Dieser Artikel ist ein Teilnehmer am Schreibwettbewerb

„Sulfate“ – Versionsunterschied

aus Wikipedia, der freien Enzyklopädie
Zur Navigation springen Zur Suche springen
[gesichtete Version][gesichtete Version]
Inhalt gelöscht Inhalt hinzugefügt
Bebilderung
Ergänzungen zu Naturstoffen, einige zusätzliche Bilder
Zeile 260: Zeile 260:
| Bild2 = Isooctyl_sulfate.svg
| Bild2 = Isooctyl_sulfate.svg
}}
}}
[[Datei:海星(正面).JPG|mini|Nordpazifischer Seestern]]
Sulfatierte Naturstoffe kommen in diversen Meerestieren vor. [[Seegurken]] der Familie [[Holothuriidae]] verfügen über Giftstoffe, die als [[Holothurine]] bezeichnet werden. Diese sind auf der Körperoberfläche und in den [[Cuviersche Schläuche|Cuvierschen Schläuchen]] vorhanden, die der Verteidigung dienen, werden aber auch ins Wasser abgesondert und sind tödlich giftig für Fische, wodurch die Seegurken gut gegen Fressfeinde geschützt sind.<ref>{{Literatur |Autor=G. J. Bakus |Titel=Defensive mechanisms and ecology of some tropical holothurians |Sammelwerk=Marine Biology |Band=2 |Nummer=1 |Datum=1968-10 |Seiten=23–32 |DOI=10.1007/BF00351634}}</ref> Die Holothurine sind Triterpenglycoside mit verschiedenen biologischen Aktivitäten und Funktionen. Sie dienen unter anderem zur Verteidigung gegen Fressfeinde und als biologische Regulatoren, um die Reifung von [[Eizelle]]n zu synchronisieren. Sie können [[Zellmembran]]en schädigen, worauf ihre [[Hämolyse|hämolytische]] und [[Fungizid|fungizide]] Wirkung beruht.<ref name=":25">{{Literatur |Autor=Vladimir I. Kalinin, Dmitry L. Aminin, Sergey A. Avilov, Alexandra S. Silchenko, Valentin A. Stonik |Titel=Triterpene Glycosides from Sea Cucucmbers (Holothurioidea, Echinodermata). Biological Activities and Functions |Sammelwerk=Studies in Natural Products Chemistry |Band=35 |Verlag=Elsevier |Datum=2008 |ISBN=978-0-444-53181-0 |Seiten=135–196 |DOI=10.1016/s1572-5995(08)80006-3}}</ref> Das Holothurin A verursacht eine irreversible Blockade [[Motorische Endplatte|neuromuskulärer Synapsen]]. Die negative Ladung durch die Sulfatgruppe ist ein wichtiges Element für die biologische Aktivität der Verbindung. Eine Studie an Mäusen zeigte für ein desulfatiertes Analogon bei gleicher Konzentration eine zehnfach schwächere Wirkung, die zudem teilweise reversibel war.<ref>{{Literatur |Autor=S.L. Friess, R.C. Durant, J.D. Chanley, F.J. Fash |Titel=Role of the sulphate charge center in irreversible interactions of holothurin A with chemoreceptors |Sammelwerk=Biochemical Pharmacology |Band=16 |Nummer=8 |Datum=1967-08 |Seiten=1617–1625 |DOI=10.1016/0006-2952(67)90140-2}}</ref> Auch für die membranschädigende Wirkung ist das Sulfat wichtig.<ref name=":25" /> Holothurin A kommt in ''[[Actinopyga agassizii]]'' vor.<ref>{{Literatur |Autor=J. D. Chanley, R. Ledeen, J. Wax, R. F. Nigrelli, Harry Sobotka |Titel=Holothurin. I. The Isolation, Properties and Sugar Components of Holothurin A 1 |Sammelwerk=Journal of the American Chemical Society |Band=81 |Nummer=19 |Datum=1959-10 |Seiten=5180–5183 |DOI=10.1021/ja01528a040}}</ref> Das verwandte Holothurin A<sub>2</sub> kommt in ''[[Holothuria edulis]]'' vor.<ref>{{Literatur |Autor=V. I. Kalinin, V. A. Stonik |Titel=Glycosides of marine invertebrates. Structure of holothurin A2 from the holothurianHolothuria edulis |Sammelwerk=Chemistry of Natural Compounds |Band=18 |Nummer=2 |Datum=1982-03 |Seiten=196–200 |DOI=10.1007/BF00577193}}</ref> In Seegurken kommen außerdem Alkylsulfate wie [[Octylsulfat]] und [[Decylsulfat]] vor.<ref>{{Literatur |Autor=Ming‐Ping La, Cui Li, Ling Li, Peng Sun, Hua Tang, Bao‐Shu Liu, Wei Gong, Hua Han, Yang‐Hua Yi, Wen Zhang |Titel=New Bioactive Sulfated Alkenes from the Sea Cucumber Apostichopus japonicus |Sammelwerk=Chemistry & Biodiversity |Band=9 |Nummer=6 |Datum=2012-06 |DOI=10.1002/cbdv.201100324 |Seiten=1166–1171}}</ref> Auch in [[Seescheiden]] wurden mehrere Alkyl- und Alkenylsulfate nachgewiesen, beispielsweise [[Isooctylsulfat]] in der [[Rote Seescheide|Roten Seescheide]] (''Halocynthia papillosa'').<ref>{{Literatur |Autor=Anna Aiello, Sabina Carbonelli, Giuseppe Esposito, Ernesto Fattorusso, Teresa Iuvone, Marialuisa Menna |Titel=Novel Bioactive Sulfated Alkene and Alkanes from the Mediterranean Ascidian Halocynthia papillosa |Sammelwerk=Journal of Natural Products |Band=63 |Nummer=11 |Datum=2000-11-01 |DOI=10.1021/np000281o |Seiten=1590–1592}}</ref>
Sulfatierte Naturstoffe kommen in diversen Meerestieren vor. [[Seegurken]] der Familie [[Holothuriidae]] verfügen über Giftstoffe, die als [[Holothurine]] bezeichnet werden. Diese sind auf der Körperoberfläche und in den [[Cuviersche Schläuche|Cuvierschen Schläuchen]] vorhanden, die der Verteidigung dienen, werden aber auch ins Wasser abgesondert und sind tödlich giftig für Fische, wodurch die Seegurken gut gegen Fressfeinde geschützt sind.<ref>{{Literatur |Autor=G. J. Bakus |Titel=Defensive mechanisms and ecology of some tropical holothurians |Sammelwerk=Marine Biology |Band=2 |Nummer=1 |Datum=1968-10 |Seiten=23–32 |DOI=10.1007/BF00351634}}</ref> Die Holothurine sind Triterpenglycoside mit verschiedenen biologischen Aktivitäten und Funktionen. Sie dienen unter anderem zur Verteidigung gegen Fressfeinde und als biologische Regulatoren, um die Reifung von [[Eizelle]]n zu synchronisieren. Sie können [[Zellmembran]]en schädigen, worauf ihre [[Hämolyse|hämolytische]] und [[Fungizid|fungizide]] Wirkung beruht.<ref name=":25">{{Literatur |Autor=Vladimir I. Kalinin, Dmitry L. Aminin, Sergey A. Avilov, Alexandra S. Silchenko, Valentin A. Stonik |Titel=Triterpene Glycosides from Sea Cucucmbers (Holothurioidea, Echinodermata). Biological Activities and Functions |Sammelwerk=Studies in Natural Products Chemistry |Band=35 |Verlag=Elsevier |Datum=2008 |ISBN=978-0-444-53181-0 |Seiten=135–196 |DOI=10.1016/s1572-5995(08)80006-3}}</ref> Das Holothurin A verursacht eine irreversible Blockade [[Motorische Endplatte|neuromuskulärer Synapsen]]. Die negative Ladung durch die Sulfatgruppe ist ein wichtiges Element für die biologische Aktivität der Verbindung. Eine Studie an Mäusen zeigte für ein desulfatiertes Analogon bei gleicher Konzentration eine zehnfach schwächere Wirkung, die zudem teilweise reversibel war.<ref>{{Literatur |Autor=S.L. Friess, R.C. Durant, J.D. Chanley, F.J. Fash |Titel=Role of the sulphate charge center in irreversible interactions of holothurin A with chemoreceptors |Sammelwerk=Biochemical Pharmacology |Band=16 |Nummer=8 |Datum=1967-08 |Seiten=1617–1625 |DOI=10.1016/0006-2952(67)90140-2}}</ref> Auch für die membranschädigende Wirkung ist das Sulfat wichtig.<ref name=":25" /> Holothurin A kommt in ''[[Actinopyga agassizii]]'' vor.<ref>{{Literatur |Autor=J. D. Chanley, R. Ledeen, J. Wax, R. F. Nigrelli, Harry Sobotka |Titel=Holothurin. I. The Isolation, Properties and Sugar Components of Holothurin A 1 |Sammelwerk=Journal of the American Chemical Society |Band=81 |Nummer=19 |Datum=1959-10 |Seiten=5180–5183 |DOI=10.1021/ja01528a040}}</ref> Das verwandte Holothurin A<sub>2</sub> kommt in ''[[Holothuria edulis]]'' vor.<ref>{{Literatur |Autor=V. I. Kalinin, V. A. Stonik |Titel=Glycosides of marine invertebrates. Structure of holothurin A2 from the holothurianHolothuria edulis |Sammelwerk=Chemistry of Natural Compounds |Band=18 |Nummer=2 |Datum=1982-03 |Seiten=196–200 |DOI=10.1007/BF00577193}}</ref> In Seegurken kommen außerdem Alkylsulfate wie [[Octylsulfat]] und [[Decylsulfat]] vor.<ref>{{Literatur |Autor=Ming‐Ping La, Cui Li, Ling Li, Peng Sun, Hua Tang, Bao‐Shu Liu, Wei Gong, Hua Han, Yang‐Hua Yi, Wen Zhang |Titel=New Bioactive Sulfated Alkenes from the Sea Cucumber Apostichopus japonicus |Sammelwerk=Chemistry & Biodiversity |Band=9 |Nummer=6 |Datum=2012-06 |DOI=10.1002/cbdv.201100324 |Seiten=1166–1171}}</ref> Auch in [[Seescheiden]] wurden mehrere Alkyl- und Alkenylsulfate nachgewiesen, beispielsweise [[Isooctylsulfat]] in der [[Rote Seescheide|Roten Seescheide]] (''Halocynthia papillosa'').<ref>{{Literatur |Autor=Anna Aiello, Sabina Carbonelli, Giuseppe Esposito, Ernesto Fattorusso, Teresa Iuvone, Marialuisa Menna |Titel=Novel Bioactive Sulfated Alkene and Alkanes from the Mediterranean Ascidian Halocynthia papillosa |Sammelwerk=Journal of Natural Products |Band=63 |Nummer=11 |Datum=2000-11-01 |DOI=10.1021/np000281o |Seiten=1590–1592}}</ref> [[Seesterne]] bilden Steroidglycoside ([[Saponine]]), die als [[Asterosaponine]] bezeichnet werden und teilweise zusätzlich mit Sulfatgruppen modifiziert sind. Zu den Seesternen, in denen sulfatierte Saponine nachgewiesen wurden, gehören der [[Nordpazifischer Seestern|Nordpazifische Seestern]] (''Asterias amurensi''s), der Asterosaponin A bildet,<ref>{{Literatur |Autor=Susumu Ikegami, Yuji Kamiya, Saburo Tamura |Titel=A new steroidal sulfate obtained from a starfish saponin, asterosaponin a |Sammelwerk=Tetrahedron Letters |Band=14 |Nummer=10 |Datum=1973-01 |DOI=10.1016/S0040-4039(01)95696-5 |Seiten=731–734}}</ref> und ''[[Aphelasterias japonica]]''.<ref>{{Literatur |Autor=A. A. Kicha, N. V. Ivanchina, A. I. Kalinovsky, P. S. Dmitrenok, V. A. Stonik |Titel=[No title found] |Sammelwerk=Russian Chemical Bulletin |Band=50 |Nummer=4 |Datum=2001 |DOI=10.1023/A:1011337617808 |Seiten=724–727}}</ref> Bei der Art ''[[Patiria pectinifera]]'' wurde nachgewiesen, dass Asterosaponine aus [[Cholesterin|Cholesterol]] und [[Cholesterolsulfat]] biosynthetisiert werden.<ref>{{Literatur |Autor=Natalia V. Ivanchina, Alla A. Kicha, Timofey V. Malyarenko, Anatoly I. Kalinovsky, Pavel S. Dmitrenok, Valentin A. Stonik |Titel=Biosynthesis of polar steroids from the Far Eastern starfish Patiria (=Asterina) pectinifera. Cholesterol and cholesterol sulfate are converted into polyhydroxylated sterols and monoglycoside asterosaponin P1 in feeding experiments |Sammelwerk=Steroids |Band=78 |Nummer=12-13 |Datum=2013-12 |DOI=10.1016/j.steroids.2013.08.008 |Seiten=1183–1191}}</ref>


=== Vorkommen in Pflanzen ===
=== Vorkommen in Pflanzen ===
Zeile 299: Zeile 300:


