |pages=984–989 |jstor=24091957 |issn=0011-3891 |language=en }} [https://www.researchgate.net/publication/27666930 ResearchGate].
</ref>
<ref name="Firsova2009">
Julia Firsova, Nina Doronina, Elke Lang, Cathrin Spröer, Stéphane Vuilleumier, Yuri Trotsenko: ''&#x200B;''Ancylobacter dichloromethanicus'' sp. nov. – a new aerobic facultatively methylotrophic bacterium utilizing dichloromethane''. In: ''Systematic and Applied Microbiology'', Band 32, Nr.&nbsp;4, Juli 2009, S.&nbsp;227–232; [[doi:10.1016/j.syapm.2009.02.002]], PMID 19346095.
</ref>
<ref name="Gleeson1988">
{{Cite journal
|last1=Gleeson|first1=Martin A. |last2=Sudbery|first2=Peter E. |date=1988-03-01 |title=The methylotrophic yeasts |journal=Yeast |language=en |volume=4 |issue=1 |pages=1–15 |doi=10.1002/yea.320040102 |issn=1097-0061 }} [https://typeset.io/papers/the-methylotrophic-yeasts-koc0dpva9f SciSpace].
</ref>
<ref name="Gonchar2002">
{{Cite journal
|last1=Gonchar|first1=Mykhailo |last2=Maidan|first2=Mykola |last3=Korpan|first3=Yaroslav |last4=Sibirny|first4=Volodymyr |last5=Kotylak|first5=Zbigniew |last6=Sibirny|first6=Andrei |date=2002-08-01 |title=Metabolically engineered methylotrophic yeast cells and enzymes as sensor biorecognition elements |journal=FEMS Yeast Research |volume=2 |issue=3 |pages=307–314 |doi=10.1016/s1567-1356(02)00124-1 |pmid=12702280 |issn=1567-1356 |language=en}}
</ref>
<ref name="Govorukhina1991">
Natalia I. Govorukhina, Yuri A. Trotsenko: ''&#x200B;''Methylovorus'', a New Genus of Restricted Facultatively Methylotrophic Bacteria Free.'' In: ''International Journal of Systematic And Evolutionary Microbiology'', Band 41, Nr.&nbsp;1, 1. Januar 1991; [[doi:10.1099/00207713-41-1-158]].
</ref>
<ref name="Hanson1996">
{{Cite journal
|last1=Hanson|first1=R.&nbsp;S.&nbsp;H. |last2=Hanson|first2=Thomas E. |date=1996-06-01 |title=Methanotrophic bacteria |journal=Microbiological Reviews |language=en |volume=60 |issue=2 |pages=439–471 |doi=10.1128/mr.60.2.439-471.1996 |issn=1092-2172 |pmid=8801441 |pmc=239451 }} [https://www.researchgate.net/publication/14402740 ResearchGate].
</ref>
<ref name="Holmes1997">
Andrew J. Holmes, D.&nbsp;P. Kelly, Simon C. Baker, A.&nbsp;S. Thompson, Paolo De Marco, Elizabeth M. Kenna, J. Colin Murrell: ''Methylosulfonomonas methylovora'' gen. nov., sp. nov., and ''Marinosulfonomonas methylotropha'' gen. nov., sp. nov.: ''novel methylotrophs able to grow on methanesulfonic acid''. In: ''Archives of Microbiology'', Band 167, Nr.&nbsp;1, 1. Januar 1997, ISSN 0302-8933, S.&nbsp;46–53; [[doi:10.1007/s002030050415]], PMID 9000341.
</ref>
<ref name="Iguchi2015">
{{cite journal
|last1=Iguchi |first1=Hiroyuki |last2=Yurimoto |first2=Hiroya |last3=Sakai |first3=Yasuyoshi |year=2015-04-02 |title=Interactions of methylotrophs with plants and other heterotrophic bacteria |journal=MDPI Microorganisms |volume=3 |issue=2| pages=137–151 |doi=10.3390/microorganisms3020137 |pmid=27682083 |pmc=5023238 |language=en }}
</ref>
<ref name="Ivanova2007">
Ekaterina Ivanova, Nina Doronina, Yuri Trotsenko: ''&#x200B;''Hansschlegelia plantiphila'' gen. nov. sp. nov., a new aerobic restricted facultative methylotrophic bacterium associated with plants.'' In: ''Systematic and Applied Microbiology'', Band 30, Nr.&nbsp;6, 10. September 2007, S.&nbsp;444–452; [[doi:10.1016/j.syapm.2007.03.001]].
</ref>
<ref name="Kelly1994">
{{Cite journal
|last1=Kelly|first1=Don P. |last2=Baker|first2=Simon C. |last3=Trickett|first3=Jim |last4=Davey|first4=Margaret |last5=Murrell|first5=J. Colin |date=1994-06-01 |title=Methanesulphonate utilization by a novel methylotrophic bacterium involves an unusual monooxygenase |journal=Microbiology |volume=140 |issue=6 |pages=1419–1426 |doi=10.1099/00221287-140-6-1419 |language=en }}
</ref>
<ref name="Klei2006">
{{Cite journal
|last1=Klei|first1=Ida J. van der |last2=Yurimoto|first2=Hiroya |last3=Sakai|first3=Yasuyoshi |last4=Veenhuis|first4=Marten |title=The significance of peroxisomes in methanol metabolism in methylotrophic yeast|journal=Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research |volume=1763 |issue=12 |pages=1453–1462 |doi=10.1016/j.bbamcr.2006.07.016 |pmid=17023065 |date=2006-12 |language=en }} [https://pure.rug.nl/ws/files/2868233/2006BiochimBiophysActavdKlei2.pdf PDF].
</ref>
<ref name="Kumar2016">
{{cite journal
|last1=Kumar |first1=Manish |last2=Singh Tomar |first2=Rajesh |last3=Lade |first3=Harshad |last4=Paul |first4=Diby |doi=10.1007/s11274-016-2074-8 |pmid=27263015 |volume=32 |issue=7 |pages=120 |title=Methylotrophic bacteria in sustainable agriculture |year=2016 |journal=World Journal of Microbiology and Biotechnology |language=en }}
</ref>
<ref name="Madhaiyan">
Munusamy Madhaiyan, Selvaraj Poonguzhali, Soon-Wo Kwon, Tong-Min Sa: ''&#x200B;''Methylophilus rhizosphaerae'' sp. nov., a restricted facultative methylotroph isolated from rice rhizosphere soil.'' In: ''International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology'', Band 59, Nr.&nbsp;11, 1. November 2009, S.&nbsp;2904&#x200B;–2908; [[doi:10.1099/ijs.0.009811-0]].
</ref>
<ref name="Mattes2013">
{{Cite journal
|last1=Mattes|first1=Timothy E.|last2=Nunn|first2=Brook L.|last3=Marshall|first3=Katharine T.|last4=Proskurowski|first4=Giora|last5=Kelley|first5=Deborah S.|last6=Kawka|first6=Orest E.|last7=Goodlett|first7=David R.|last8=Hansell|first8=Dennis A.|last9=Morris|first9=Robert M.|date=December 2013|title=Sulfur oxidizers dominate carbon fixation at a biogeochemical hot spot in the dark ocean|journal=The ISME Journal|language=en|volume=7|issue=12|pages=2349–2360|doi=10.1038/ismej.2013.113|issn=1751-7370|pmc=3834846|pmid=23842654}}
</ref>
<ref name="Murray1989">
{{Cite journal
|last1=Murray|first1=William D.|last2=Duff|first2=Sheldon J. B.|last3=Lanthier|first3=Patricia H.|date=1989-11-01|title=Induction and stability of alcohol oxidase in the methylotrophic yeast Pichia pastoris|journal=Applied Microbiology and Biotechnology |language=en |volume=32 |issue=1 |pages=95–100 |doi=10.1007/BF00164829 |issn=0175-7598 }}
</ref>
<ref name="Neufeld2008">
{{Cite journal
|last1=Neufeld|first1=Josh D. |last2=Boden|first2=Rich |last3=Moussard|first3=Hélène |last4=Schäfer|first4=Hendrik |last5=Murrell|first5=J. Colin |date=2008-12-01 |title=Substrate-Specific Clades of Active Marine Methylotrophs Associated with a Phytoplankton Bloom in a Temperate Coastal Environment |journal=Applied and Environmental Microbiology |volume=74 |issue=23 |pages=7321&#x200B;–7328 |doi=10.1128/AEM.01266-08 |pmc=2592898 |pmid=18849453 |bibcode=2008ApEnM..74.7321N |language=en }}
</ref>
<ref name="Nguyen2017">
{{cite journal
|last1=Nguyen|first1=Ngoc-Loi |last2=Yu|first2=Woon-Jong |last3=Yang|first3=Hye-Young |last4=Kim|first4=Jong-Geol |last5=Jung|first5=Man-Young |last6=Park|first6=Soo-Je |last7=Roh|first7=Seong-Woon |last8=Rhee|first8=Sung-Keun |title=A novel methanotroph in the genus Methylomonas that contains a distinct clade of soluble methane monooxygenase|journal=Journal of Microbiology |date=2017-09-28 |volume=55 |issue=10 |pages=775–782 |doi=10.1007/s12275-017-7317-3 |pmid=28956349 |language=en }}
</ref>
<ref name="Oremland1989">
{{Cite journal
|last1=Oremland|first1=Ronald S. |last2=Kiene|first2=Ronald P. |last3=Mathrani|first3=Indra |last4=Whiticar|first4=Michael J. |last5=Boone|first5=David R. |date=1989-04-01 |title=Description of an Estuarine Methylotrophic Methanogen Which Grows on Dimethyl Sulfide|journal=Applied and Environmental Microbiology |language=en |volume=55 |issue=4 |pages=994–1002 |doi=10.1128/AEM.55.4.994-1002.1989 |issn=0099-2240 |pmid=16347900 |pmc=184236 |bibcode=1989ApEnM..55..994O }}
</ref>
<ref name="Poroshina2015">
Maria N. Poroshina, Yuri A. Trotsenko, Nina V. Doronina: ''&#x200B;''Methylobrevis pamukkalensis'' gen. nov., sp. nov., a halotolerant restricted facultative methylotroph isolated from saline water''. In: ''International Journal of Systematic And Evolutionary Microbiology'', Band 65, Nr.&nbsp;Pt_4, 1. April 2015; [[doi:10.1099/ijs.0.000105]].
</ref>
<ref name="Quayle1980">
{{Cite journal
|last=Quayle|first=J.&nbsp;R. |date=1980-02-01 |title=Microbial assimilation of C1 compounds |journal=Biochemical Society Transactions |language=en |volume=8 |issue=1 |pages=1–10 |doi=10.1042/bst0080001 |issn=0300-5127 |pmid=6768606 }}
</ref>
<ref name="Raines2003">
{{Cite journal
|last=Raines|first=Christine A. |date=2003-01-01 |title=The Calvin cycle revisited |journal=Photosynthesis Research |language=en |volume=75 |issue=1 |pages=1–10 |doi=10.1023/A:1022421515027 |pmid=16245089 |issn=0166-8595 }}
</ref>
<ref name="Reed1987">
{{Cite journal
|last1=Reed|first1=William M. |last2=Dugan|first2=Patrick R. |date=1987 |title=Isolation and Characterization of the Facultative Methylotroph Mycobacterium ID-Y|journal=Microbiology|volume=133|issue=5|pages=1389–1395|doi=10.1099/00221287-133-5-1389|pmid=3655742|language=en }}
</ref>
<ref name="Ross2017">
{{Cite journal
|last1=Ross|first1=Matthew O. |last2=Rosenzweig|first2=Amy C. |date=2017-04-01 |title=A tale of two methane monooxygenases |journal=Journal of Biological Inorganic Chemistry |language=en |volume=22 |issue=2–3 |pages=307–319 |doi=10.1007/s00775-016-1419-y |pmid=27878395 |issn=0949-8257 |pmc=5352483 }}
</ref>
<ref name="Taylor1980">
{{Cite journal
|last1=Taylor|first1=Stephen C.|last2=Dalton|first2=Howard |last3=Dow|first3=Crawford S. |date=1980-07-01 |title=Purification and initial characterisation of ribulose 1,5-bisphosphate carboxylase from Methylococcus capsulatus (Bath) |journal=FEMS Microbiology Letters |volume=8 |issue=3 |pages=157–160 |doi=10.1016/0378-1097(80)90021-x |language=en }}
</ref>
<ref name="Taylor1981">
{{Cite journal
|last1=Taylor|first1=Stephen C. |last2=Dalton|first2=Howard |last3=Dow|first3=Crawford S. |date=1981-01-01 |title=Ribulose-1,5-bisphosphate Carboxylase/Oxygenase and Carbon Assimilation in Methylococcus capsulatus (Bath) |journal=Microbiology |volume=122 |issue=1 |pages=89–94 |doi=10.1099/00221287-122-1-89 |language=en }}
</ref>
<ref name="Verseveld1978">
{{Cite journal
|last1=Verseveld|first1=H.&nbsp;W.&nbsp;Van |last2=Stouthamer|first2=A.&nbsp;H. |date=1978-07-01 |title=Electron-transport chain and coupled oxidative phosphorylation in methanol-grown Paracoccus denitrificans |journal=Archives of Microbiology |language=en |volume=118 |issue=1 |pages=13–20 |doi=10.1007/BF00406068 |pmid=29587 |issn=0302-8933 }}
</ref>
<ref name="Vorholt2002">
{{Cite journal
|last=Vorholt|first=Julia A. |date=2002-10-01 |title=Cofactor-dependent pathways of formaldehyde oxidation in methylotrophic bacteria |journal=Archives of Microbiology |language=en |volume=178 |issue=4 |pages=239–249 |doi=10.1007/s00203-002-0450-2 |pmid=12209256 |issn=0302-8933 }}
</ref>
<ref name="Waites1981">
{{Cite journal|last1=Waites|first1=M.&nbsp;J. |last2=Quayle|first2=J.&nbsp;R. |date=1981-06-01 |title=The Interrelation between Transketolase and Dihydroxyacetone Synthase Activities in the Methylotrophic Yeast Candida boidinii |journal=Microbiology |volume=124 |issue=2 |pages=309–316 |doi=10.1099/00221287-124-2-309 |pmid=6276498 |language=en }}
</ref>
<ref name="Wegat2022">
Vanessa Wegat, Jonathan T. Fabarius, Volker Sieber: ''Synthetic methylotrophic yeasts for the sustainable fuel and chemical production''. In: ''BMC'': ''Biotechnology for Biofuels and Bioproducts'', Band 15, Nr.&nbsp;113, 22. Oktober 2022; [[doi:10.1186/s13068-022-02210-1]]. Siehe insbes. auch [https://biotechnologyforbiofuels.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13068-022-02210-1/figures/3 Fig.&nbsp;3]: {{lang|en|Metabolic access points of synthetic and native methylotrophic pathways into glycolytic yeast metabolism}}.<br/><small>Anm. zu Fig.&nbsp;1: Lt. NCBI-Taxonomie ist ''Hansenula polymorpha'' [[Basionym]] für die [[Hefen|Hefe]] mit gültiger Bezeichnung ''Ogataea polymorpha''.</small>
</ref>
<ref name="Yang2014">
{{Cite journal
|last1=Yang|first1=M. |last2=Beale|first2=R. |last3=Liss|first3=P. |last4=Johnson|first4=M. |last5=Blomquist|first5=B. |last6=Nightingale|first6=P. |date=2014-07-24 |title=Air–sea fluxes of oxygenated volatile organic compounds across the Atlantic Ocean |url=https://acp.copernicus.org/articles/14/7499/2014/ |journal=Atmospheric Chemistry and Physics |language=en |volume=14 |issue=14 |pages=7499&#x200B;–7517 |doi=10.5194/acp-14-7499-2014 |bibcode=2014ACP....14.7499Y |issn=1680-7316 }}
</ref>
<ref name="Yurimoto2005">
{{Cite journal
|last1=Yurimoto|first1=Hiroya |last2=Kato|first2=Nobuo |last3=Sakai|first3=Yasuyoshi |date=2005-01-01 |title=Assimilation, dissimilation, and detoxification of formaldehyde, a central metabolic intermediate of methylotrophic metabolism |journal=The Chemical Record |language=en |volume=5 |issue=6 |pages=367–375 |doi=10.1002/tcr.20056 |pmid=16278835 |issn=1528-0691 }}
</ref>
<ref name="Yurimoto2011">
{{Cite journal
|last1=Yurimoto|first1=Hiroya |last2=Oku|first2=Masahide |last3=Sakai|first3=Yasuyoshi |date=2011 |title=Yeast Methylotrophy: Metabolism, Gene Regulation and Peroxisome Homeostasis |journal=International Journal of Microbiology |language=en |volume=2011-07-07 |pages=101298 |doi=10.1155/2011/101298 |pmid=21754936 |pmc=3132611 |issn=1687-918X }}
</ref>
</references>