==== Weitere Vorkommen in Pflanzen ====
==== Weitere Vorkommen in Pflanzen ====
In den Korbblütlern, insbesondere in der Unterfamilie [[Cichorieae|Cichorioideae]], kommen verschiedene sulfatierte [[Sesquiterpenlactone]] vor. Dazu gehören die [[Sulfoscorzonine]] in ''[[Scorzonera divaricata]]'' (Gattung [[Schwarzwurzeln]]),<ref>{{Literatur |Autor=Quan-Xiang Wu, Xiao-Feng He, Chun-Xiao Jiang, Wei Zhang, Zhuan-Ning Shi, Hong-Fang Li, Ying Zhu |Titel=Two novel bioactive sulfated guaiane sesquiterpenoid salt alkaloids from the aerial parts of Scorzonera divaricata |Sammelwerk=Fitoterapia |Band=124 |Datum=2018-01 |Seiten=113–119 |DOI=10.1016/j.fitote.2017.10.011}}</ref> sowie Derivate des [[Lactucin]]s im Milchsaft des [[Gartensalat]]s, beispielsweise 15-Deoxylactucin-8-sulfat.<ref>{{Literatur |Autor=Reuben A. Sessa, Mark H. Bennett, Mervyn J. Lewis, John W. Mansfield, Michael H. Beale |Titel=Metabolite Profiling of Sesquiterpene Lactones from Lactuca Species |Sammelwerk=Journal of Biological Chemistry |Band=275 |Nummer=35 |Datum=2000-09 |Seiten=26877–26884 |DOI=10.1016/S0021-9258(19)61456-0}}</ref> Das [[Atractylosid]] ist ein pflanzliches Gift, das insbesondere für grasende Weidetiere gefährlich ist. Es handelt sich um ein Terpenoid-Glycosid, das an der Glucoseeinheit zusätzlich sulfatiert ist. Die Giftwirkung beruht auf der Störung des [[Citratzyklus]]. Zuerst isoliert wurde es 1873 aus dem [[Gummi-Spindelkraut]] (''Atractylis gummifera''). Später wurde die Verbidnung auch in vielen weiteren Pflanzen auf unterschiedlichen Kontinenten nachgewiesen. Dazu gehören ''[[Atractylis carduus]]'' (aus der gleichen Gattung), sowie mehrere Arten der Gattung [[Wedelia]], die [[Gewöhnliche Spitzklette]] und [[Kaffeebohne]]n.<ref name=":54">{{Literatur |Autor=D.K Obatomi, P.H Bach |Titel=Biochemistry and Toxicology of the Diterpenoid Glycoside Atractyloside |Sammelwerk=Food and Chemical Toxicology |Band=36 |Nummer=4 |Datum=1998-04 |DOI=10.1016/S0278-6915(98)00002-7 |Seiten=335–346}}</ref> Sulfate von [[1-Coumarylglucosid]] und [[1-Caffeoylglucosid]] wurden ebenfalls in verschiedenen Pflanzen nachgewiesen. Derivate beider Verbindungen wurden im [[Adlerfarn]] nachgewiesen. Sulfate des 1-Caffeoylglucosids wurden außerdem im [[Gewöhnlicher Frauenhaarfarn|Gewöhnlichen Frauenhaarfarn]] und im [[Milzfarn]] nachgewiesen.<ref>{{Literatur |Autor=Filippo Imperato |Titel=Sulphate esters of hydroxycinnamic acid—sugar derivatives from Adiantum capillus-veneris |Sammelwerk=Phytochemistry |Band=21 |Nummer=11 |Datum=1982-01 |DOI=10.1016/0031-9422(82)83105-1 |Seiten=2717–2718}}</ref>
In den Korbblütlern, insbesondere in der Unterfamilie [[Cichorieae|Cichorioideae]], kommen verschiedene sulfatierte [[Sesquiterpenlactone]] vor. Dazu gehören die [[Sulfoscorzonine]] in ''[[Scorzonera divaricata]]'' (Gattung [[Schwarzwurzeln]]),<ref>{{Literatur |Autor=Quan-Xiang Wu, Xiao-Feng He, Chun-Xiao Jiang, Wei Zhang, Zhuan-Ning Shi, Hong-Fang Li, Ying Zhu |Titel=Two novel bioactive sulfated guaiane sesquiterpenoid salt alkaloids from the aerial parts of Scorzonera divaricata |Sammelwerk=Fitoterapia |Band=124 |Datum=2018-01 |Seiten=113–119 |DOI=10.1016/j.fitote.2017.10.011}}</ref> sowie Derivate des [[Lactucin]]s im Milchsaft des [[Gartensalat]]s, beispielsweise 15-Deoxylactucin-8-sulfat.<ref>{{Literatur |Autor=Reuben A. Sessa, Mark H. Bennett, Mervyn J. Lewis, John W. Mansfield, Michael H. Beale |Titel=Metabolite Profiling of Sesquiterpene Lactones from Lactuca Species |Sammelwerk=Journal of Biological Chemistry |Band=275 |Nummer=35 |Datum=2000-09 |Seiten=26877–26884 |DOI=10.1016/S0021-9258(19)61456-0}}</ref> Das [[Atractylosid]] ist ein pflanzliches Gift, das insbesondere für grasende Weidetiere gefährlich ist. Es handelt sich um ein Terpenoid-Glycosid, das an der Glucoseeinheit zusätzlich sulfatiert ist. Die Giftwirkung beruht auf der Störung des [[Citratzyklus]]. Zuerst isoliert wurde es 1873 aus dem [[Gummi-Spindelkraut]] (''Atractylis gummifera''). Später wurde die Verbidnung auch in vielen weiteren Pflanzen auf unterschiedlichen Kontinenten nachgewiesen. Dazu gehören ''[[Atractylis carduus]]'' (aus der gleichen Gattung), sowie mehrere Arten der Gattung [[Wedelia]], die [[Gewöhnliche Spitzklette]] und [[Kaffeebohne]]n.<ref name=":54">{{Literatur |Autor=D.K Obatomi, P.H Bach |Titel=Biochemistry and Toxicology of the Diterpenoid Glycoside Atractyloside |Sammelwerk=Food and Chemical Toxicology |Band=36 |Nummer=4 |Datum=1998-04 |DOI=10.1016/S0278-6915(98)00002-7 |Seiten=335–346}}</ref> Sulfate von [[1-Coumarylglucosid]] und [[1-Caffeoylglucosid]] wurden ebenfalls in verschiedenen Pflanzen nachgewiesen. Derivate beider Verbindungen wurden im [[Adlerfarn]] nachgewiesen. Sulfate des 1-Caffeoylglucosids wurden außerdem im [[Gewöhnlicher Frauenhaarfarn|Gewöhnlichen Frauenhaarfarn]] und im [[Milzfarn]] nachgewiesen.<ref>{{Literatur |Autor=Filippo Imperato |Titel=Sulphate esters of hydroxycinnamic acid—sugar derivatives from Adiantum capillus-veneris |Sammelwerk=Phytochemistry |Band=21 |Nummer=11 |Datum=1982-01 |DOI=10.1016/0031-9422(82)83105-1 |Seiten=2717–2718}}</ref> Die [[Carrageen|Carrageene]] sind eine Gruppe von Polysacchariden, die in großer Menge in [[Rotalgen]] vorkommen, beispielsweise im [[Knorpeltang]] (''Chondrus crispus''). Die Struktur ist linear, besteht überwiegend aus [[Galactose]]-Einheiten, und ist mit einer variablen Anzahl an Sulfatgruppen modifiziert.<ref>{{Literatur |Autor=Antonin Chevenier, Diane Jouanneau, Elizabeth Ficko-Blean |Titel=Carrageenan biosynthesis in red algae: A review |Sammelwerk=The Cell Surface |Band=9 |Datum=2023-12 |DOI=10.1016/j.tcsw.2023.100097 |PMC=10311240 |PMID=37396716 |Seiten=100097}}</ref>


=== Vorkommen in Mikroorganismen ===
=== Vorkommen in Mikroorganismen ===
[[Datei:Green Lipped Mussel (314300764).jpg|mini|Grünlippmuschel]]
Mikroorganismen bilden verschiedene sulfatierte Naturstoffe. Auch sogenannte [[Muschelvergiftung|Muschelgifte]], die in Meeresfrüchten vorkommen, werden durch Mikroorganismen synthetisiert. Zu dieser Gruppe gehören beispielsweise die [[Gonyautoxine]], eine Gruppe von giftigen sulfatierten Naturstoffen aus marinen [[Dinoflagellaten]]. Ihre Giftwirkung basiert auf einer Hemmung [[Natriumkanal|spannungsabhängiger Natriumkanäle]].<ref>{{Literatur |Autor=John V. Mulcahy, James R. Walker, Jeffrey E. Merit, Alan Whitehead, J. Du Bois |Titel=Synthesis of the Paralytic Shellfish Poisons (+)-Gonyautoxin 2, (+)-Gonyautoxin 3, and (+)-11,11-Dihydroxysaxitoxin |Sammelwerk=Journal of the American Chemical Society |Band=138 |Nummer=18 |Datum=2016-05-11 |DOI=10.1021/jacs.6b02343 |Seiten=5994–6001}}</ref> Das [[Yessotoxin]] gehört ebenfalls zu dieser Gruppe und wurde als Verunreinigung in [[Grünschalmuschel|Grünlippmuscheln]] nachgewiesen. Die Verbindung weist zwei Sulfatgruppen auf. Es wird beispielsweise von den Dinoflagellaten ''[[Protoceratium reticulatum]]'' und ''[[Gonyaulax spinifera]]'' (Gattung ''[[Gonyaulax]]'') produziert.<ref>{{Literatur |Autor=Masayuki Satake, Lincoln MacKenzie, Takeshi Yasumoto |Titel=Identification of Protoceratium reticulatum as the biogenetic origin of yessotoxin |Sammelwerk=Natural Toxins |Band=5 |Nummer=4 |Datum=1997-07 |DOI=10.1002/19970504NT7 |Seiten=164–167}}</ref><ref>{{Literatur |Autor=Lesley Rhodes, Paul McNabb, Miguel de Salas, Lyn Briggs, Veronica Beuzenberg, Melissa Gladstone |Titel=Yessotoxin production by Gonyaulax spinifera |Sammelwerk=Harmful Algae |Band=5 |Nummer=2 |Datum=2006-03 |DOI=10.1016/j.hal.2005.06.008 |Seiten=148–155}}</ref> Die [[Biosynthese]] des natürliche Antibiotikums [[Ficellomycin]] aus ''[[Streptomyces ficellus]]'' verläuft über ein Sulfat. Dabei wird eine Hydroxymethylgruppe an einem [[Pyrrolidine|Pyrrolidinring]] durch eine [[Sulfotransferasen|Sulfotransferase]] mittels [[3′-Phosphoadenosin-5′-phosphosulfat|Phosphoadenosinphosphosulfat]] in ein Sulfat umgewandelt. Durch einen intramolekularen nucleophilen Angriff des Stickstoffatoms des Pyrrolidins wird das Sulfat abgespalten und ein [[Aziridine|Aziridinring]] gebildet.<ref>{{Literatur |Autor=Rong Yue, Meng Li, Yue Wang, Ying Guan, Jing Zhang, Zhongli Yan, Fufeng Liu, Fuping Lu, Huitu Zhang |Titel=Insight into enzyme-catalyzed aziridine formation mechanism in ficellomycin biosynthesis |Sammelwerk=European Journal of Medicinal Chemistry |Band=204 |Datum=2020-10 |DOI=10.1016/j.ejmech.2020.112639 |Seiten=112639}}</ref>

Verschiedene [[Bakterien]] und [[Archaeen]] können Schwefelverbindungen wie [[Schwefelwasserstoff]], [[Thiosulfate|Thiosulfat]] oder [[Tetrathionat]] zur Energiegewinnung oxidieren, wobei der enthaltene Schwefel im Allgemeinen zu Sulfat oxidiert wird.<ref>{{Literatur |Autor=Cornelius G. Friedrich |Titel=Physiology and Genetics of Sulfur-oxidizing Bacteria |Sammelwerk=Advances in Microbial Physiology |Band=39 |Verlag=Elsevier |Datum=1997 |ISBN=0-12-027739-5 |Seiten=235–289 |DOI=10.1016/s0065-2911(08)60018-1}}</ref> Bei [[Phototrophie|phototrophen]] Bakterien, die Energie aus dem Sonnenlicht ziehen, dient beispielsweise Schwefelwasserstoff als Reduktionsmittel zur Gewinnung organischer Verbindungen aus [[Kohlenstoffdioxid]]. Der Schwefelwasserstoff wird dabei zunächst zu elementarem Schwefel und dann weiter zu Sulfat oxidiert. Zu diesen Bakterien gehören unter anderem die Familien [[Chromatiaceae]] und [[Rhodospirillaceae]].<ref>{{Literatur |Autor=Daniel C. Brune |Titel=Sulfur oxidation by phototrophic bacteria |Sammelwerk=Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics |Band=975 |Nummer=2 |Datum=1989-07 |Seiten=189–221 |DOI=10.1016/S0005-2728(89)80251-8}}</ref> Bestimmte Bakterien können auch sulfidische Minerale wie Pyrit oxidieren, wodurch sie Sulfat bilden und zur Verwitterung der Minerale beitragen.<ref>{{Literatur |Autor=Harald G. Dill, Berthold Weber, Reiner Botz |Titel=Metalliferous duricrusts ("orecretes") - markers of weathering: A mineralogical and climatic-geomorphological approach to supergene Pb-Zn-Cu-Sb-P mineralization on different parent materials |Sammelwerk=Neues Jahrbuch für Mineralogie - Abhandlungen |Band=190 |Nummer=2 |Datum=2013-04-01 |DOI=10.1127/0077-7757/2013/0235 |Seiten=155}}</ref>
Verschiedene [[Bakterien]] und [[Archaeen]] können Schwefelverbindungen wie [[Schwefelwasserstoff]], [[Thiosulfate|Thiosulfat]] oder [[Tetrathionat]] zur Energiegewinnung oxidieren, wobei der enthaltene Schwefel im Allgemeinen zu Sulfat oxidiert wird.<ref>{{Literatur |Autor=Cornelius G. Friedrich |Titel=Physiology and Genetics of Sulfur-oxidizing Bacteria |Sammelwerk=Advances in Microbial Physiology |Band=39 |Verlag=Elsevier |Datum=1997 |ISBN=0-12-027739-5 |Seiten=235–289 |DOI=10.1016/s0065-2911(08)60018-1}}</ref> Bei [[Phototrophie|phototrophen]] Bakterien, die Energie aus dem Sonnenlicht ziehen, dient beispielsweise Schwefelwasserstoff als Reduktionsmittel zur Gewinnung organischer Verbindungen aus [[Kohlenstoffdioxid]]. Der Schwefelwasserstoff wird dabei zunächst zu elementarem Schwefel und dann weiter zu Sulfat oxidiert. Zu diesen Bakterien gehören unter anderem die Familien [[Chromatiaceae]] und [[Rhodospirillaceae]].<ref>{{Literatur |Autor=Daniel C. Brune |Titel=Sulfur oxidation by phototrophic bacteria |Sammelwerk=Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics |Band=975 |Nummer=2 |Datum=1989-07 |Seiten=189–221 |DOI=10.1016/S0005-2728(89)80251-8}}</ref> Bestimmte Bakterien können auch sulfidische Minerale wie Pyrit oxidieren, wodurch sie Sulfat bilden und zur Verwitterung der Minerale beitragen.<ref>{{Literatur |Autor=Harald G. Dill, Berthold Weber, Reiner Botz |Titel=Metalliferous duricrusts ("orecretes") - markers of weathering: A mineralogical and climatic-geomorphological approach to supergene Pb-Zn-Cu-Sb-P mineralization on different parent materials |Sammelwerk=Neues Jahrbuch für Mineralogie - Abhandlungen |Band=190 |Nummer=2 |Datum=2013-04-01 |DOI=10.1127/0077-7757/2013/0235 |Seiten=155}}</ref>