[[Kategorie:Mikrobiologie]]
[[Category:Microorganisms]]
[[Category:Methane|Troph]]
[[Category:Methanol|Troph]]
[[Category:Organic chemistry]]
[[Category:Carbon]]

Version vom 13. August 2023, 15:56 Uhr

Methylotrophe Organismen (kurz Methylotrophe) sind eine vielfältige Gruppe von Mikroorganismen, die reduzierte Verbindungen mit einem (einzigen) Kohlenstoff-Atom (C1-Verbindungen) wie Methanol (CH3OH), Methan (CH4), Formiat oder Kohlenmonoxid (CO) als Kohlenstoffquelle für ihr Wachstum nutzen können (Assimilation). Dabei sind Verbindungen mit mehreren Kohlenstoff-Atomen eingeschlossen, wenn diese keine direkten Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindungen[A. 1] enthalten, wie beispielsweise Dimethylether (H3C-O-CH3 bzw. gleichwertig (CH3)2O) und Dimethylamin (CH3)2NH). Mitglieder dieser Gruppe sind beispielsweise Mikroorganismen, die reduzierte Ein-Kohlenstoff-Verbindungen mit Hilfe von Kohlendioxid (CO2) über den Ribulose-Biphosphat-Weg (Calvin-Zyklus) zu assimilieren.[1][2][3]

Diese Organismen sind nicht mit den Methanogenen (Methanbildnern) zu verwechseln, die im Gegenteil Methan als Nebenprodukt aus verschiedenen Ein-Kohlenstoff-Verbindungen wie Kohlendioxid erzeugen. Einige methylotrophe Organismen können das Treibhausgas Methan dagegen abbauen und werden in diesem speziellen Fall auch als methanotrophe Organismen bezeichnet.[4]

Wegen der Menge, der Reinheit und des niedrigen Preises des zur Verfügung stehenden Methanols sind Methanol-verwertende Methylotrophe beispielsweise ideale Organismen für die Produktion von Aminosäuren, Vitaminen, Einzellerproteinen (englisch single cell proteins), rekombinanter Proteine (englisch recombinant proteins),[A. 2] Coenzymen und Cytochromen. Sie könne daher sogar besser geeignet als die üblicherweise verwendeten Zellkulturen, die mit Zuckern „gefüttert“ werden.

Stoffwechsel

Allgemeine Schritte des methylotrophen Stoffwechsels mit Darstellung von vie bekannten Stoffwechselwegen zur methylotrophen Assimilation. Der allgemeine katabolische Weg ist ebenfalls dargestellt. Q steht für ein membrangebundenes Chinon. Methan-Monooxygenase (MMO) und Formiat-Dehydrogenase (FDH) können membrangebunden oder frei im Zytoplasma (löslich) vorhanden sein, während Methanol-Dehydrogenase (MDH) und Formaldehyd-Dehydrogenase (FALDH) immer membranassoziiert sind.

Das wichtigste Zwischenprodukt des methylotrophen Stoffwechsels ist Formaldehyd, über das entweder in assimilatorische oder dissimilatorische Stoffwechselwege geleitet werden können.[5] Methylotrophe produzieren Formaldehyd durch Oxidation von Methanol und/oder Methan. Für die Methanoxidation ist das Enzym Methan-Monooxygenase (MMO) erforderlich.[6][7] Methylotrophe Organismen mit diesem Enzym werden als Methanotrophe bezeichnet.[4] Die Oxidation von Methan (oder Methanol) kann assimilatorisch oder dissimilatorisch (katabolisch) erfolgen (siehe Abbildung). Im Falle der dissimilatorischen Oxidation wird das Formaldehyd-Zwischenprodukt vollständig oxidiert zu CO2, wobei ein Reduktionsmittel und Energie frei werden.[8][9] Bei der assimilatorischen Oxidation wird das Formaldehyd-Zwischenprodukt für die Synthese einer Dreifach-Kohlenstoff-Verbindung (C3-Verbindug) benutzt, mit deren Hilfe dann die Produktion von Biomasse erfolgt.[5][10] Viele Methylotrophe verwenden Multikohlenstoffverbindungen (Cn) für den Aufbau von körpereigenen Stoffen Anabolismus und beschränken ihre Verwendung von Formaldehyd auf dissimilatorische Prozesse, während im Spezialfall der Methanotrophen diese sich im Allgemeinen auf den C1-Stoffwechsel beschränken.[5][8]

Verbindungen, die bekannterweise den methylotrophen Stoffwechsel unterstützen[10][11][12][13][14]
Ein-Kohlenstoff-Verbindungen (C1) Chemische Formel Mehrfach-Kohlenstoff-Verbindungen (Cn) Chemische Formel
Kohlenmonoxid Dimethylether (DME)
Formaldehyd Dimethylamin
Formamid Dimethylsulfid (DMS)
Ameisensäure (Formiat) Tetramethylammonium[15]
Methan Trimethylamin
Methanol Trimethylamin-N-Oxid
Methylamin Trimethylsulfonium[16]
Halogenmethane

Katabolismus

Methylotrophe Organismen nutzen die Elektronentransportkette, um Energie aus der Oxidation von C1-Verbindungen zu gewinnen. Um den Abbau des chemisch stabilem Methans zu ermöglichen ist im methanotrophen Stoffwechsel ist ein zusätzlicher Aktivierungsschritt erforderlich. Die Oxidation zu Methanol wird durch die Methan-Monooxygenase (MMO) katalysiert, die ein Sauerstoffatom aus O2 ins Methanmolekül einbaut und das andere Sauerstoffatom zu Wasser (H2O) reduziert.[7][8] Methanol wird dann in Bakterien durch die Methanol-Dehydrogenase (MDH)[17] oder in Hefe durch eine unspezifische Alkoholoxidase[18] zu Formaldehyd oxidiert. Die Elektronen aus der Methanoloxidation werden an ein membranassoziiertes Chinon der Elektronentransportkette weitergeleitet, wodurch die Energie in Form von Adenosintriphosphat (ATP) gewonnen wird.[19]

Bei dissimilatorischen Prozessen wird Formaldehyd vollständig zu CO2 oxidiert und ausgeschieden. Formaldehyd wird durch die Wirkung der Formaldehyd-Dehydrogenase (FALDH) zu Formiat oxidiert und das Elektronen direkt an ein membranassoziiertes Chinon der Elektronentransportkette abgibt (in der Regel Cytochrom b oder c.[5][8] Im Falle von NAD+-assoziierten Dehydrogenasen wird NADH gebildet.[10]