Andererseits ist die Nutzung von Sulfat als [[Elektronenakzeptor]], die sogenannte [[Desulfurikation|Sulfatatmung]], ein Stoffwechselweg bei anaeroben [[Prokaryoten]], sowohl Bakterien als auch Archaeen. Die Sulfatatmung ist vermutlich ein evolutionär alter Mechanismus und ist weit verbreitet, wobei die Gene für die Enzyme der Sulfatatmung im Allgemeinen eine große Ähnlichkeit aufweisen, selbst bei genetisch weit voneinander entfernten Organismen. Sulfatatmende Mikroorganismen kommen beispielsweise in unterirdischen, sauerstofffreien, [[Grundwasserleiter|wasserführenden Gesteinsschichten]] vor.<ref>{{Literatur |Autor=David A. Stahl, Susan Fishbain, Michael Klein, Brett J. Baker, Michael Wagner |Titel=[No title found] |Sammelwerk=Antonie van Leeuwenhoek |Band=81 |Nummer=1/4 |Datum=2002 |Seiten=189–195 |DOI=10.1023/A:1020506415921}}</ref> Ein großer Lebensraum solcher Bakterien ist das [[Schwarzes Meer|Schwarze Meer]], dessen Sedimente und untere Wasserschichten frei von Sauerstoff sind und große Mengen an Schwefelverbindungen enthalten. Viele der dort lebenden Bakterien gehören zur Familie [[Desulfobacteraceae|Desulfobaceraceae]]. Die Umsetzung organischer Verbindungen verläuft praktisch ausschließlich über Sulfatatmung und [[Methanogenese]].<ref>{{Literatur |Autor=Julie Leloup, Alexander Loy, Nina J. Knab, Christian Borowski, Michael Wagner, Bo Barker Jørgensen |Titel=Diversity and abundance of sulfate‐reducing microorganisms in the sulfate and methane zones of a marine sediment, Black Sea |Sammelwerk=Environmental Microbiology |Band=9 |Nummer=1 |Datum=2007-01 |Seiten=131–142 |DOI=10.1111/j.1462-2920.2006.01122.x}}</ref> Im [[Großer Salzsee|Großen Salzsee]] in [[Utah]] in den USA wurden in anoxischen (sauerstofffreien) Bereichen ebenfalls Bakterien nachgewiesen, die Sulfat reduzieren, zum Beispiel aus der Gattung ''[[Desulfohalobium]]''.<ref name=":20" /> Diese Bakterien verwenden Sulfat und [[Thiosulfate|Thiosulfat]] als Elektronenakzeptor zur Energiegewinnung.<ref>{{Literatur |Autor=Trine Fredlund Jakobsen, Kasper Urup Kjeldsen, Kjeld Ingvorsen |Titel=Desulfohalobium utahense sp. nov., a moderately halophilic, sulfate-reducing bacterium isolated from Great Salt Lake |Sammelwerk=International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology |Band=56 |Nummer=9 |Datum=2006-09-01 |Seiten=2063–2069 |DOI=10.1099/ijs.0.64323-0}}</ref> Sulfatreduzierende Mikroorganismen setzen bevorzugt leichtere Schwefelisotope um ([[Isotopeneffekt]]), vor allem <sup>32</sup>S-Sulfat gegenüber <sup>34</sup>S-Sulfat, sodass die Isotopenzusammensetzung von Schwefelverbindungen zum Teil Aufschluss über die Entstehung geben kann.<ref>{{Literatur |Autor=Pascal Philippot, Mark Van Zuilen, Kevin Lepot, Christophe Thomazo, James Farquhar, Martin J. Van Kranendonk |Titel=Early Archaean Microorganisms Preferred Elemental Sulfur, Not Sulfate |Sammelwerk=Science |Band=317 |Nummer=5844 |Datum=2007-09-14 |Seiten=1534–1537 |DOI=10.1126/science.1145861}}</ref> Sulfatreduzierende Bakterien kommen außerdem in der menschlichen [[Darmflora]] vor. Bei vielen Menschen, jedoch nicht bei allen, kommen [[Methanbildner|methanbildende Bakterien]] im Darm vor. Bei Menschen, auf die dies nicht zutrifft, kommen die sulfatreduzierenden Bakterien in deutlich größerer Zahl vor. Die Mehrheit der sulfatreduzierenden Darmbakterien gehören zur Gattung ''[[Desulfovibrio]]''.<ref>{{Literatur |Autor=G R Gibson, G T Macfarlane, J H Cummings |Titel=Sulphate reducing bacteria and hydrogen metabolism in the human large intestine. |Sammelwerk=Gut |Band=34 |Nummer=4 |Datum=1993-04-01 |Seiten=437–439 |DOI=10.1136/gut.34.4.437}}</ref>
Andererseits ist die Nutzung von Sulfat als [[Elektronenakzeptor]], die sogenannte [[Desulfurikation|Sulfatatmung]], ein Stoffwechselweg bei anaeroben [[Prokaryoten]], sowohl Bakterien als auch Archaeen. Die Sulfatatmung ist vermutlich ein evolutionär alter Mechanismus und ist weit verbreitet, wobei die Gene für die Enzyme der Sulfatatmung im Allgemeinen eine große Ähnlichkeit aufweisen, selbst bei genetisch weit voneinander entfernten Organismen. Sulfatatmende Mikroorganismen kommen beispielsweise in unterirdischen, sauerstofffreien, [[Grundwasserleiter|wasserführenden Gesteinsschichten]] vor.<ref>{{Literatur |Autor=David A. Stahl, Susan Fishbain, Michael Klein, Brett J. Baker, Michael Wagner |Titel=[No title found] |Sammelwerk=Antonie van Leeuwenhoek |Band=81 |Nummer=1/4 |Datum=2002 |Seiten=189–195 |DOI=10.1023/A:1020506415921}}</ref> Ein großer Lebensraum solcher Bakterien ist das [[Schwarzes Meer|Schwarze Meer]], dessen Sedimente und untere Wasserschichten frei von Sauerstoff sind und große Mengen an Schwefelverbindungen enthalten. Viele der dort lebenden Bakterien gehören zur Familie [[Desulfobacteraceae|Desulfobaceraceae]]. Die Umsetzung organischer Verbindungen verläuft praktisch ausschließlich über Sulfatatmung und [[Methanogenese]].<ref>{{Literatur |Autor=Julie Leloup, Alexander Loy, Nina J. Knab, Christian Borowski, Michael Wagner, Bo Barker Jørgensen |Titel=Diversity and abundance of sulfate‐reducing microorganisms in the sulfate and methane zones of a marine sediment, Black Sea |Sammelwerk=Environmental Microbiology |Band=9 |Nummer=1 |Datum=2007-01 |Seiten=131–142 |DOI=10.1111/j.1462-2920.2006.01122.x}}</ref> Im [[Großer Salzsee|Großen Salzsee]] in [[Utah]] in den USA wurden in anoxischen (sauerstofffreien) Bereichen ebenfalls Bakterien nachgewiesen, die Sulfat reduzieren, zum Beispiel aus der Gattung ''[[Desulfohalobium]]''.<ref name=":20" /> Diese Bakterien verwenden Sulfat und [[Thiosulfate|Thiosulfat]] als Elektronenakzeptor zur Energiegewinnung.<ref>{{Literatur |Autor=Trine Fredlund Jakobsen, Kasper Urup Kjeldsen, Kjeld Ingvorsen |Titel=Desulfohalobium utahense sp. nov., a moderately halophilic, sulfate-reducing bacterium isolated from Great Salt Lake |Sammelwerk=International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology |Band=56 |Nummer=9 |Datum=2006-09-01 |Seiten=2063–2069 |DOI=10.1099/ijs.0.64323-0}}</ref> Sulfatreduzierende Mikroorganismen setzen bevorzugt leichtere Schwefelisotope um ([[Isotopeneffekt]]), vor allem <sup>32</sup>S-Sulfat gegenüber <sup>34</sup>S-Sulfat, sodass die Isotopenzusammensetzung von Schwefelverbindungen zum Teil Aufschluss über die Entstehung geben kann.<ref>{{Literatur |Autor=Pascal Philippot, Mark Van Zuilen, Kevin Lepot, Christophe Thomazo, James Farquhar, Martin J. Van Kranendonk |Titel=Early Archaean Microorganisms Preferred Elemental Sulfur, Not Sulfate |Sammelwerk=Science |Band=317 |Nummer=5844 |Datum=2007-09-14 |Seiten=1534–1537 |DOI=10.1126/science.1145861}}</ref> Sulfatreduzierende Bakterien kommen außerdem in der menschlichen [[Darmflora]] vor. Bei vielen Menschen, jedoch nicht bei allen, kommen [[Methanbildner|methanbildende Bakterien]] im Darm vor. Bei Menschen, auf die dies nicht zutrifft, kommen die sulfatreduzierenden Bakterien in deutlich größerer Zahl vor. Die Mehrheit der sulfatreduzierenden Darmbakterien gehören zur Gattung ''[[Desulfovibrio]]''.<ref>{{Literatur |Autor=G R Gibson, G T Macfarlane, J H Cummings |Titel=Sulphate reducing bacteria and hydrogen metabolism in the human large intestine. |Sammelwerk=Gut |Band=34 |Nummer=4 |Datum=1993-04-01 |Seiten=437–439 |DOI=10.1136/gut.34.4.437}}</ref>

Die [[Gonyautoxine]] sind eine Gruppe von giftigen sulfatierten Naturstoffen aus marinen [[Dinoflagellaten]]. Sie wirken als Hemmer [[Natriumkanal|spannungsabhängiger Natriumkanäle]] und gehören zu den [[Muschelvergiftung|Muschelgiften]].<ref>{{Literatur |Autor=John V. Mulcahy, James R. Walker, Jeffrey E. Merit, Alan Whitehead, J. Du Bois |Titel=Synthesis of the Paralytic Shellfish Poisons (+)-Gonyautoxin 2, (+)-Gonyautoxin 3, and (+)-11,11-Dihydroxysaxitoxin |Sammelwerk=Journal of the American Chemical Society |Band=138 |Nummer=18 |Datum=2016-05-11 |DOI=10.1021/jacs.6b02343 |Seiten=5994–6001}}</ref> Das [[Yessotoxin]] gehört ebenfalls zu dieser Gruppe und wurde als Verunreinigung in [[Grünschalmuschel|Grünlippmuscheln]] nachgewiesen. Die Verbindung weist zwei Sulfatgruppen auf. Es wird beispielsweise von den Dinoflagellaten ''[[Protoceratium reticulatum]]'' und ''[[Gonyaulax spinifera]]'' (Gattung ''[[Gonyaulax]]'') produziert.<ref>{{Literatur |Autor=Masayuki Satake, Lincoln MacKenzie, Takeshi Yasumoto |Titel=Identification of Protoceratium reticulatum as the biogenetic origin of yessotoxin |Sammelwerk=Natural Toxins |Band=5 |Nummer=4 |Datum=1997-07 |DOI=10.1002/19970504NT7 |Seiten=164–167}}</ref><ref>{{Literatur |Autor=Lesley Rhodes, Paul McNabb, Miguel de Salas, Lyn Briggs, Veronica Beuzenberg, Melissa Gladstone |Titel=Yessotoxin production by Gonyaulax spinifera |Sammelwerk=Harmful Algae |Band=5 |Nummer=2 |Datum=2006-03 |DOI=10.1016/j.hal.2005.06.008 |Seiten=148–155}}</ref> Die [[Biosynthese]] des natürliche Antibiotikums [[Ficellomycin]] aus ''[[Streptomyces ficellus]]'' verläuft über ein Sulfat. Dabei wird eine Hydroxymethylgruppe an einem [[Pyrrolidine|Pyrrolidinring]] durch eine [[Sulfotransferasen|Sulfotransferase]] mittels [[3′-Phosphoadenosin-5′-phosphosulfat|Phosphoadenosinphosphosulfat]] in ein Sulfat umgewandelt. Durch einen intramolekularen nucleophilen Angriff des Stickstoffatoms des Pyrrolidins wird das Sulfat abgespalten und ein [[Aziridine|Aziridinring]] gebildet.<ref>{{Literatur |Autor=Rong Yue, Meng Li, Yue Wang, Ying Guan, Jing Zhang, Zhongli Yan, Fufeng Liu, Fuping Lu, Huitu Zhang |Titel=Insight into enzyme-catalyzed aziridine formation mechanism in ficellomycin biosynthesis |Sammelwerk=European Journal of Medicinal Chemistry |Band=204 |Datum=2020-10 |Seiten=112639 |DOI=10.1016/j.ejmech.2020.112639}}</ref>