Schließlich wird das Formiat zu CO2 oxidiert durch eine zytoplasmatische (lösliche) oder membrangebundene Formiat-Dehydrogenase (FDH) oxidiert, wodurch NADH und CO2 produziert werden.[20]

Anabolismus

Die wichtigste Herausforderung für den Stoffwechsel der Methylotrophen ist die Assimilation von C1-Molekülen zu Biomasse. Die Methylotrophen müssen dazu de novo Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindungen zwischen den bisherigen C1-Molekülen bilden. Fakultativ Methylotrophe vermeiden diesen energieintensiven Prozess, indem sie – wenn möglich – eine Reihe größerer organischer Verbindungen benutzen.[21] Obligat Methylotrophe müssen jedoch die C1-Moleküle assimilieren.[5][8] Eine Zwischenstellung nehmen sog. eingeschränkt fakultativ Methylotrophe (englisch restricted facultative methylotrophs) ein, die außer C1-Verbindungen lediglich eine begrenzte Anzahl komplexerer organischer Verbindungen nutzen können. Zu dieser Gruppe gehören Vertreter der Bakteriengattungen Hansschlegelia[22] und Methylobrevis[23][24] (beide zu Ordnung Hyphomicrobiales der Alphaproteobakterien) sowie Methylovorus[25][26] (Ordnung Nitrosomonadales der Betaproteobakterien).[A. 3]

Es gibt insgesamt vier verschiedene Assimilationswege mit dem gemeinsamen Thema, der Biosynthese eines C3-Moleküls.[5] Alle vier Wege bauen drei C1-Moleküle in Multi-Kohlenstoff-Zwischenprodukte ein, und spalten dann von einem Zwischenprodukt ein neues C3-Molekül ab. Die verbliebenen Reste der Zwischenprodukte werden anschließend umgeordnet, um die ursprünglichen Multi-Kohlenstoff-Zwischenprodukte zu regenerieren.

Bakterien nutzen drei dieser Wege,[10][14] während Pilze (Hefen) nur einen nutzen.

Während Bakterien zur Oxidation von Methanol eine bakterielle Methanoldehydrogenase (MDH, EC 1.1.3.7[33]) nutzen, oxidieren methylotrophe Hefen Methanol in ihren Peroxisomen mit einer unspezifischen Alkoholoxidase (AOX[34]). Dabei entstehen sowohl Formaldehyd als auch Wasserstoffperoxid (H2O2).[31][35] Durch die Kompartimentierung dieser Reaktion in den Peroxisomen wird wahrscheinlich das entstehende Wasserstoffperoxid sequestriert. In den Peroxisomen wird Katalase produziert, um dieses schädliche Nebenprodukt zu beseitigen.[36][31]

Bakterien: Ribulosebiphosphatweg (RuBP) =

Calvin-Zyklus (Ribulosebiphosphatweg, RuBP)

Im Gegensatz zu den anderen Assimilationswegen beziehen Bakterien, die den RuBP-Weg nutzen, ihren gesamten organischen Kohlenstoff durch CO2-Assimilation.[8][37] Dieser Stoffwechselweg wurde zuerst bei photosynthetischen Autotrophen[A. 5] aufgeklärt und ist besser bekannt als Calvin-Zyklus.[37][38] Kurz darauf wurden methylotrophe Bakterien gefunden, die auf reduzierten C1-Verbindungen wachsen können und diesen Stoffwechselweg nutzen.[39]

Zunächst werden drei Moleküle Ribulose-5-phosphat zu Ribulose-1,5-bisphosphat (RuBP, auch RuP2) phosphoryliert.[A. 6] Das Enzym Ribulosebisphosphatcarboxylase (RuBisCO) carboxyliert die RuBP-Moleküle, wodurch sechs Moleküle 3-Phosphoglycerat (PGA, auch 3-PG) entstehen. Das Enzym Phosphoglyceratkinase phosphoryliert PGA zu 1,3-Diphosphoglycerat (DPGA). Bei der Reduktion von sechs DPGA durch das Enzym Glyceraldehydphosphat-Dehydrogenase (GADPH) entstehen sechs Moleküle der C3-Verbindung Glyceraldehyd-3-phosphat (GAP oder G3P[34]). Ein GAP-Molekül wird in die Biomasse umgeleitet, während die anderen fünf Moleküle zuletzt die drei Moleküle von Ribulose-5-Phosphat regenerieren, die im nächsten Durchlauf des Zyklus wieder zu RuBP phosphoryliert werden.[10][38]

Bakterien: Ribulosemonophosphatweg (RuMP)

Der Ribulosemonophosphatweg (RuMP-Weg) zur Assimilation von Formaldehyd in Typ-I-Methanotrophen.
3-Hexulose-6-phosphat (Hexulosephosphat, HU6P), Anion

Als in dem methanotrophen Gammaproteobakterium Methylomonas methanica (Methylococcaceae)[40] kein RuBisCO gefunden wurde, vermutete man bereits 1980 einen neuen Stoffwechselweg.[41] Mit Hilfe der Isotopenmarkierung konnte dann 1996 gezeigt werden, dass M. methanica den Ribulosemonophosphatweg (RuMP, auch Hexulosephosphatzyklus genannt) nutzt. Die Entdeckung veranlasste die Autoren zudem zu der These, dass der RuMP-Weg dem RuBP-Weg entwicklungsgeschichtlich (in der Evolution) vorausgegangen sein könnte.[8]

Wie der RuBP-Weg beginnt auch dieser Stoffwechselweg mit 3 Molekülen Ribulose-5-phosphat. Aber anstatt das Ribulose-5-phosphat zu phosphorylieren, bilden hier jedoch 3 Moleküle Formaldehyd durch eine Aldolkondensation eine C-C-Bindung, wodurch 3 C6-Moleküle von D-Arabino-3-Hexulose-6-phosphat (HU6P,[34] Hexulosephosphat, CAS 53010-97-2[42][43][44]), vermittelt durch eine Hexulose-6-phosphat-Synthase (HPS[34]) entstehen.[9][41][45] Diese Reaktion wird durch eine Hexulosephosphat-Synthase (HPS)[34][46] katalysiert.

Eines dieser Hexulosephosphat-Moleküle wird in Glycerinaldehyd-3-phosphat (GAP, auch G3P) und entweder in Pyruvat (Brenztraubensäure) oder Dihydroxyacetonphosphat (DHAP) umgewandelt. Das Pyruvat oder DHAP wird für die Produktion der Biomasse verwendet, während die anderen beiden Hexulosephosphat-Moleküle und das GAP-Molekül zur Regeneration der drei Ribulose-5-phosphat-Moleküle verwendet werden.[9][41]

Bakterien: Serinweg

Serinweg (englisch serine pathway oder cycle), um Formaldehyd zu fixieren.

Im Gegensatz zu den anderen Assimilationswegen werden beim Serinweg (Serinzyklus) anstelle von Kohlenhydraten Carbonsäuren und Aminosäuren als Zwischenprodukte verwendet.[8][47] Zunächst werden zwei Moleküle Formaldehyd zu zwei Molekülen der Aminosäure Glycin hinzugefügt. Dadurch entstehen zwei Moleküle der Aminosäure Serin, dem wichtigsten Zwischenprodukt dieses Stoffwechselwegs. Aus diesen Serinmolekülen entstehen schließlich zwei Moleküle 2-Phosphoglycerat (2-Phosphoglycerinsäure), wobei ein C3-Molekül in die Biomasse geht und das andere zur Regeneration von Glycin verwendet wird. Wichtig ist: Für die Regeneration von Glycin wird zusätzlich ein Molekül CO2 benötigt. Daher unterscheidet sich der Serin-Weg auch von den anderen drei Wegen durch seinen Bedarf an Formaldehyd und CO2.[41][47]

Hefen: Dihydroxyacteonweg (DHA)

Vergleich von RuMP-Weg (Bakterien) und XuMP-Weg (Hefen).[34]

Der Dihydroxyacetonweg (DHA-Weg), auch als Xylulosemonophosphatweg (XuMP-Weg) bezeichnet, kommt ausschließlich in Hefen vor.[31][48] Bei diesem Stoffwechselweg werden drei Moleküle Formaldehyd zu einem Molekül Dihydroxyacetonphosphat (DHAP) assimiliert, wobei drei Moleküle Xylulose-5-Phosphat (XU5P)[34][49] als Schlüsselzwischenprodukt Verwendung finden. Die DHA-Synthase wirkt als Transferase (genauer: Transketolase), um einen Teil des Xylulose-5-Phosphats auf Dihydroxyaceton (DHA) zu übertragen. Anschließend werden diese drei DHA-Moleküle von der Triokinase zu DHAP phosphoryliert. Wie bei den anderen Zyklen werden drei C3-Moleküle synthetisiert, wobei eines dieser Moleküle für die Verwendung als Zellmaterial (Biomasse) bestimmt ist. Die beiden anderen Moleküle werden für die Regeneration von Xylulose-5-Phosphat verwendet.[50]

Bedeutung für die Umwelt und Anwendungen

Nahrungskreisläufe und Klima

Als wichtige Akteure im Kohlenstoffkreislauf tragen Methylotrophe vor allem durch die Aufnahme von Methan und anderen Treibhausgasen (wie Methan und CO2) zur Verringerung der globalen Erwärmung bei. In wässrigem Milieu produzieren methanogene Mikroorganismen 40-50 % des weltweit produzierten Methans. Durch die Symbiose (siehe Vergesellschaftung (Biologie) §Mikroben) zwischen methanogenen und methanotrophen Bakterien wird die Menge des in die Atmosphäre freigesetzten Methans erheblich verringert.[51]

Diese Symbiose ist auch in marinen Umgebungen von großer Bedeutung. Marine Bakterien sind sehr wichtig für die Nahrungskette (englisch auch food web genannt) und biogeochemische Stoffkreisläufe. Dies gilt insbesondere für küstennahe Oberflächengewässer, aber auch für anderen wichtigen Ökosysteme wie hydrothermale Schloten. Es werden weit verbreitete und vielfältige Gruppen von Methylotrophen im Ozean vermutet, mit dem Potenzial, die Ökosysteme der Meere und Flussmündungen erheblich zu beeinflussen.[52]  Ein-Kohlenstoff-Verbindungen (C1-Verbindungen), die von Methylotrophen als Quelle von Biomasse und Energie genutzt werden, finden sich überall im Ozean. Zu diesen Verbindungen gehören Methan (bzw. Methanhydrat), Methanol, methylierte Amine, Methylhalogenide und methylierte Schwefelverbindungen wie Dimethylsulfid (DMS, H3C-S-CH3) und Dimethylsulfoxid (DMSO, (CH3)2S).[53] Einige dieser Verbindungen werden vom Phytoplankton produziert, andere stammen aus der Atmosphäre. Studien, die ein breiteres Spektrum von Ein-Kohlenstoff-Substraten (C1-Substraten) einbeziehen, haben eine zunehmende Vielfalt von Methylotrophen festgestellt, ein Umstand, der darauf hindeutet, dass die Vielfalt dieser Gruppe von Bakterien (und anderen Mikroben) bei weitem noch nicht vollständig erforscht ist.[53]

Da diese Verbindungen flüchtig sind und sich auf das Klima und die Atmosphäre auswirken, kann die Erforschung der Interaktion dieser Organismen mit den C1-Verbindungen auch zum Verständnis des Austausches zwischen der Atmosphäre und dem Ozean beitragen – und welchen Einfluss dieser auf das Klima hat, wichtig für Klimavorhersagen.[54][52] Es ist beispielsweise derzeit (Stand 2018) ungewiss, ob der Ozean als Nettoquelle oder -senke für atmosphärisches Methanol fungiert, während eine Reihe von Methylotrophen Methanol als ihre Hauptenergiequelle nutzt. In einigen Regionen haben sich Methylotrophe als Netto-Senke für Methanol erwiesen,[55] während in anderen Regionen Methylamin (CH3N-H2) als ein Produkt der Aktivität von Methylotrophen aus dem Ozean emittiert wird und Aerosole bildet.[52] Die Nettorichtung dieser Ströme hängt von der genauen Nutzung durch die verschiedenen Methylotrophen ab.

Untersuchungen haben ergeben, dass die Auswirkungen der Methylotrophie wahrscheinlich saisonal schwanken, denn die methylotrophe Kapazität geht einher mit der Produktivität eines Systems. Da einige der von Methylotrophen verstoffwechselten C1-Verbindungen wie Methanol und Trimethylaminoxid (TMAO) von Phytoplankton produziert werden, schwankt ihre Verfügbarkeit zeitlich und saisonal in Abhängigkeit von Phytoplanktonblüten, Wetterereignissen und anderen Einträgen (Inputs) in das Ökosystem.[56] Dies bedeutet, dass der methylotrophe Stoffwechsel insgesamt voraussichtlich einer ähnlichen Dynamik folgt, was sich wiederum auf die biogeochemischen Zyklen (Stoffkreislauf) wie Kohlenstoffflüsse auswirkt.[52]

Auch in hydrothermalen Schloten der Tiefsee wurde die Bedeutung von Methylotrophen untersucht. Methylotrophe Mikroorganismen exprimierten zusammen mit Schwefeloxidierern und Eisenoxidierern Schlüsselproteine, die mit der Kohlenstofffixierung in Verbindung stehen.[57] Solche Studien können zum weiteren Verständnis des Kohlenstoffkreislaufs sowohl in der Tiefsee selbst als auch der Zusammenhänge zwischen dem Kohlenstoffkreislauf in der Tiefsee und an der Oberfläche beitragen. In der letzten Zeit hat die Ausweitung der „omik“"-Technologien (Genomik, Metagenomik, Proteomik, Transkriptomik etc.) die Erforschung der Methylotrophen bzgl. ihrer Vielfalt, ihre Häufigkeit und ihrer Aktivität in einer Vielzahl von Umweltnischen beschleunigt, wozu auch die Interaktionen zwischen verschiedenen Arten gehört, die sich einen Lebensraum (Habitat) teilen.[58] Weitere Forschungen über diese Mikroben und die Gesamtwirkung des mikrobiellen Abbaus einerseits wie der Umwandlung von C1-Verbindungen im Ozean andererseits sind noch durchzuführen. Derzeitige Erkenntnisse deuten darauf hin, dass die Methylotrophen im Ozean eine potenziell wichtige Rolle nicht nur im Kohlenstoffkreislauf spielen, sondern auch im globalen Stickstoff-, Schwefel- und Phosphorkreislauf, sowie im Austausch von Kohlenstoffverbindungen zwischen Luft und Meer (englisch air-sea flux), insbesondere im Hinblick auf Auswirkungen auf das globale Klima.[54]