== Abbau und Herstellung ==
== Abbau und Herstellung ==
Zeile 420: Zeile 422:
Sulfatgruppen sind in verschiedenen Wirkstoffen aus der Gruppe der [[Β-Lactamase-Inhibitoren|''β''-Lactamase-Inhibitoren]] enthalten, die zusammen mit [[Β-Lactam-Antibiotika|''β''-Lactam-Antibiotika]] eingesetzt werden. ''β''-Lactam-Antibiotika stören die [[Peptidoglycane|Peptidoglycansynthese]] in Bakterien, was zu instabilen Zellwänden und schließlich zum Absterben der Zellen führt.<ref name=":30">{{Literatur |Autor=George G. Zhanel, Christopher D. Lawson, Heather Adam, Frank Schweizer, Sheryl Zelenitsky, Philippe R. S. Lagacé-Wiens, Andrew Denisuik, Ethan Rubinstein, Alfred S. Gin, Daryl J. Hoban, Joseph P. Lynch, James A. Karlowsky |Titel=Ceftazidime-Avibactam: a Novel Cephalosporin/β-lactamase Inhibitor Combination |Sammelwerk=Drugs |Band=73 |Nummer=2 |Datum=2013-02 |Seiten=159–177 |DOI=10.1007/s40265-013-0013-7}}</ref> Antibiotika-Resistenzen gegen diese Wirkstoffe sind allerdings weit verbreitet. Ein Mechanismus, der eine solche Resistenz verursacht, ist die Bildung von [[Β-Lactamasen|''β''-Lactamasen]] durch die Bakterien. Dabei handelt es sich um Enzyme, die die Amidbindung in den ''β''-Lactam-Molekülen spalten und die Antibiotika somit wirkungslos machen können. Dies kann durch den zusätzlichen Einsatz eines ''β''-Lactamase-Inhibitors verhindert werden.<ref>{{Literatur |Autor=Fahd K. Majiduddin, Isabel C. Materon, Timothy G. Palzkill |Titel=Molecular analysis of beta-lactamase structure and function |Sammelwerk=International Journal of Medical Microbiology |Band=292 |Nummer=2 |Datum=2002 |Seiten=127–137 |DOI=10.1078/1438-4221-00198}}</ref> Der erste solche Wirkstoff, der zum Einsatz kam, ist das [[Avibactam]].<ref name=":31">{{Literatur |Autor=Susan J. Keam |Titel=Sulbactam/Durlobactam: First Approval |Sammelwerk=Drugs |Band=83 |Nummer=13 |Datum=2023-09 |Seiten=1245–1252 |DOI=10.1007/s40265-023-01920-6}}</ref> Das Kombinationspräparat mit dem Antibiotikum [[Ceftazidim]] wurde im Februar 2015 in den USA zugelassen. Die Kombination kommt gegen verschiedene antibiotikaresistente Pathogene zum Einsatz, beispielsweise entsprechende Stämme von ''[[Pseudomonas aeruginosa]]''.<ref>{{Literatur |Autor=Michael J Satlin |Titel=Languid Uptake of Ceftazidime-Avibactam for Carbapenem-Resistant Gram-Negative Infections and Continued Reliance on Polymyxins |Sammelwerk=Clinical Infectious Diseases |Band=72 |Nummer=4 |Datum=2021-02-16 |Seiten=622–625 |DOI=10.1093/cid/ciaa065}}</ref> Avibactam ist ein kovalanter Inhibitor für verschiedene ''β''-Lactamasen, der mittels seinem C7-Carbonyl als [[Carbamate|Carbamat]] an ein [[Serin]] im aktiven Zentrum bindet. Die Verbindung hat strukturelle Ähnlichkeit zum Ceftazidim, mit dem zusammen sie eingesetzt wird. Die Sulfatgruppe des Avibactams mit seiner negativen Ladung entspricht dabei der Carboxylatgruppe des Ceftazidims. Durch die Hemmung der ''β''-Lactamase wird ein Abbau des eigentlich wirksamen Antibiotikums verhindert. Die Kombination Ceftazidim-Avibactam wirkt so auch gegen Bakterien, die ''β''-Lactamasen produzieren und durch Ceftazidim allein nicht abgetötet werden.<ref name=":30" /> [[Durlobactam]] ist eine mit Avibactam strukturell eng verwandte Verbindung, die ähnlich verwendet wird. Ein Kombinationspräparat mit [[Sulbactam]] wurde im Mai 2023 in den USA zugelassen und wird für die Behandlung bestimmter ''β''-lactamresistenter Bakterien verwendet, insbesondere resistenter Stämme von ''[[Acinetobacter baumannii]]'', das in Bezug auf Antibiotika-Resistenzen zu den problematischsten Pathogenen gehört.<ref name=":31" />
Sulfatgruppen sind in verschiedenen Wirkstoffen aus der Gruppe der [[Β-Lactamase-Inhibitoren|''β''-Lactamase-Inhibitoren]] enthalten, die zusammen mit [[Β-Lactam-Antibiotika|''β''-Lactam-Antibiotika]] eingesetzt werden. ''β''-Lactam-Antibiotika stören die [[Peptidoglycane|Peptidoglycansynthese]] in Bakterien, was zu instabilen Zellwänden und schließlich zum Absterben der Zellen führt.<ref name=":30">{{Literatur |Autor=George G. Zhanel, Christopher D. Lawson, Heather Adam, Frank Schweizer, Sheryl Zelenitsky, Philippe R. S. Lagacé-Wiens, Andrew Denisuik, Ethan Rubinstein, Alfred S. Gin, Daryl J. Hoban, Joseph P. Lynch, James A. Karlowsky |Titel=Ceftazidime-Avibactam: a Novel Cephalosporin/β-lactamase Inhibitor Combination |Sammelwerk=Drugs |Band=73 |Nummer=2 |Datum=2013-02 |Seiten=159–177 |DOI=10.1007/s40265-013-0013-7}}</ref> Antibiotika-Resistenzen gegen diese Wirkstoffe sind allerdings weit verbreitet. Ein Mechanismus, der eine solche Resistenz verursacht, ist die Bildung von [[Β-Lactamasen|''β''-Lactamasen]] durch die Bakterien. Dabei handelt es sich um Enzyme, die die Amidbindung in den ''β''-Lactam-Molekülen spalten und die Antibiotika somit wirkungslos machen können. Dies kann durch den zusätzlichen Einsatz eines ''β''-Lactamase-Inhibitors verhindert werden.<ref>{{Literatur |Autor=Fahd K. Majiduddin, Isabel C. Materon, Timothy G. Palzkill |Titel=Molecular analysis of beta-lactamase structure and function |Sammelwerk=International Journal of Medical Microbiology |Band=292 |Nummer=2 |Datum=2002 |Seiten=127–137 |DOI=10.1078/1438-4221-00198}}</ref> Der erste solche Wirkstoff, der zum Einsatz kam, ist das [[Avibactam]].<ref name=":31">{{Literatur |Autor=Susan J. Keam |Titel=Sulbactam/Durlobactam: First Approval |Sammelwerk=Drugs |Band=83 |Nummer=13 |Datum=2023-09 |Seiten=1245–1252 |DOI=10.1007/s40265-023-01920-6}}</ref> Das Kombinationspräparat mit dem Antibiotikum [[Ceftazidim]] wurde im Februar 2015 in den USA zugelassen. Die Kombination kommt gegen verschiedene antibiotikaresistente Pathogene zum Einsatz, beispielsweise entsprechende Stämme von ''[[Pseudomonas aeruginosa]]''.<ref>{{Literatur |Autor=Michael J Satlin |Titel=Languid Uptake of Ceftazidime-Avibactam for Carbapenem-Resistant Gram-Negative Infections and Continued Reliance on Polymyxins |Sammelwerk=Clinical Infectious Diseases |Band=72 |Nummer=4 |Datum=2021-02-16 |Seiten=622–625 |DOI=10.1093/cid/ciaa065}}</ref> Avibactam ist ein kovalanter Inhibitor für verschiedene ''β''-Lactamasen, der mittels seinem C7-Carbonyl als [[Carbamate|Carbamat]] an ein [[Serin]] im aktiven Zentrum bindet. Die Verbindung hat strukturelle Ähnlichkeit zum Ceftazidim, mit dem zusammen sie eingesetzt wird. Die Sulfatgruppe des Avibactams mit seiner negativen Ladung entspricht dabei der Carboxylatgruppe des Ceftazidims. Durch die Hemmung der ''β''-Lactamase wird ein Abbau des eigentlich wirksamen Antibiotikums verhindert. Die Kombination Ceftazidim-Avibactam wirkt so auch gegen Bakterien, die ''β''-Lactamasen produzieren und durch Ceftazidim allein nicht abgetötet werden.<ref name=":30" /> [[Durlobactam]] ist eine mit Avibactam strukturell eng verwandte Verbindung, die ähnlich verwendet wird. Ein Kombinationspräparat mit [[Sulbactam]] wurde im Mai 2023 in den USA zugelassen und wird für die Behandlung bestimmter ''β''-lactamresistenter Bakterien verwendet, insbesondere resistenter Stämme von ''[[Acinetobacter baumannii]]'', das in Bezug auf Antibiotika-Resistenzen zu den problematischsten Pathogenen gehört.<ref name=":31" />


[[Datei:Fondaparinux.svg|mini|400 px|Fondaparinux]]
[[Sucralfat]] ist ein Komplex aus [[Aluminiumhydroxid]] und sulfatierter [[Saccharose]] und wird in verschiedenen Ländern bei Krankheitsbildern eingesetzt, die mit [[Magengeschwür]]en einhergehen. Sucralfat wird kaum resorbiert und bildet eine Schutzschicht, wodurch eine Heilung befördert wird.<ref>{{Literatur |Autor=Suresh P. Sulochana, Muzeeb Syed, Devaraj V. Chandrasekar, Ramesh Mullangi, Nuggehally R. Srinivas |Titel=Clinical Drug–Drug Pharmacokinetic Interaction Potential of Sucralfate with Other Drugs: Review and Perspectives |Sammelwerk=European Journal of Drug Metabolism and Pharmacokinetics |Band=41 |Nummer=5 |Datum=2016-10 |Seiten=469–503 |DOI=10.1007/s13318-016-0335-4}}</ref> [[Heparin]] wird insbesondere aus Schweinedärmen extrahiert und als gerinnungshemmendes Medikament ([[Antikoagulation|Antikoagulans]]) eingesetzt gegen [[Thrombose]]n und [[Lungenembolie]]n. Ein synthetisches [[Oligosaccharide|Oligosaccharid]] mit analoger gerinnungshemmender Wirkung ist das [[Fondaparinux]]. Seine Struktur entspricht genau der Abfolge aus fünf Zuckern, die für die gerinnungshemmende Wirkung des Heparins verantwortlich ist. Fondaparinux ist seit 2003 auf dem Markt.<ref name=":53" /> Zur Verbesserung der Eigenschaften, insbesondere der Wasserlöslichkeit, werden Medikamente oft in eine ionische Form überführt und als Salz eingesetzt. Dabei muss ein geeignetes Gegenion verwendet werden, da dieses ebenfalls Einfluss auf die Eigenschaften der Formulierung hat. Eine im Jahr 2007 publizierte Analyse aller von der [[Food and Drug Administration|FDA]] in den USA zugelassenen Medikamente ergab, dass etwa 38 % ionische Verbindungen waren, bei denen das Kation, die aktive Komponente ist. Das mit Abstand häufigste Gegenion war dabei das [[Chloride|Chlorid]], gefolgt von Sulfat.<ref>{{Literatur |Autor=G. Steffen Paulekuhn, Jennifer B. Dressman, Christoph Saal |Titel=Trends in Active Pharmaceutical Ingredient Salt Selection based on Analysis of the Orange Book Database |Sammelwerk=Journal of Medicinal Chemistry |Band=50 |Nummer=26 |Datum=2007-12-27 |DOI=10.1021/jm701032y |Seiten=6665–6672}}</ref>
[[Sucralfat]] ist ein Komplex aus [[Aluminiumhydroxid]] und sulfatierter [[Saccharose]] und wird in verschiedenen Ländern bei Krankheitsbildern eingesetzt, die mit [[Magengeschwür]]en einhergehen. Sucralfat wird kaum resorbiert und bildet eine Schutzschicht, wodurch eine Heilung befördert wird.<ref>{{Literatur |Autor=Suresh P. Sulochana, Muzeeb Syed, Devaraj V. Chandrasekar, Ramesh Mullangi, Nuggehally R. Srinivas |Titel=Clinical Drug–Drug Pharmacokinetic Interaction Potential of Sucralfate with Other Drugs: Review and Perspectives |Sammelwerk=European Journal of Drug Metabolism and Pharmacokinetics |Band=41 |Nummer=5 |Datum=2016-10 |Seiten=469–503 |DOI=10.1007/s13318-016-0335-4}}</ref> [[Heparin]] wird insbesondere aus Schweinedärmen extrahiert und als gerinnungshemmendes Medikament ([[Antikoagulation|Antikoagulans]]) eingesetzt gegen [[Thrombose]]n und [[Lungenembolie]]n. Ein synthetisches [[Oligosaccharide|Oligosaccharid]] mit analoger gerinnungshemmender Wirkung ist das [[Fondaparinux]]. Seine Struktur entspricht genau der Abfolge aus fünf Zuckern, die für die gerinnungshemmende Wirkung des Heparins verantwortlich ist. Fondaparinux ist seit 2003 auf dem Markt.<ref name=":53" /> Zur Verbesserung der Eigenschaften, insbesondere der Wasserlöslichkeit, werden Medikamente oft in eine ionische Form überführt und als Salz eingesetzt. Dabei muss ein geeignetes Gegenion verwendet werden, da dieses ebenfalls Einfluss auf die Eigenschaften der Formulierung hat. Eine im Jahr 2007 publizierte Analyse aller von der [[Food and Drug Administration|FDA]] in den USA zugelassenen Medikamente ergab, dass etwa 38 % ionische Verbindungen waren, bei denen das Kation, die aktive Komponente ist. Das mit Abstand häufigste Gegenion war dabei das [[Chloride|Chlorid]], gefolgt von Sulfat.<ref>{{Literatur |Autor=G. Steffen Paulekuhn, Jennifer B. Dressman, Christoph Saal |Titel=Trends in Active Pharmaceutical Ingredient Salt Selection based on Analysis of the Orange Book Database |Sammelwerk=Journal of Medicinal Chemistry |Band=50 |Nummer=26 |Datum=2007-12-27 |DOI=10.1021/jm701032y |Seiten=6665–6672}}</ref>