Anwendungen

Die Verwendung von Methylotrophen in der Landwirtschaft ist eine weitere Möglichkeit potenzieller Auswirkungen auf die Umwelt. Herkömmliche chemische Düngemittel liefern zwar Nährstoffe, die im Boden nicht oder nicht ausreichend verfügbar sind, können jedoch negative Auswirkungen auf die Umwelt haben und sind in der Herstellung teuer.[59] Methylotrophe haben ein großes Potenzial als alternative Biodünger und Bioinokulantien,[A. 7] da sie in der Lage sind, mutualistische Beziehungen mit verschiedenen Pflanzenarten einzugehen.[60] Methylotrophe Pflanzen versorgen die Pflanzen mit Nährstoffen wie löslichem Phosphor und gebundenem Stickstoff und spielen auch eine Rolle bei der Aufnahme der genannten Nährstoffe.[59][60] Darüber hinaus können sie Pflanzen durch die Produktion von Phytohormonen dabei helfen, auf Umweltstressoren zu reagieren.[59] Methylotrophes Wachstum hemmt zudem das Wachstum schädlicher Pflanzenpathogene und führt zu systemischer Resistenz.[60] Methylotrophe Hefen (Ogataea polymorpha syn. Hansenula polymorpha) lassen sich seit dem Jahr 2000 zur Reinigung von Schmutzwasser einsetzen.[34] Methylotrophe Biodünger, die entweder allein oder zusammen mit chemischen Düngemitteln verwendet werden, erhöhen nachweislich sowohl den Ertrag als auch die Qualität der Pflanzen, ohne dass Nährstoffe verloren gehen.[59] Eine nachhaltige Produktion von Kraftstoffen (z. B. Isopentanol) und anderen Chemikalien durch Gentechnisch veränderte methylotrophe Hefen wurde 2022 von Vanessa Wegat et al. untersucht, insbesondere im Hinblick auf das angestrebte 1,5-Grad-Ziel für die globale Erwärmung. In dieser Studie wurden insbesondere auch neue, synthetische methylotrophe Stoffwechselwege in Betracht gezogen.[34]

Anmerkungen

  1. Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindungen: Kovalente Bindungen C–C, C=C oder C≡C.
  2. Einzellerproteine versus rekombinante Proteine: Erstere werden durch natürlich vorkommende Einzeller synthetisiert, letztere sind durch gentechnisch veränderten Organismen erzeugt, inklusive solcher, in die zusätzliche DNA-Moleküle (etwa als Plasmide) eingeschleust wurden
  3. Die Bezeichnungsweise ist etwas irreführend. Der Begriff „eingeschränkt“ (englisch restricted) zusammen mit „fakultativ“ bezieht sich auf die Methylotrophie dieser Mikroben und bedeutet, dass sie sich nicht zwingend methylotroph ernähren müssen. Es handelt sich also tatsächlich um eine Erweiterung des Spektrums an nutzbaren Verbindungen. Beispielsweise nutzt die eingeschränkt fakultativ heterotrophe Hansschlegelia plantiphila je nach Stamm neben den C1-Verbindungen Methanol, Methylamin bzw. Formiat (Ameisensäure)[27] zusätzlich noch Glycerin, Inulin, Succinat (Bernsteinsäure), Fumarat (Fumarsäure) und/oder Acetat (Essigsäure).[28] Von der Gattung Methylobrevis ist die Art Methylobrevis pamukkalensis[23] als eingeschränkt fakultativ methylotroph bekannt.[24]
  4. Nach Yurimoto (2011) sind als Gattungen methylotropher Hefen bekannt: Candida, Pichia, Ogataea,[30] Kuraishia und Komagataella; alle in der Ordnung Saccharomycetales (Echte Hefen).[31][32]
  5. Organismen, die ihre Baustoffe (und organischen Reservestoffe) ausschließlich aus anorganischen Stoffen aufzubauen und die Energie dazu aus dem (Sonnen-)Licht beziehen.
  6. Je nach Darstellung kann dieser Schritt auch als letzter Regenerationsschritt dargestellt werden.
  7. Bioinokulantien, auch Mikrobielle Inokulantien oder Bodeninokulantien genannt, sind landwirtschaftliche Zusatzstoffe, die nützliche rhizosphärische (Knöllchenbakterien im weiteren Sinn) oder endophytische (im Innern der Pflanzen lebende) Mikroben zur Förderung der Pflanzengesundheit einsetzen.