=== Farbstoffe und Pigmente ===
=== Farbstoffe und Pigmente ===
[[Datei:Reactive Black 5, Tetra-Na salt.svg|mini|500 px|center|Reaktive Black 5, ein Reaktivfarbstoff]]
[[Datei:Reactive Black 5, Tetra-Na salt.svg|mini|400 px|Reaktive Black 5, ein Reaktivfarbstoff]]
[[Reaktivfarbstoffe]] sind solche Farbstoffe, die beim Färbeprozess mit dem Substrat (beispielsweise Textilfasern) kovalente Bindungen ausbilden, und gehören zu den industriell wichtigsten Farbstoffen. Eine Variante sind Verbindungen, die eine Sulfatgruppe als Bestandteil einer Sulfooxyethylsulfonylgruppen enthalten, beispielsweise beim [[Reactive Black 5]].<ref>{{Literatur |Autor=Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz |Titel=Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry |Band=22 |Auflage=5th completely rev. ed |Verlag=VCH |Ort=Weinheim |Datum=1993 |ISBN=3-527-20122-X |Seiten=653 |Kommentar=Eintrag zu 'Reactive Dyes'}}</ref> Die eigentlich reaktive Gruppe, die die kovalente Bindung ausbildet, ist eine Vinylsulfongruppe. Diese ist als ''β''-Sulfatoethylsulfongruppe [[Maskierung (Chemie)|maskiert]].<ref name=":60">{{Literatur |Autor=Guoqiang Cai, Liangxi Sun, Jindan Wu, Jiping Wang |Titel=Influence of Nonionic Surfactant on Hydrolysis of Vinyl Sulfone Reactive Dye |Sammelwerk=Journal of Surfactants and Detergents |Band=18 |Nummer=6 |Datum=2015-11 |DOI=10.1007/s11743-015-1726-2 |Seiten=1127–1135}}</ref> Beim Erhitzen des Farbstoffs bei hohem ''p''H-Wert während des Färbeprozesses wird Sulfat eliminiert und so die reaktive Gruppe freigesetzt.<ref name=":60" /><ref name=":61">{{Literatur |Autor=J. Heyna |Titel=Reactive Dyes Containing Vinylsulfonyl Groups |Sammelwerk=Angewandte Chemie International Edition in English |Band=2 |Nummer=1 |Datum=1963-01 |DOI=10.1002/anie.196300201 |Seiten=20–23}}</ref> Die Farbstoffe werden durch Veresterung von Hydroxyethylsulfonen mit [[Schwefelsäure]] gewonnen und neutralisiert (z. B. mit [[Natriumhydroxid]]), um ein Salz zu erhalten. Sie eignen sich beispielsweise für die Färbung von [[Wolle]] und [[Baumwolle]].<ref name=":61" /> Gefälltes [[Bariumsulfat]] dient als Beschichtungspigment in der Papierherstellung, sowie als [[Füllstoff]] in Farben, Lacken und Tinte.<ref name=":64" /> [[Lithopone]] ist eine Weißpigment, das aus Bariumsulfat und [[Zinksulfid]] besteht. Hergestellt wird es, indem in Lösung [[Bariumsulfid]] mit [[Zinksulfat]] gemischt wird.<ref>{{Literatur |Autor=W. J. O'Brien |Titel=A Study of Lithopone |Sammelwerk=The Journal of Physical Chemistry |Band=19 |Nummer=2 |Datum=1915-02-01 |DOI=10.1021/j150155a002 |Seiten=113–144}}</ref> Es wird beispielsweise als Pigment für Farben und in Kunststoff verwendet.<ref>{{Literatur |Autor=Han Gao, Shuxue Yang, Danjun Mao, Mingce Long, Xiaolei Qu |Titel=Significant zinc release from widely-used commercial lithopone pigments under solar irradiation |Sammelwerk=Environmental Pollution |Band=292 |Datum=2022-01 |DOI=10.1016/j.envpol.2021.118352 |Seiten=118352}}</ref>
[[Reaktivfarbstoffe]] sind solche Farbstoffe, die beim Färbeprozess mit dem Substrat (beispielsweise Textilfasern) kovalente Bindungen ausbilden, und gehören zu den industriell wichtigsten Farbstoffen. Eine Variante sind Verbindungen, die eine Sulfatgruppe als Bestandteil einer Sulfooxyethylsulfonylgruppen enthalten, beispielsweise beim [[Reactive Black 5]].<ref>{{Literatur |Autor=Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz |Titel=Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry |Band=22 |Auflage=5th completely rev. ed |Verlag=VCH |Ort=Weinheim |Datum=1993 |ISBN=3-527-20122-X |Seiten=653 |Kommentar=Eintrag zu 'Reactive Dyes'}}</ref> Die eigentlich reaktive Gruppe, die die kovalente Bindung ausbildet, ist eine Vinylsulfongruppe. Diese ist als ''β''-Sulfatoethylsulfongruppe [[Maskierung (Chemie)|maskiert]].<ref name=":60">{{Literatur |Autor=Guoqiang Cai, Liangxi Sun, Jindan Wu, Jiping Wang |Titel=Influence of Nonionic Surfactant on Hydrolysis of Vinyl Sulfone Reactive Dye |Sammelwerk=Journal of Surfactants and Detergents |Band=18 |Nummer=6 |Datum=2015-11 |DOI=10.1007/s11743-015-1726-2 |Seiten=1127–1135}}</ref> Beim Erhitzen des Farbstoffs bei hohem ''p''H-Wert während des Färbeprozesses wird Sulfat eliminiert und so die reaktive Gruppe freigesetzt.<ref name=":60" /><ref name=":61">{{Literatur |Autor=J. Heyna |Titel=Reactive Dyes Containing Vinylsulfonyl Groups |Sammelwerk=Angewandte Chemie International Edition in English |Band=2 |Nummer=1 |Datum=1963-01 |DOI=10.1002/anie.196300201 |Seiten=20–23}}</ref> Die Farbstoffe werden durch Veresterung von Hydroxyethylsulfonen mit [[Schwefelsäure]] gewonnen und neutralisiert (z. B. mit [[Natriumhydroxid]]), um ein Salz zu erhalten. Sie eignen sich beispielsweise für die Färbung von [[Wolle]] und [[Baumwolle]].<ref name=":61" /> Gefälltes [[Bariumsulfat]] dient als Beschichtungspigment in der Papierherstellung, sowie als [[Füllstoff]] in Farben, Lacken und Tinte.<ref name=":64" /> [[Lithopone]] ist eine Weißpigment, das aus Bariumsulfat und [[Zinksulfid]] besteht. Hergestellt wird es, indem in Lösung [[Bariumsulfid]] mit [[Zinksulfat]] gemischt wird.<ref>{{Literatur |Autor=W. J. O'Brien |Titel=A Study of Lithopone |Sammelwerk=The Journal of Physical Chemistry |Band=19 |Nummer=2 |Datum=1915-02-01 |DOI=10.1021/j150155a002 |Seiten=113–144}}</ref> Es wird beispielsweise als Pigment für Farben und in Kunststoff verwendet.<ref>{{Literatur |Autor=Han Gao, Shuxue Yang, Danjun Mao, Mingce Long, Xiaolei Qu |Titel=Significant zinc release from widely-used commercial lithopone pigments under solar irradiation |Sammelwerk=Environmental Pollution |Band=292 |Datum=2022-01 |DOI=10.1016/j.envpol.2021.118352 |Seiten=118352}}</ref>


Zeile 431: Zeile 434:
Die Monoester der Schwefelsäure mit längerkettigen Alkoholen ([[Fettalkohole]]n) werden als [[Fettalkoholsulfate]] bezeichnet und in Reinigungsmitteln und Hygieneprodukten verwendet. Da sie in freier Form nicht stabil sind, werden sie als Salze, beispielsweise als Natriumsalze, verwendet. Wichtige Vertreter sind das [[Natriumlaurylsulfat]] (vom [[1-Dodecanol|Laurylalkohol]] mit 12 Kohlenstoffatomen), aber auch Verbindungen mit 14, 16 oder 18 Kohlenstoffatomen in der Alkylkette. Verwendet werden sie als [[Tensid]]e in [[Waschmittel|Wasch-]] und [[Geschirrspülmittel|Spülmitteln]]. Die [[Alkylethersulfate]] verfügen zwischen der Sulfatgruppe und dem Alkylrest zusätzlich über ein bis vier [[Ethylenglycol|Ethylenglycol-Gruppen]] (-CH<sub>2</sub>CH<sub>2</sub>O-). Alkylethersulfate bilden besonders viel Schaum, weshalb sie beispielsweise in Schaumbädern und [[Haarwaschmittel|Shampoos]] verwendet werden.<ref>{{Literatur |Autor=Fritz Ullmann |Titel=Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry |Band=Band 8 |Auflage=5th ed |Verlag=VCH |Ort=Weinheim New York |Datum=1987 |ISBN=978-3-527-20108-2 |Seiten=345-346 |Kommentar=Eintrag zu 'Detergents'}}</ref> Neben den Natriumsalzen werden Alkylethersulfate auch als Ammonium- und Magnesiumsalze in Hygieneprodukten verwendet, beispielsweise [[Ammoniumlaurylethersulfat]] und [[Magnesiumlaurylethersulfat]].<ref>{{Literatur |Autor=Valerie C. Robinson, Wilma F. Bergfeld, Donald V. Belsito, Ronald A. Hill, Curtis D. Klaassen, James G. Marks, Ronald C. Shank, Thomas J. Slaga, Paul W. Snyder, F. Alan Andersen |Titel=Final Report of the Amended Safety Assessment of Sodium Laureth Sulfate and Related Salts of Sulfated Ethoxylated Alcohols |Sammelwerk=International Journal of Toxicology |Band=29 |Nummer=4_suppl |Datum=2010-05 |DOI=10.1177/1091581810373151 |Seiten=151S–161S}}</ref>
Die Monoester der Schwefelsäure mit längerkettigen Alkoholen ([[Fettalkohole]]n) werden als [[Fettalkoholsulfate]] bezeichnet und in Reinigungsmitteln und Hygieneprodukten verwendet. Da sie in freier Form nicht stabil sind, werden sie als Salze, beispielsweise als Natriumsalze, verwendet. Wichtige Vertreter sind das [[Natriumlaurylsulfat]] (vom [[1-Dodecanol|Laurylalkohol]] mit 12 Kohlenstoffatomen), aber auch Verbindungen mit 14, 16 oder 18 Kohlenstoffatomen in der Alkylkette. Verwendet werden sie als [[Tensid]]e in [[Waschmittel|Wasch-]] und [[Geschirrspülmittel|Spülmitteln]]. Die [[Alkylethersulfate]] verfügen zwischen der Sulfatgruppe und dem Alkylrest zusätzlich über ein bis vier [[Ethylenglycol|Ethylenglycol-Gruppen]] (-CH<sub>2</sub>CH<sub>2</sub>O-). Alkylethersulfate bilden besonders viel Schaum, weshalb sie beispielsweise in Schaumbädern und [[Haarwaschmittel|Shampoos]] verwendet werden.<ref>{{Literatur |Autor=Fritz Ullmann |Titel=Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry |Band=Band 8 |Auflage=5th ed |Verlag=VCH |Ort=Weinheim New York |Datum=1987 |ISBN=978-3-527-20108-2 |Seiten=345-346 |Kommentar=Eintrag zu 'Detergents'}}</ref> Neben den Natriumsalzen werden Alkylethersulfate auch als Ammonium- und Magnesiumsalze in Hygieneprodukten verwendet, beispielsweise [[Ammoniumlaurylethersulfat]] und [[Magnesiumlaurylethersulfat]].<ref>{{Literatur |Autor=Valerie C. Robinson, Wilma F. Bergfeld, Donald V. Belsito, Ronald A. Hill, Curtis D. Klaassen, James G. Marks, Ronald C. Shank, Thomas J. Slaga, Paul W. Snyder, F. Alan Andersen |Titel=Final Report of the Amended Safety Assessment of Sodium Laureth Sulfate and Related Salts of Sulfated Ethoxylated Alcohols |Sammelwerk=International Journal of Toxicology |Band=29 |Nummer=4_suppl |Datum=2010-05 |DOI=10.1177/1091581810373151 |Seiten=151S–161S}}</ref>


Viele Sulfatsalze werden als Dünger eingesetzt, beispielsweise [[Ammoniumsulfat]] und das Doppelsalz [[Ammoniumsulfatnitrat]],<ref>{{Literatur |Autor=Fritz Ullmann |Titel=Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry |Band=2 |Auflage=5th ed |Verlag=VCH |Ort=Weinheim Deerfield beach (Fla.) |Datum=1985 |ISBN=3-527-20102-5 |Seiten=252-255 |Kommentar=Eintrag zu 'Ammonium Compounds'}}</ref> ebenso das Magnesium-Mineral Kieserit.<ref>{{Literatur |Autor=Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz |Titel=Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry |Band=Band 15 |Auflage=5th ed |Verlag=VCH |Ort=Weinheim New York |Datum=1990 |ISBN=978-3-527-20115-0 |Seiten=623 |Kommentar=Eintrag zu 'Magnesium Compounds'}}</ref> Auf mangan-armen Böden wird [[Mangan(II)-sulfat|Mangansulfat]] als Dünger eingesetzt.<ref name=":15" /> Der mit Abstand wichtigste Kaliumdünger ist [[Kaliumchlorid]]. Das teurere [[Kaliumsulfat]] wird nur in besonderen Fällen eingesetzt, wenn die Gefahr der [[Versalzung]] des Bodens besteht oder bei Pflanzen, die empfindlich auf Chlorid reagieren, beispielsweise [[Tabak]] und [[Zitruspflanzen|Zitrusfrüchten]].<ref name=":17" /> [[Kupfersulfatpentahydrat|Kupfersulfat-Pentahydrat]] wird in der Landwirtschaft als [[Fungizid]] eingesetzt.<ref name=":5" />
[[Carrageen]] ist ein natürliches sulfatiertes Polysaccharid, das viel in der Lebensmitteltechnik verwendet wird, beispielsweise als [[Verdickungsmittel|Verdickungs-]] und [[Geliermittel]]. Für die Gewinnung von Carrageen werden [[Rotalgen]], beispielsweise solche der Gattung ''[[Kappaphycus]]'', kommerziell angebaut.<ref>{{Literatur |Autor=José G. Ortiz-Tena, Doris Schieder, Volker Sieber |Titel=Carrageenan and More: Biorefinery Approaches with Special Reference to the Processing of Kappaphycus |Sammelwerk=Tropical Seaweed Farming Trends, Problems and Opportunities |Verlag=Springer International Publishing |Ort=Cham |Datum=2017 |ISBN=978-3-319-63497-5 |DOI=10.1007/978-3-319-63498-2_10 |Seiten=155–164}}</ref> Viele Sulfatsalze werden als Dünger eingesetzt, beispielsweise [[Ammoniumsulfat]] und das Doppelsalz [[Ammoniumsulfatnitrat]],<ref>{{Literatur |Autor=Fritz Ullmann |Titel=Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry |Band=2 |Auflage=5th ed |Verlag=VCH |Ort=Weinheim Deerfield beach (Fla.) |Datum=1985 |ISBN=3-527-20102-5 |Seiten=252-255 |Kommentar=Eintrag zu 'Ammonium Compounds'}}</ref> ebenso das Magnesium-Mineral Kieserit.<ref>{{Literatur |Autor=Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz |Titel=Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry |Band=Band 15 |Auflage=5th ed |Verlag=VCH |Ort=Weinheim New York |Datum=1990 |ISBN=978-3-527-20115-0 |Seiten=623 |Kommentar=Eintrag zu 'Magnesium Compounds'}}</ref> Auf mangan-armen Böden wird [[Mangan(II)-sulfat|Mangansulfat]] als Dünger eingesetzt.<ref name=":15" /> Der mit Abstand wichtigste Kaliumdünger ist [[Kaliumchlorid]]. Das teurere [[Kaliumsulfat]] wird nur in besonderen Fällen eingesetzt, wenn die Gefahr der [[Versalzung]] des Bodens besteht oder bei Pflanzen, die empfindlich auf Chlorid reagieren, beispielsweise [[Tabak]] und [[Zitruspflanzen|Zitrusfrüchten]].<ref name=":17" /> [[Kupfersulfatpentahydrat|Kupfersulfat-Pentahydrat]] wird in der Landwirtschaft als [[Fungizid]] eingesetzt.<ref name=":5" />


[[Datei:White-gold--rhodium-plated.jpg|mini|Rhodinierter Ring]]
[[Datei:White-gold--rhodium-plated.jpg|mini|Rhodinierter Ring]]

Version vom 16. März 2024, 13:58 Uhr

Schwefelsäure-
monoester

Sulfate sind Salze oder Ester der Schwefelsäure. Die Salze enthalten das Sulfat-Anion [SO4]2− bzw. das Hydrogensulfat-Anion [HSO4]. Die Ester der Schwefelsäure haben die allgemeine Formel R–O–SO2–O–R', dabei sind R und/oder R' organische Reste.

Geschichte

Obwohl ihre chemische Zusammensetzung damals noch unbekannt war, sind einige Sulfatsalze schon seit mehreren Jahrtausenden bekannt, insbesondere das Calciumsulfat, das schon in der Bronzezeit in verschiedenen Formen als Baustoff verwendet wurde, sowie das Alaun, das mindestens seit der Antike als Gerbstoff verwendet wird. Der grundlegende Aufbau einiger Sulfatsalze wie des Natriumsulfats ist seit dem 17. Jahrthundert bekannt. Im 19. Jahrhundert wurden viele Entdeckungen zu natürlichen Schwefelsäureestern gemacht.

Mittelalterliches Alabasterrelief aus Großbritannien

Im östlichen Mittelmeerraum und im mittleren Osten war die Verwendung von Gipsmörtel schon vor Jahrtausenden verbreitet. Beispielsweise ist die Verwendung im alten Ägypten im dritten Jahrtausend vor Christus belegt. Wichtige antike Stätten, an denen die Verwendung belegt ist, sind der Alte Palast von Aššur und die Ruinen von Amarna. Auch im Partherreich wurde Gips als Mörtel verwendet, um Gewölbe zu bauen. Von der Zeit des Römischen Reichs bis ins 19. Jahrhundert war Kalkmörtel bei weitem am wichtigsten, allerdings wurde auch im Mittelalter zum Teil Gipsmörtel verwendet oder Gips zu Kalkmörtel zugesetzt, damit dieser schneller bindet, beispielsweise in Frankreich.[1] Die Verwendung von Calciumsulfat in Zement wird seit Ende des 19. Jahrhunderts erforscht, seit etwa 1930 wird es verbreitet eingesetzt.[2] In der Bronzezeit wurde Gips-Alabaster im Minoischen Kreta viel für dekorative Bauelemente verwendet. Gegen Ende der Bronzezeit wurde Gips-Alabaster aus kretischen Steinbrüchen auch anderswo verwendet, beispielsweise für Bänke in Mykene und als Bodenfliesen in Gebäuden in den Ruinen von Akrotiri auf Santorini.[3] Alabaster ist leicht zu bearbeiten und war im Mittelalter und in der Neuzeit ein verbreitetes und beliebtes Material für Skulpturen und Monumente. Alabaster wurde vor allem in Zentralengland, in Nordspanien und den Französischen Alpen abgebaut und über weite Strecken gehandelt. Im Jahre 1550 wurden religiöse Skulpturen in England verboten (siehe Reformatorischer Bildersturm) und im großen Stil Alabasterfiguren nach Frankreich verbracht.[4]

Einige Sulfate wurden außerdem historisch als Farbstoffe und Pigmente verwendet. Beispielsweise wurden zur Dekoration von Wänden und Statuen im Alten Ägypten neben anderen Pigmenten (beispielsweise Hämatit) auch Calciumsulfat und Jarosit verwendet.[5] Das Pigment Jarosit wurde auch in Mittelamerika nachgewiesen, in mehreren Gefäßen aus einer Grabstätte in Teotihuacan.[6] Im Mittelalter und in der Neuzeit war die Nutzung von Eisen-Gallus-Tinte weitverbreitet. Diese wurde aus Pflanzengalle und Eisen(II)-sulfat zubereitet.[7] Die Verwendung von Alaun (Kaliumaluminiumsulfat) in der Gerberei ist sehr alt und wurde möglicherweise schon im Alten Ägypten praktiziert.[8] Gesichert war es schon in der Antike in Rom und Griechenland bekannt und wurde historisch als Beize in der Wollfärberei und als Gerbstoff genutzt.[9] Die Technik des Gerbens mit Alaun war in der Antike und im Mittelalter weit verbreitet, obwohl der Effekt auf das Leder nicht permanent war, da das Alaun wieder ausgewaschen werden konnte.[8] Während des gesamten Mittelalters war Alaun ein wichtiges Industrieprodukt. Ab Mitte des 19. Jahrhunderts wurde es nach und nach durch andere Verbindungen ersetzt, insbesondere durch Aluminiumsulfat, sodass es heute kaum noch Bedeutung hat.[9]

Mehrere Schwefelsäuresalze sind schon seit mehreren Jahrhunderten bekannt. Natriumsulfat, bzw. sein Decahydrat, auch als Glaubersalz bezeichnet, wurde um 1625 von Johann Rudolf Glauber beschrieben. Seinen Beschreibungen zufolge wurde ihm in Neapel gegen seine Gesundheitsbeschwerden (er hatte vermutlich eine Infektionskrankheit) Wasser aus einer Quelle in der Nähe empfohlen. Das Wasser half ihm tatsächlich; daraufhin analysierte er es und entdeckte ein Salz, Natriumsulfat, das er Sal mirabile nannte. Jahre später fand er außerdem heraus, dass Natriumsulfat aus Steinsalz (Natriumchlorid) und Schwefelsäure hergestellt werden kann.[10] Magnesiumsulfat aus einer Mineralquelle in Epsom, England wurde Ende des 17. Jahrhunderts wissenschaftlich beschrieben. Auch dass es sich um Magnesiumsulfat handelt, war schon im 18. Jahrhundert bekannt. Sowohl das Quellwasser als auch dem Salz hatten verschiedene medizinische Wirkungen, unter anderem wurden sie schon damals als Abführmittel und gegen Kopfweh eingesetzt.[11]

Die medizinische Verwendung von Gips in der Behandlung von Knochenbrüchen begann Anfang des 19. Jahrhunderts. Damals wurden hierzu Holzkästen verwendet, die mit gegossenem Gips aufgefüllt wurden. Diese Technik war zu der Zeit in Europa verbreitet aber unpraktisch, da die Gipskonstruktionen sehr schwer waren, was ein Verlassen des Krankenbetts damit weitgehend unmöglich machte. Mit Gips fixierte Bandagen für Gipsverbände kamen erst Mitte des 19. Jahrhunderts auf und wurden noch längere Zeit in Krankenhäusern frisch hergestellt. Erst in den 1930er-Jahren wurden gebrauchsfertige Gipsbandagen kommerziell verfügbar.[12] Eine weitere wichtige medizinische Errungenschaft ist die Verwendung von Magnesiumsulfat zur Behandlung von Krampfbeschwerden im Rahmen der Schwangerschaft (Eklampsie). Zum ersten Mal eingesetzt wurde die Verbindung in diesem Zusammenhang im Jahr 1916. Bis 1930 hatte Magnesiumsulfat andere weniger geeignete Medikamente (beispielsweise Opioide) bei der Behandlung solcher Beschwerden fast vollständig verdrängt und zu einer deutlichen Verringerung der Müttersterblichkeit geführt.[13]

Eugen Baumann entdeckte im 19. Jahrhundert, dass Phenol zu Kaliumphenylsulfat metabolisiert wird

Seit dem Ende des 19. Jahrhunderts wurden außerdem viele Naturstoffe mit Sulfatgruppen entdeckt. So wurde schon 1873 das Pflanzengift Atractylosid im Gummi-Spindelkraut entdeckt.[14] Die Umwandlung von Giftstoffen in Schwefelsäureester in Lebewesen (Sulfatierung) wurde kurz darauf entdeckt. 1876 berichtete Eugen Baumann von der Entdeckung einer unbekannten Verbindung aus Urin. Diese hielt er zunächst irrtümlich für eine Sulfonsäure, identifizierte sie aber kurz darauf korrekt als Kaliumphenylsulfat. In seiner weiteren Arbeit stellte er unter anderem fest, dass eingenommenes Phenol von Menschen und Hunden in diese Verbindung umgewandelt wird, dass das Sulfat wesentlich weniger giftig ist als Phenol selbst und dass Brenzcatechin und Indol ebenfalls Sulfate bilden.[15] Zu den früh entdeckten natürlichen Sulfaten gehören die Glucosinolate bzw. Senfölglycoside aus den Kreuzblütlern, von denen zwischen 1897 und 1899 gleich mehrere isoliert wurden, darunter das Gluconasturtiin aus der Brunnenkresse und das Sinalbin aus dem Weißen Senf.[16] Eine weitere Gruppe natürlicher Schwefelsäureester sind die von Flavonoiden abgeleiteten, von denen der erste, Persicarin, 1937 aus dem Wasserpfeffer isoliert wurde.[17] Das Heparin, ein natürlich im Blut vorkommendes gerinnungshemmendes Mittel (Antikoagulans), wurde 1916 entdeckt. Seit 1935 wird es medizinisch eingesetzt.[18] Phosphoadenosinphosphosulfat ist eine aktivierte Form des Sulfations, die in Lebewesen zur Bildung von Schwefelsäureestern dient. Dieses Molekül wurde in den 1950er-Jahren entdeckt und seine Struktur und Biosynthese aufgeklärt.[19]

Dimethylsulfat und Diethylsulfat wurden zuerst 1835 von Eugène-Melchior Péligot und Jean-Baptiste Dumas durch Destillation von Methanol bzw. Ethanol mit Schwefelsäure hergestellt. Um 1900 begann in Lyon die industrielle Herstellung aus Schwefeltrioxid und Dimethylether.[20] Im 20. Jahrhundert wurde verschiedene wichtige Synthesemethoden zur Herstellung von Schwefelsäureestern entwickelt. So wurden in den 1930er- und 1940er-Jahren verschiedene Methoden zur Veresterung von Alkoholen mit Schwefeltrioxid und seinen Komplexen entwickelt.[21]

Das Sulfat-Ion und das Hydrogensulfat-Ion

Das Sulfat-Ion wird oft wie links mit Doppelbindungen dargestellt. Vermutlich entspricht die tatsächliche Bindungssituation aber eher der Darstellung rechts, die der Oktett-Regel genügt und dafür eine größere Ladungstrennung aufweist.