Einzelnachweise

  1. C. Anthony: The biochemistry of methylotrophic micro-organisms. In: Science Progress, Band 62, Nr. 246, Oxford, Sommer 1975, S. 167-206; JSTOR:43420299, PMID 810884.
  2. C. Anthony: The Biochemistry of Methylotrophs. In: Academic Press, London, New York, 1. Juni 1982, Band 160, Nr. 1–2, August 1983, S. 2-3; PDF. Dazu:
  3. Methylotrophe. Kompaktlexikon der Biologie; auf: spektrum.de.
  4. a b Methanotrophe. Kompaktlexikon der Biologie; auf: spektrum.de.
  5. a b c d e f g Hiroya Yurimoto, Nobuo Kato, Yasuyoshi Sakai: Assimilation, dissimilation, and detoxification of formaldehyde, a central metabolic intermediate of methylotrophic metabolism. In: The Chemical Record. 5. Jahrgang, Nr. 6, 1. Januar 2005, ISSN 1528-0691, S. 367–375, doi:10.1002/tcr.20056, PMID 16278835 (englisch).
  6. Ngoc-Loi Nguyen, Woon-Jong Yu, Hye-Young Yang, Jong-Geol Kim, Man-Young Jung, Soo-Je Park, Seong-Woon Roh, Sung-Keun Rhee: A novel methanotroph in the genus Methylomonas that contains a distinct clade of soluble methane monooxygenase. In: Journal of Microbiology. 55. Jahrgang, Nr. 10, 28. September 2017, S. 775–782, doi:10.1007/s12275-017-7317-3, PMID 28956349 (englisch).
  7. a b Matthew O. Ross, Amy C. Rosenzweig: A tale of two methane monooxygenases. In: Journal of Biological Inorganic Chemistry. 22. Jahrgang, Nr. 2–3, 1. April 2017, ISSN 0949-8257, S. 307–319, doi:10.1007/s00775-016-1419-y, PMID 27878395, PMC 5352483 (freier Volltext) – (englisch).
  8. a b c d e f g h i R. S. H. Hanson, Thomas E. Hanson: Methanotrophic bacteria. In: Microbiological Reviews. 60. Jahrgang, Nr. 2, 1. Juni 1996, ISSN 1092-2172, S. 439–471, doi:10.1128/mr.60.2.439-471.1996, PMID 8801441, PMC 239451 (freier Volltext) – (englisch). ResearchGate.
  9. a b c Julia A. Vorholt: Cofactor-dependent pathways of formaldehyde oxidation in methylotrophic bacteria. In: Archives of Microbiology. 178. Jahrgang, Nr. 4, 1. Oktober 2002, ISSN 0302-8933, S. 239–249, doi:10.1007/s00203-002-0450-2, PMID 12209256 (englisch).
  10. a b c d e f J. Colby, H. Dalton, Whittenbury, R.: Biological and Biochemical Aspects of Microbial Growth on C1 Compounds. In: Annual Review of Microbiology. 33. Jahrgang, Nr. 1, 1979, S. 481–517, doi:10.1146/annurev.mi.33.100179.002405, PMID 386931 (englisch).
  11. Ronald S. Oremland, Ronald P. Kiene, Indra Mathrani, Michael J. Whiticar, David R. Boone: Description of an Estuarine Methylotrophic Methanogen Which Grows on Dimethyl Sulfide. In: Applied and Environmental Microbiology. 55. Jahrgang, Nr. 4, 1. April 1989, ISSN 0099-2240, S. 994–1002, doi:10.1128/AEM.55.4.994-1002.1989, PMID 16347900, PMC 184236 (freier Volltext), bibcode:1989ApEnM..55..994O (englisch).
  12. Andrew J. Holmes, D. P. Kelly, Simon C. Baker, A. S. Thompson, Paolo De Marco, Elizabeth M. Kenna, J. Colin Murrell: Methylosulfonomonas methylovora gen. nov., sp. nov., and Marinosulfonomonas methylotropha gen. nov., sp. nov.: novel methylotrophs able to grow on methanesulfonic acid. In: Archives of Microbiology, Band 167, Nr. 1, 1. Januar 1997, ISSN 0302-8933, S. 46–53; doi:10.1007/s002030050415, PMID 9000341.
  13. Don P. Kelly, Simon C. Baker, Jim Trickett, Margaret Davey, J. Colin Murrell: Methanesulphonate utilization by a novel methylotrophic bacterium involves an unusual monooxygenase. In: Microbiology. 140. Jahrgang, Nr. 6, 1. Juni 1994, S. 1419–1426, doi:10.1099/00221287-140-6-1419 (englisch).
  14. a b c Julia Firsova, Nina Doronina, Elke Lang, Cathrin Spröer, Stéphane Vuilleumier, Yuri Trotsenko: Ancylobacter dichloromethanicus sp. nov. – a new aerobic facultatively methylotrophic bacterium utilizing dichloromethane. In: Systematic and Applied Microbiology, Band 32, Nr. 4, Juli 2009, S. 227–232; doi:10.1016/j.syapm.2009.02.002, PMID 19346095.
  15. CAS 51-92-3. Tetramethylammonium. Auf: Chemical Abstracts Service.
  16. CAS 676-84-6. Trimethylsulfonium. Auf: Chemical Abstracts Service.
  17. J. A. Duine, J. Frank, M. P. J. Berkhout: NAD-dependent, PQQ-containing methanol dehydrogenase: a bacterial dehydrogenase in a multienzyme complex. In: FEBS Letters. 168. Jahrgang, Nr. 2, 26. März 1984, ISSN 1873-3468, S. 217–221, doi:10.1016/0014-5793(84)80249-5, PMID 6373362 (englisch).
  18. William D. Murray, Sheldon J. B. Duff, Patricia H. Lanthier: Induction and stability of alcohol oxidase in the methylotrophic yeast Pichia pastoris. In: Applied Microbiology and Biotechnology. 32. Jahrgang, Nr. 1, 1. November 1989, ISSN 0175-7598, S. 95–100, doi:10.1007/BF00164829 (englisch).
  19. H. W. Van Verseveld, A. H. Stouthamer: Electron-transport chain and coupled oxidative phosphorylation in methanol-grown Paracoccus denitrificans. In: Archives of Microbiology. 118. Jahrgang, Nr. 1, 1. Juli 1978, ISSN 0302-8933, S. 13–20, doi:10.1007/BF00406068, PMID 29587 (englisch).
  20. Ludmila Chistoserdova, Gregory J. Crowther, Julia A. Vorholt, Elizabeth Skovran, Jean-Charles Portais, Mary E. Lidstrom: Identification of a Fourth Formate Dehydrogenase in Methylobacterium extorquens AM1 and Confirmation of the Essential Role of Formate Oxidation in Methylotrophy. In: Journal of Bacteriology, Band 189, Nr. 24, 15. Dezember 2007, ISSN 0021-9193, S. 9076​–9081; doi:10.1128/jb.01229-07, PMID 17921299, PMC 2168636 (freier Volltext) (englisch).
  21. William M. Reed, Patrick R. Dugan: Isolation and Characterization of the Facultative Methylotroph Mycobacterium ID-Y. In: Microbiology. 133. Jahrgang, Nr. 5, 1987, S. 1389–1395, doi:10.1099/00221287-133-5-1389, PMID 3655742 (englisch).
  22. Munusamy Madhaiyan, Selvaraj Poonguzhali, Soon-Wo Kwon, Tong-Min Sa: Methylophilus rhizosphaerae sp. nov., a restricted facultative methylotroph isolated from rice rhizosphere soil. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, Band 59, Nr. 11, 1. November 2009, S. 2904​–2908; doi:10.1099/ijs.0.009811-0.
  23. a b NCBI Taxonomy Browser: Methylobrevis pamukkalensis Poroshina et al. 2015 (species).
  24. a b Maria N. Poroshina, Yuri A. Trotsenko, Nina V. Doronina: Methylobrevis pamukkalensis gen. nov., sp. nov., a halotolerant restricted facultative methylotroph isolated from saline water. In: International Journal of Systematic And Evolutionary Microbiology, Band 65, Nr. Pt_4, 1. April 2015; doi:10.1099/ijs.0.000105.
  25. NCBI Taxonomy Browser: Methylovorus, Details: Methylovorus Govorukhina and Trotsenko 1991 emend. Doronina et al. 2005 (species).
  26. Natalia I. Govorukhina, Yuri A. Trotsenko: Methylovorus, a New Genus of Restricted Facultatively Methylotrophic Bacteria Free. In: International Journal of Systematic And Evolutionary Microbiology, Band 41, Nr. 1, 1. Januar 1991; doi:10.1099/00207713-41-1-158.
  27. Ekaterina Ivanova, Nina Doronina, Yuri Trotsenko: Hansschlegelia plantiphila gen. nov. sp. nov., a new aerobic restricted facultative methylotrophic bacterium associated with plants. In: Systematic and Applied Microbiology, Band 30, Nr. 6, 10. September 2007, S. 444–452; doi:10.1016/j.syapm.2007.03.001.
  28. Nadezhda V. Agafonova, Elena N. Kaparullina, Denis S. Grouzdev and Nina V. Doronina: Hansschlegelia quercus sp. nov., a novel methylotrophic bacterium isolated from oak buds. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, Band 70, Nr. 8, 15. Juli 2020, S. 4646​–4652; doi:10.1099/ijsem.0.004323.
  29. Stephen C. Taylor, Howard Dalton, Crawford S. Dow: Ribulose-1,5-bisphosphate Carboxylase/Oxygenase and Carbon Assimilation in Methylococcus capsulatus (Bath). In: Microbiology. 122. Jahrgang, Nr. 1, 1. Januar 1981, S. 89–94, doi:10.1099/00221287-122-1-89 (englisch).
  30. NCBI Taxonomy Browser: Ogataea polymorpha (Morais & M.H. Maia) Y. Yamada, K. Maeda & Mikata, 1994 (specie), basionym: Hansenula polymorpha Morais & M.H. Maia, 1959.