Die Bindungsverhältnisse im Sulfat-Ion können entweder durch mesomere Grenzstrukturen mit delokalisierten π-Bindungen und zwei negativ geladenen Sauerstoffatomen oder durch Ladungstrennung mit zweifach positiv geladenem Schwefelatom und negativer Ladung an jedem Sauerstoffatom beschrieben werden. Gilbert Lewis veröffentlichte 1916 die Theorie, dass Atome in Verbindungen bevorzugt 8 Außenelektronen tragen (Oktettregel), und sah dies auch beim Sulfat-Ion als gegeben.[22] Die Schreibweise des Sulfat-Ions mit lediglich zwei negativen Ladungen auf Sauerstoffatomen ist zwar weit verbreitet. Verschiedene Berechnungen widersprechen jedoch klar dem Gedanken, dass diese Schreibweise die tatsächliche Struktur wiedergibt: Die S-O-Bindungen weisen einen erheblichen ionischen Charakter auf, also eine Ladungstrennung. Außerdem müssten zusätzliche Bindungen, die über eine Anzahl von vier hinausgehen, durch d-Orbitale ausgebildet werden. Diese spielen aber vermutlich kaum eine Rolle, da Berechnungen zufolge im zeitlichen Mittel nur 0,19 Elektronen im gesamten Molekül in d-Orbitalen vorliegen. Pro Bindung sind aber zwei Elektronen nötig, also vier für einen sechsbindigen Schwefel. Heutigen Erkenntnissen zufolge entspricht also die Formel mit vier negativ geladenen und einfach gebundenen Sauerstoffatomen eher den tatsächlichen Bindungsverhältnissen als die Formel mit sechsbindigem Schwefel.[23]

Das Sulfat-Ion weist in Lösung eine Tetraeder-Symmetrie auf, die S-O-Bindungen sind alle gleichwertig und gleich lang.[24] In wässriger Lösung verfügen Ionen über eine sogenannte Hydrathülle aus Wassermolekülen, die über elektrostatische Kräfte an das Ion gebunden sind. Beim Sulfat-Ion besteht die Hydrathülle aus 13 Wassermolekülen.[25] In kristallinen Feststoffen hängt die Struktur von Sulfat-Ionen von der Zusammensetzung des jeweiligen Salzes ab. Die Winkel zwischen zwei S-O-Bindungen schwanken dabei zwischen 95 ° und 120 °, die Bindungslängen der S-O-Bindungen schwanken zwischen 1,4 und 1,8 Å.[26]

Schwefelsäure ist eine starke zweiprotonige Säure. Zum pKS-Wert der ersten Deprotonierung der Schwefelsäure liegen in der Literatur sehr unterschiedliche Angaben zwischen −2 und −9 vor. Eine theoretische Analyse aus dem Jahr 2018 kommt beispielsweise auf einen Wert zwischen −4,5 und −8,6.[27] Das Hydrogensulfat-Ion reagiert ebenfalls sauer, ist aber keine starke Säure. Seine Dissoziationskonstante K ist etwa 0,0103,[28] was einem pKS-Wert von 1,99 entspricht. Folglich enthält eine wässrige Lösung kaum undissoziierte Schwefelsäure-Moleküle, sondern hauptsächlich Hydrogensulfat-Ionen, sowie eine kleinere Menge an Sulfat-Ionen. Schwefelsäure zeigt eine nennenswerte Autoprotolyse, die beispielsweise ausgeprägter ist als bei Wasser: Bei der Schwefelsäure beträgt die Autoprotolyse-Konstante 3,6, bei Wasser 14. Auch in konzentrierter Schwefelsäure liegen also Hydrogensulfat-Ionen vor.[29]

Vertreter und Eigenschaften

Kupfersulfat-Pentahydrat

Als Sulfate werden einerseits die Salze der Schwefelsäure benannt, andererseits die Ester. Die Salze der zweiprotonigen Schwefelsäure (H2SO4) lassen sich in Sulfate und Hydrogensulfate einteilen. Das Hydrogensulfat (HSO4-) und das Sulfat (SO42-) sind die einfach beziehungsweise zweifach deprononierten Anionen der Schwefelsäure, die in ihren Salzen enthalten sind. Bei einwertigen Kationen MI gelten die Summenformeln MIHSO4 und MI2SO4.[30] Alaune sind Doppelsalze aus ein- und dreiwertigen Kationen mit der allgemeinen Summenformel MIMIII(SO4)2 · 12 H2O.[30] Als Vitriole werden die Sulfate zweiwertiger Nebengruppen-Metalle (Kupfervitriol, Eisenvitriol etc.) sowie des Magnesiums bezeichnet, die vier bis sieben Moleküle Kristallwasser enthalten.[31] Auch die Ester der Schwefelsäure, die eine kovalent gebundene Sulfatgruppe enthalten, werden als Sulfate bezeichnet. Dazu gehören einerseits die Diester, bei denen zwei Moleküle eines Alkohols mit der Säure verestert sind, RO-SO2-OR. Andererseits auch die Monoester RO-SO2-OH und deren Salze RO-SO3-MI.[30]

Schwefelsäuresalze

Die meisten Sulfate sind in Wasser löslich. Ausnahmen bilden die wenig oder schwerlöslichen Sulfate der Erdalkalimetalle Calciumsulfat, Strontiumsulfat, Bariumsulfat und Radiumsulfat sowie Blei(II)-sulfat.[30][32] Das Radiumsulfat ist das am schlechtesten lösliche bekannte Sulfat.[33] Bismut(III)-sulfat, Chrom(III)-sulfat und Quecksilber(II)-sulfat sind ebenfalls eher schlecht löslich, lösen sich im Sauren aber gut.[32] In der folgenden Tabelle sind verschiedene wichtige Sulfatsalze, sowie je zwei Beispiele der Hydrogensulfate und der Alaune mit ihren Eigenschaften angegeben.

Wichtige Salze der Schwefelsäure
Name Formel Farbe Wasserlöslichkeit Schmelzpunkt Quelle
Ammoniumsulfat (NH4)2SO4 farblos hoch 235 °C (Zersetzung) [34]
Natriumsulfat Na2SO4 weiß hoch 888 °C [35]
Kaliumsulfat K2SO4 farblos bis weiß hoch 1067 °C [36]
Magnesiumsulfat MgSO4 weiß hoch 1124 °C (Zersetzung) [37]
Calciumsulfat CaSO4 weiß gering 1450 °C [38]
Strontiumsulfat SrSO4 weiß sehr gering 1605 °C [39]
Bariumsulfat BaSO4 weiß praktisch unlöslich 1600 °C (Zersetzung) [40]
Aluminiumsulfat Al2(SO4)3 weiß hoch 770 °C (Zersetzung) [41]
Chrom(III)-sulfat Cr2(SO4)3 Rotviolett gering 700 °C (Zersetzung) [42]
Mangansulfat MnSO4 weiß hoch 700 °C [43]
Eisen(II)-sulfat FeSO4 weiß, als Heptahydrat bläulich oder grünlich hoch 400 °C (Zersetzung) [44]
Nickelsulfat NiSO4 gelb, als Hexahydrat grün oder blau hoch 840 °C (Zersetzung) [45]
Kupfersulfat CuSO4 weiß hoch 560 °C (Zersetzung) [46]
Zinksulfat ZnSO4 Weiß hoch 680 °C (Zersetzung) [47]
Natriumhydrogensulfat NaHSO4 Farblos hoch 315 °C (Zersetzung) [48]
Kaliumhydrogensulfat KHSO4 Farblos hoch Ca. 195-214 °C (Zersetzung) [49]
Kaliumalaun KAl(SO4)2·12 H2O Farblos Hoch 92,5 °C [50]
Chromalaun KCr(SO4)2·12 H2O Dunkelviolett Hoch 89 °C [51]

Schwefelsäureester

Diethylsulfat, ein Schwefelsäureester

Symmetrische Dialkylsulfate bis einschließlich Dihexylsulfat sind wenig flüchtige Flüssigkeiten.[20] Dimethylsulfat hat einen Schmelzpunkt von −32 °C, eine Dichte von 1,33 g/mL und zersetzt sich ab etwa 188 °C.[52] Diethylsulfat hat einen Schmelzpunkt von −25 °C, eine Dichte von 1,18 g/mL und zersetzt sich ab etwa 205 °C.[53] In Wasser sind die Dialkylsulfate schlecht löslich, in aromatischen Kohlenwasserstoffen und polaren organischen Lösungsmitteln aber gut löslich. Dialkylsulfate sind starke Alkylierungsmittel. Je kleiner der organische Rest, desto reaktiver sind sie. Dimethylsulfat und Diethylsulfat sind ausgesprochen gefährlich. Bei der Exposition gegenüber geringen Konzentrationen Dimethylsulfat treten zunächst nur geringe Symptome auf, jedoch kann es nach stundenlanger Verzögerung zu einem Lungenödem kommen. Durch die Eigenschaften als Alkylierungsmittel wirkt es krebserregend und kann beispielsweise Nasenkrebs verursachen. Es wirkt außerdem durch Methylierung der DNA mutagen. DNA-Basen und damit das Erbgut werden durch Übertragung von Methylgruppen modifiziert, was zu genetischen Defekten führen kann. Durch die langsamere Hydrolyse ist die akute Toxizität von Diethylsulfat geringer als die von Dimethylsulfat, die Symptome sind jedoch ähnlich und können bis zu Lungenödemen reichen.[54]

Vorkommen

Sowohl Salze als auch Ester der Schwefelsäure kommen in der Natur verbreitet vor.

Vorkommen von Sulfat-Ionen

Sulfat ist eines der häufigsten Anionen in Mineralwasser, neben Chlorid und Hydrogencarbonat.[55] Es ist außerdem das zweithäufigste Anion in Meerwasser mit einem Gehalt von etwa 2,71 g/kg bzw. etwa 2700 ppm.[56][57] Chloridionen kommen mit gut 19 g/kg in deutlich größerer Menge vor, alle weiteren Anionen, darunter beispielsweise Bromid und Carbonat, kommen mit unter 0,2 g/kg in deutlich kleineren Mengen vor.[57] Die Zusammensetzung der Ionen in Salzseen ist sehr variabel und auch saisonal unterschiedlich. In vielen Fällen enthält das Wasser aber erhebliche Mengen Sulfat.[58] Ein Beispiel ist der Große Salzsee in Utah in den USA.[59]

Trockenfrüchte, beispielsweise getrocknete Aprikosen, enthalten viel Sulfat

In Lebewesen kommen ebenfalls freie Sulfationen in Lösung vor. Beispielsweise ist Schwefel ein essentielles Element für Pflanzen und liegt überwiegend in Form von Sulfat-Ionen vor, zum Teil zu über 90 %.[60] Sulfat-Ionen sind Ausgangsprodukt der Schwefelassimilation bei Pflanzen und Mikroorganismen. Dabei werden Sulfat-Ionen reduziert und überwiegend in Cystein umgewandelt.[61] Sulfat ist auch in allen Lebensmitteln enthalten, der Gehalt ist in verschiedenen Produkten sehr verschieden. In einer Studie Anfang der 1990er-Jahre wurden die Sulfat-Gehalte in vielen Lebensmitteln ermittelt. Die höchste Werte wurden in getrockneten Äpfeln (49 μmol/g) und getrockneten Aprikosen (30 μmol/g) gemessen. Weitere hohe Werte über 10 μmol/g wurden in Weizenbrot (13 μmol/g bzw. 15 μmol/g), Sojamehl (12 μmol/g) und Brunnenkresse (11 μmol/g), sowie in weiteren Trockenfrüchten wie Rosinen (13 μmol/g) und Datteln (11 μmol/g) gefunden. Nüsse und Samen enthalten ebenfalls höhere Mengen, beispielsweise wurden je 9 μmol/g in Mandeln und Haselnüssen gemessen. Frisches Obst und Gemüse enthält im Allgemeinen wenig Sulfat, ein vergleichsweise hoher Wert wurde mit 5,2 μmol/g in Avocados gefunden. Eine Ausnahme bilden die Gemüse der Gattung Brassica, bei denen größere Mengen von Sulfat in Form von Glucosinolaten vorliegen (siehe auch entsprechenden Abschnitt weiter unten). Neben dem hohen Sulfat-Gehalt in Brunnenkresse wurden beispielsweise auch in Brokkoli, Rosenkohl, sowie Rot- und Weißkohl Mengen zwischen 8 und 10 μmol/g gefunden. Der hohe Gehalt an Sulfat in Trockenfrüchten ist vermutlich auf die Konservierung durch Schwefeln zurückzuführen, wobei Schwefeldioxid, Sulfit oder Disulfit zugesetzt wird. Neben Sulfat-Ionen, die als Verunreinigung in Sulfit oder Disulfit vorliegen können, kann Sulfat auch durch Oxidation der zugesetzten Verbindungen entstehen.[62]

Minerale

Viele Metallsulfate kommen in der Natur in Form von Mineralen vor. Die Sulfatminerale weisen ein nichtmetallisches Aussehen auf sowie im Allgemeinen eine geringe Dichte und Härte[63] teilweise sind sie auch wasserlöslich und wenig beständig.[64] Die Sulfate der Erdalkalimetalle sind besonders stabil und besonders weit verbreitet.[63] Sulfatminerale können auf verschiedenen Wegen gebildet werden. Dazu gehört einerseits die Ausfällung aus wässriger Lösung (sowohl im Meer als auch in Seen) und die Oxidation anderer Schwefelverbindungen, beispielsweise Sulfide.[64]

In den gängigen Mineralsystematiken bilden die Sulfatminerale eigene Systemklassen. In der von der International Mineralogical Association (IMA) zuletzt 2009 aktualisierten 9. Auflage der Mineralsystematik nach Strunz bilden die Sulfate eine Klasse, zu der auch die Selenate, Tellurate, Chromate, Molybdate und Wolframate gerechnet werden.[65] Die Lapis-Systematik leitet sich von der alten Systematik nach Strunz in der 8. Auflage ab und enthält analog eine Klasse Sulfatminerale (einschließlich Chromate, Molybdate und Wolframate).[66] In der Mineralsystematik nach Dana bilden die Sulfate zusammen mit den Chromaten und Molybdaten eine eigene Klasse, die aus 9 Abteilungen besteht. Aufgeteilt sind diese je nach Vorhandensein von Kristallwasser sowie weiteren Anionen.[67][68] Stand 2018 waren rund 450 Sulfat-Minerale bekannt.[66]

Calciumsulfat

Das mit Abstand häufigste natürlich vorkommende Sulfat ist Calciumsulfat (CaSO4), das in mehreren Mineralarten und -varietäten auftritt. Mit Kristallwasseranteil wird es als Gips (CaSO4·2H2O) oder Bassanit (CaSO4·½H2O) bezeichnet, ohne als Anhydrit. Gips ist das häufigste Sulfatmineral, das in vielen Vorkommen und enormen Mengen weltweit vorkommt.[69][70] Es ist ein Evaporit-Mineral, entsteht also durch Ausfällung aus wässriger Lösung, wenn diese durch Verdunstung aufkonzentriert wird. Möglich ist dies einerseits bei Meerwasser, andererseits auch in Seen, wenn diese eine hohe Sulfatkonzentration aufweisen.[69] Die drei Minerale können sich in Abhängigkeit der Feuchtigkeit oder der Trockenheit der Umgebung leicht ineinander umwandeln.[71] Wird Gips unter anderem Material begraben, führen erhöhter Druck und erhöhte Temperatur (ab etwa 42 °C) zur Entwässerung und Bildung von Anhydrit. Gelangt der Anhydrit wieder an die Erdoberfläche, wird mit der Zeit Gips zurückgebildet. In vielen Vorkommen treten auch beide Formen gemeinsam auf.[72]