  31. a b c d Hiroya Yurimoto, Masahide Oku, Yasuyoshi Sakai: Yeast Methylotrophy: Metabolism, Gene Regulation and Peroxisome Homeostasis. In: International Journal of Microbiology. 2011-07-07. Jahrgang, 2011, ISSN 1687-918X, S. 101298, doi:10.1155/2011/101298, PMID 21754936, PMC 3132611 (freier Volltext) – (englisch).
  32. NCBI Taxonomy Browser: Saccharomycetales, Details: Saccharomycetales (order)
  33. EC 1.1.2.7 methanol dehydrogenase (cytochrome c), MDH (Hexulosephosphat-Isomerase). Auf: Expasy.
  34. a b c d e f g h i Vanessa Wegat, Jonathan T. Fabarius, Volker Sieber: Synthetic methylotrophic yeasts for the sustainable fuel and chemical production. In: BMC: Biotechnology for Biofuels and Bioproducts, Band 15, Nr. 113, 22. Oktober 2022; doi:10.1186/s13068-022-02210-1. Siehe insbes. auch Fig. 3: Metabolic access points of synthetic and native methylotrophic pathways into glycolytic yeast metabolism.
    Anm. zu Fig. 1: Lt. NCBI-Taxonomie ist Hansenula polymorpha Basionym für die Hefe mit gültiger Bezeichnung Ogataea polymorpha.
  35. Mykhailo Gonchar, Mykola Maidan, Yaroslav Korpan, Volodymyr Sibirny, Zbigniew Kotylak, Andrei Sibirny: Metabolically engineered methylotrophic yeast cells and enzymes as sensor biorecognition elements. In: FEMS Yeast Research. 2. Jahrgang, Nr. 3, 1. August 2002, ISSN 1567-1356, S. 307–314, doi:10.1016/s1567-1356(02)00124-1, PMID 12702280 (englisch).
  36. Ida J. van der Klei, Hiroya Yurimoto, Yasuyoshi Sakai, Marten Veenhuis: The significance of peroxisomes in methanol metabolism in methylotrophic yeast. In: Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research. 1763. Jahrgang, Nr. 12, Dezember 2006, S. 1453–1462, doi:10.1016/j.bbamcr.2006.07.016, PMID 17023065 (englisch). PDF.
  37. a b Christine A. Raines: The Calvin cycle revisited. In: Photosynthesis Research. 75. Jahrgang, Nr. 1, 1. Januar 2003, ISSN 0166-8595, S. 1–10, doi:10.1023/A:1022421515027, PMID 16245089 (englisch).
  38. a b Marie-Louise Champigny, Evelyne Bismuth: Role of Photosynthetic Electron Transfer in Light Activation of Calvin Cycle Enzymes. In: Physiologia Plantarum. 36. Jahrgang, Nr. 1, 1. Januar 1976, ISSN 1399-3054, S. 95–100, doi:10.1111/j.1399-3054.1976.tb05034.x (englisch).
  39. Stephen C. Taylor, Howard Dalton, Crawford S. Dow: Purification and initial characterisation of ribulose 1,5-bisphosphate carboxylase from Methylococcus capsulatus (Bath). In: FEMS Microbiology Letters. 8. Jahrgang, Nr. 3, 1. Juli 1980, S. 157–160, doi:10.1016/0378-1097(80)90021-x (englisch).
  40. NCBI Taxonomy Browser: Methylomonas methanica! Details: Methylomonas methanica (ex Söhngen 1906) Whittenbury and Krieg 1984 (species).
  41. a b c d J. R. Quayle: Microbial assimilation of C1 compounds. In: Biochemical Society Transactions. 8. Jahrgang, Nr. 1, 1. Februar 1980, ISSN 0300-5127, S. 1–10, doi:10.1042/bst0080001, PMID 6768606 (englisch).
  42. CAS 53010-97-2. D-arabino-3-Hexulose, 6-(dihydrogen phosphate). Auf: Chemical Abstracts Service.
  43. Arabino-3-hexulose-6-phosphate. Auf: Hairu (hairuchem.com).
  44. Pathway: formaldehyde assimilation II (assimilatory RuMP Cycle). Auf: MetaCyc (biocyc.org/META)
  45. Ribulosemonophosphat-Zyklus. Lexikon der Biologie. Auf: spektrum.de.
  46. EC 4.1.2.43 3-hexulose-6-phosphate synthase (Hexulosephosphat-Synthase, HPS). Auf: Expasy.
  47. a b L. V. Chistoserdova, M. E. Lidstrom: Genetics of the serine cycle in Methylobacterium extorquens AM1: identification, sequence, and mutation of three new genes involved in C1 assimilation, orf4, mtkA, and mtkB. In: Journal of Bacteriology. 176. Jahrgang, Nr. 23, 1. Dezember 1994, ISSN 0021-9193, S. 7398​–7404, doi:10.1128/jb.176.23.7398-7404.1994, PMID 7961516, PMC 197134 (freier Volltext) – (englisch).
  48. Martin A. Gleeson, Peter E. Sudbery: The methylotrophic yeasts. In: Yeast. 4. Jahrgang, Nr. 1, 1. März 1988, ISSN 1097-0061, S. 1–15, doi:10.1002/yea.320040102 (englisch). SciSpace.
  49. CAS 60802-29-1. Pentulose, 5-phosphate. Auf: Chemical Abstracts Service.
  50. M. J. Waites, J. R. Quayle: The Interrelation between Transketolase and Dihydroxyacetone Synthase Activities in the Methylotrophic Yeast Candida boidinii. In: Microbiology. 124. Jahrgang, Nr. 2, 1. Juni 1981, S. 309–316, doi:10.1099/00221287-124-2-309, PMID 6276498 (englisch).
  51. Guillaume Borrel, Didier Jézéquel, Corinne Biderre-Petit, Nicole Morel-Desrosiers, Jean-Pierre Morel, Pierre Peyret, Gérard Fonty, Anne-Catherine Lehours: Production and consumption of methane in freshwater lake ecosystems. In: Research in Microbiology, Band 162, Nr. 9, November 2011, S. 832-847, ISSN 0923-2508; doi:10.1016/j.resmic.2011.06.004.
  52. a b c d Julie Dinasquet, Marja Tiirola, Farooq Azam: Enrichment of Bacterioplankton Able to Utilize One-Carbon and Methylated Compounds in the Coastal Pacific Ocean. In: Frontiers in Marine Science. 5. Jahrgang, 6. September 2018, ISSN 2296-7745, S. 307, doi:10.3389/fmars.2018.00307 (englisch).
  53. a b Josh D. Neufeld, Rich Boden, Hélène Moussard, Hendrik Schäfer, J. Colin Murrell: Substrate-Specific Clades of Active Marine Methylotrophs Associated with a Phytoplankton Bloom in a Temperate Coastal Environment. In: Applied and Environmental Microbiology. 74. Jahrgang, Nr. 23, 1. Dezember 2008, S. 7321​–7328, doi:10.1128/AEM.01266-08, PMID 18849453, PMC 2592898 (freier Volltext), bibcode:2008ApEnM..74.7321N (englisch).
  54. a b Daphne Faria, LokaBharathi Adikesavan Ponnapakkam: Marine and estuarine methylotrophs: their abundance, activity and identity. In: Current Science. 90. Jahrgang, Nr. 7, April 2006, ISSN 0011-3891, S. 984–989, JSTOR:24091957 (englisch). ResearchGate.
  55. M. Yang, R. Beale, P. Liss, M. Johnson, B. Blomquist, P. Nightingale: Air–sea fluxes of oxygenated volatile organic compounds across the Atlantic Ocean. In: Atmospheric Chemistry and Physics. 14. Jahrgang, Nr. 14, 24. Juli 2014, ISSN 1680-7316, S. 7499​–7517, doi:10.5194/acp-14-7499-2014, bibcode:2014ACP....14.7499Y (englisch, copernicus.org).
  56. Rachael Beale, Peter S. Liss, Joanna L. Dixon, Philip D. Nightingale: Quantification of oxygenated volatile organic compounds in seawater by membrane inlet-proton transfer reaction/mass spectrometry. In: Analytica Chimica Acta. 706. Jahrgang, Nr. 1, 7. November 2011, ISSN 0003-2670, S. 128–134, doi:10.1016/j.aca.2011.08.023, PMID 21995919 (englisch).
  57. Timothy E. Mattes, Brook L. Nunn, Katharine T. Marshall, Giora Proskurowski, Deborah S. Kelley, Orest E. Kawka, David R. Goodlett, Dennis A. Hansell, Robert M. Morris: Sulfur oxidizers dominate carbon fixation at a biogeochemical hot spot in the dark ocean. In: The ISME Journal. 7. Jahrgang, Nr. 12, Dezember 2013, ISSN 1751-7370, S. 2349–2360, doi:10.1038/ismej.2013.113, PMID 23842654, PMC 3834846 (freier Volltext) – (englisch).
  58. Ludmila Chistoserdova: Application of Omics Approaches to Studying Methylotrophs and Methylotroph Communities. In: Current Issues in Molecular Biology. 24. Jahrgang, 6. Juli 2017, ISSN 1467-3037, S. 119–142, doi:10.21775/cimb.024.119, PMID 28686571 (englisch).
  59. a b c d Manish Kumar, Rajesh Singh Tomar, Harshad Lade, Diby Paul: Methylotrophic bacteria in sustainable agriculture. In: World Journal of Microbiology and Biotechnology. 32. Jahrgang, Nr. 7, 2016, S. 120, doi:10.1007/s11274-016-2074-8, PMID 27263015 (englisch).
  60. a b c Hiroyuki Iguchi, Hiroya Yurimoto, Yasuyoshi Sakai: Interactions of methylotrophs with plants and other heterotrophic bacteria. In: MDPI Microorganisms. 3. Jahrgang, Nr. 2, 2. April 2015, S. 137–151, doi:10.3390/microorganisms3020137, PMID 27682083, PMC 5023238 (freier Volltext) – (englisch).