In verschiedenen Weltregionen liegen geeignete Bedingungen für die Neubildung von Gips vor. Ein Beispiel für die Bildung aus Meerwasser ist der Persische Golf; Seen, an denen Gips gebildet wird, sind beispielsweise der Große Salzsee in Utah (USA), die Laguna de Callocanta (Spanien) und der Tschad-See. Besonders alte Gips-Vorkommen liegen in Australien und Nordwestrussland. Geologisch jüngere Vorkommen existieren beispielsweise in Kanada und den USA, in Mitteleuropa (Zechstein) und in den Anden.[69] Im White-Sands-Nationalpark in New Mexico gibt es Sanddünen, die überwiegend, zu etwa 96 %, aus feinen Gipskörnern bestehen.[73] Eine reinweiße und extrem feinkörnige Gipsvariante wird Alabaster genannt, transparente Gips-Einkristalle bilden das Marienglas.[74] In der Mine von Naica in Mexiko kommen riesige Kristalle aus Marienglas vor, die bis zu elf Meter lang und einen Meter dick sind.[75] Sandrosen bestehen aus verwachsenen Gipskristallen und Sandkörnern.[76] In der Atacama-Wüste gibt es größere Vorkommen von Calciumsulfat, die aufgrund der Trockenheit hauptsächlich aus Anhydrit mit einer dünnen Gipsschicht bestehen.[71] Bassanit-Vorkommen sind selten, er wurde aber beispielsweise in der Kalifornischen Wüste, am Vesuv und in Ölsanden aus Zentralasien nachgewiesen,[77] außerdem in der Cioclovina-Höhle in Rumänien.[78] Anhydrit, Bassanit und Gips wurden auch auf dem Mars entdeckt.[79] Beispielsweise wurde in der nördlichen Polarregion Calciumsulfat nachgewiesen, bei dem es sich vermutlich überwiegend um Gips handelt.[80]

Andere Minerale

Coelestin und Arcanit

Die wichtigsten Sulfatminerale neben den Calciumsulfaten sind Baryt (Schwerspat, BaSO4), Coelestin (SrSO4), Anglesit (PbSO4) und Epsomit (MgSO4·7 H2O).[63][81] Anglesit bildet sich als Sekundärmineral aus Galenit (PbS). Oft wird Galenit jedoch stattdessen zu Cerussit (PbCO3) umgewandelt, sodass Anglesit im Gegensatz zu diesen beiden Mineralen seltener ist.[82] Kaliumsulfat kommt natürlich in Form des Minerals Arcanit vor, beispielsweise in Guano-Ablagerungen und Fumarolen.[83] Es ist eine zweistellige Zahl an Sulfat-Mineralen bekannt, die in und um Salzseen vorkommen. Häufige Vertreter neben Gips sind Blödit (Na2Mg[SO4]2·4 H2O), Mirabilit (Na2SO4·10 H2O), Thenardit (Na2SO4), sowie Epsomit (MgSO4·7 H2O) und Hexahydrit (MgSO4·6 H2O).[84]

Biominerale

Zeichnungen von Acantharia

Biominerale sind mineralische Verbindungen, die von Lebewesen gebildet werden und verschiedene Funktionen erfüllen, beispielsweise als Skelett oder Sinnesorgan. Verschiedene Sulfat-Minerale kommen als Biominerale in Lebewesen vor, vor allem in solchen, die im Meer leben.[85] Die einzelligen Acantharia besitzen ein Skelett, das aus zehn oder zwanzig Skleriten (Skelett-Segmenten) besteht. Bei den Skleriten handelt es sich jeweils um Einkristalle aus Coelestin (Strontiumsulfat).[86] Sulfatminerale, insbesondere Bassanit (CaSO4 · ½ H2O), kommen als Biominerale in sogenannten Statolithen bei Quallen vor. Dabei handelt es sich um kleine Steine bzw. Kristalle, die der Wahrnehmung der Schwerkraft dienen.[87] Die Schirmquallen und Würfelquallen werden in das Taxon Rhopaliophora zusammengruppiert und besitzen beide Statolithen aus Calciumsulfat, während die Hydrozoen Statolithen aus Calciummagnesiumphosphat besitzen.[88] In einem konkreten Fall wurden Statolithen der Kronenqualle röntgendiffraktometrisch mittels Synchrotronstrahlung untersucht. Es handelt um Bassanit-Einkristalle mit einer Länge von etwa 60 μm und einem Durchmesser von etwa 15 μm.[89] Auch Statolithen einer Würfelqualle der Gattung Carbybdea wurde mittels Röntgendiffraktometrie untersucht. Diese bestanden ebenfalls aus Bassanit, allerdings in Form eines Clusters anstatt in Form von Einkristallen.[88] Bassanit wird normalerweise leicht zu Gips hydratisiert, was aber durch Einbettung in Membranen verhindert wird. Mit einer etwa 32 % höheren Dichte gegenüber Gips ist Bassanit zum Zweck der Gravitationswahrnehmung vorteilhaft.[89][90] Sulfat kann auch in geringen Mengen in Muschelschalen mit eingebaut werden, die überwiegend aus Aragonit (Calciumcarbonat) bestehen. Bei der Riesenmuschel-Art Hippopus hippopus wurden in der Schale Sulfat-Anteile bis über 0,1 % nachgewiesen.[91] Baryt zur Gravitationswahrnehmung kommt in Algen der Gattung Chara vor.[92] Neben den Vorkommen in Meereslebewesen wurden auch im Holz des Zahnbürstenbaums Bassanit-Kristalle nachgewiesen.[93]

Atmosphärenchemie

Schematische Darstellung der Bildung von Sulfataerosolen: Schwefeldioxid (Mitte) wird von Vulkanen und Industrie emittiert, sowie durch Oxidation von schwefelorganischen Verbindungen gebildet. Zu letzteren gehört vor allem Dimethylsulfid, das von Phytoplankton emittiert wird (unten links). Durch Oxidation und Reaktion mit Wasser bildet sich Schwefelsäure, deren Dissoziation in Wasser Hydrogensulfat und Sulfat ergibt

Sulfataerosole, die insbesondere aus dissoziierter Schwefelsäure bestehen, also in Form von gelösten Hydrogensulfat-Ionen bestehen, haben einen erheblichen Einfluss auf das Klima und können insbesondere vorübergehende Abkühlungen verursachen.[94][95] Sulfataerosole entstehen aus Schwefeldioxid, das im Wesentlichen aus drei Quellen stammt: Industrielle Abgase, Vulkanausbrüche und Oxidation von Dimethylsulfid, das durch Phytoplankton freigesetzt wird. Durch Oxidation des Schwefeldioxids, beispielsweise durch Hydroxylradikale, und Reaktion mit Wasser wird in der Atmosphäre Schwefelsäure gebildet. Schwefelsäure- und Wassermoleküle bilden feine Partikel, wobei sich durch Dissoziation der Säure insbesondere Hydrogensulfat-Ionen bilden. Alternativ kann sich Schwefeldioxid auch im Wasser vorhandener Wolken lösen, wo es durch Wasserstoffperoxid oxidiert wird. Auch in diesem Fall bildet sich Schwefelsäure, die jedoch sofort in Lösung vorliegt und zu Hydrogensulfat dissoziiert. In beiden Fällen können durch Reaktion mit Ammoniak Schwefelsäure beziehungsweise Hydrogensulfat zumt Teil zu Ammoniumsulfat weiterreagieren. Die abkühlende Wirkung der Sulfataerosole beruht einerseits auf der Eigenschaft der Partikel, Sonnenlicht zu reflektieren. Andererseits wirken sie auch als Kondensationskeime für die Wolkenbildung und erhöhen die Dichte und die Albedo (die Reflexionsfähigkeit) der Wolken.[96]

Sulfataerosole können zu deutlichen Temperaturabkühlungen führen, allerdings ist der Effekt im Allgemeinen zeitlich und örtlich begrenzt, da die Aerosole nicht besonders lange in der Atmosphäre verbleiben und sich dadurch auch nicht gleichmäßig in der gesamten Atmosphäre verbreiten können.[96] Gemäß einer Studie, die in der Fachzeitschrift Science publiziert wurde, hat die Freisetzung von Schwefeldioxid durch die Industrie in einigen Weltregionen vorübergehend die Klimaerwärmung durch Treibhausgase ausgeglichen, insbesondere in Mitteleuropa und den östlichen Vereinigten Staaten.[97] Speziell bei größeren Vulkanausbrüchen wird das freigesetzte Schwefeldioxid bis in die Stratosphäre getragen, wo die Aerosolpartikel mehrere Jahre verweilen können und dann auch globale Klimaeffekte verursachen. Durch Ablagerungen von Sulfatpartikel können aus der Analyse von Eisbohrkernen Rückschlüsse auf Vulkanausbrüche in der Vergangenheit gezogen werden.[98]

Caldera des Pinatubo (Philippinen)

Beispiele für Vulkanausbrüche, die zu einer vorübergehenden Abkühlung des Klimas führten, sind der Ausbruch des Krakatau 1883 und der Ausbruch des Pinatubo 1991.[96] Die durch den Ausbruch des Pinatubo 1991 freigesetzte Menge an Schwefeldioxid betrug etwa 20 Millionen Tonnen. Die globale Durchschnittstemperatur war 1992 etwa 0,4 °C kälter als erwartet und 1993 etwa 0,1 °C.[99] Der Ausbruch des Tambora 1815 setzte etwa 60 bis 80 Millionen Tonnen Schwefeldioxid frei und führten in vielen Regionen, vor allem auch in Europa, zu deutlichen klimatischen Abkühlungen in den folgenden Jahren, inklusive dem sogenannten Jahr ohne Sommer 1816.[100] In den Jahren 536 und 540 fanden vermutlich zwei Vulkanausbrüche statt, die etwa 30 bzw. 50 Millionen Tonnen Schwefeldioxid freisetzten. Die dadurch erzeugten Sulfat-Aerosole führten zu einer deutlichen Abschwächung der Sonneneinstrahlung und zu einer vorübergehenden Verringerung der weltweiten durchschnittlichen Temperatur um mehrere Grad. Das Jahr 536 war das durchschnittlich kälteste in den vergangenen zwei Jahrtausende und das darauf folgende Jahrzehnt ebenfalls das kälteste der vergangenen zwei Jahrtausende.[101]

Allgemeine biologische Bedeutung

Phosphoadenosinphosphosulfat (PAPS)

Sulfat-Ionen sind wenig reaktiv und werden sowohl in der Schwefel-Assimilation als auch für die Biosynthese von Schwefelsäureestern aktiviert, im Allgemeinen als Phosphoadenosinphosphosulfat (PAPS). Durch Reaktion von Sulfat mit Adenosintriphosphat (ATP) entsteht das gemischte Anhydrid Adenosinphosphosulfat. Dessen Phosphorylierung ergibt PAPS.[61] Bei Tieren werden beide Syntheseschritte des PAPS vom gleichen Enzym, der PAPS-Synthase, katalysiert. In Pflanzen, Pilzen und Bakterien werden die beiden Schritte jeweils von zwei verschiedenen Enzymen katalysiert.[102]

Im Rahmen der Schwefel-Assimilation bei Pflanzen und Mikroorganismen reagiert Adenosinphosphosulfat oder PAPS mit der Thiolgruppe eines Proteins. Dadurch bildet sich eine proteingebundene Thiosulfatgruppe. Diese kann durch eine Thiosulfatreduktase zu einer Disulfidgruppe reduziert werden. Das zweite Schwefelatom dieser Gruppe kann anschließend unter Abspaltung von Acetat auf O-Acetylserin übertragen werden, wodurch Cystein entsteht.[61]

Die Biosynthese von Sulfaten und die dafür nötigen Sulfotransferasen kommen bei allen Lebewesen vor. Als Quelle für die Sulfatgruppen dient dabei das PAPS. Sulfotransferasen kommen sowohl im Cytosol (in der Zellflüssigkeit) als auch membranständig (an die Zellmembran gebunden) vor. Cytosolische Sulfotransferasen setzen vor allem kleine Moleküle um, beispielsweise zur Regulierung von Steroidhormonen und zur Entgiftung von organismusfremden Stoffen. Die membranständigen Sulfotransferasen modifizieren überwiegend große Biomoleküle wie Proteine und Kohlenhydrate. Die Sulfatierung großer Biomoleküle spielt eine Rolle bei vielen biochemischen Prozessen. Modifikationen von Proteoglycanen sind beispielsweise wichtig für zelluläre Signaltransduktion und Molekülerkennung. Weitere Prozesse, bei denen sulfatierte Makromoleküle wichtig sind, sind der Eintritt von Viren in Zellen und die Regulierung der Blutgerinnung.[102][103] Wichtige für viele biologische Eigenschaften von Biomolekülen mit Sulfatgruppen ist die Tatsache, dass diese Gruppen bei physiologischen pH-Werten grundsätzlich deprotoniert vorliegen, also negativ geladen sind. Dies beeinflusst die Löslichkeit, kann die Konformation der Moleküle ändern und ermöglicht ionische Wechselwirkungen mit anderen Molekülen.[102] Neben den weitverbreiteten Sulfotransferasen, die PAPS als Sulfatquelle nutzen, kommen bei Bakterien auch noch PAPS-unabhängige Sulfotransferasen vor. Diese können Sulfatgruppen von einem Phenylester auf ein Phenol übertragen, wobei ein anderer Phenylester entsteht.[104]

Vorkommen in Tieren

In vielzelligen Tieren ist die Sulfatierung verschiedener Moleküle ein wichtiger biologischer Prozess, der in allen Organen stattfindet. Das für die Sulfatierung nötige PAPS kann beispielsweise bei Säugetieren in allen Geweben gebildet werden. Stand 2002 waren 44 cytosolische Sulfotranferasen aus Säugetieren bekannt sowie 32 membranständige Sulfotransferasen.[102] Aus dem Cytosol menschlicher Zellen waren Stand 2004 etwa zehn verschiedene Sulfotransferasen bekannt.[103]

Sulfatierung im Metabolismus kleiner Moleküle

Teilweise dient die Sulfatierung endogener (körpereigener Substanzen) dazu, bioaktive Verbindungen in eine stabile, inaktive Speicherform zu überführen. Sulfotransferasen, die der Regulierung von Hormonen dienen, sind im Allgemeinen recht selektiv für ihre jeweiligen Substrate. Sulfotransferasen, die der der Entgiftung dienen, können demgegenüber eine größere Bandbreite an Molekülen umsetzen. Die Estrogen-Sulfotransferase reguliert das Mengenverhältnis zwischen Estrogen und Estrogensulfat.[103] Auch das Hormon Pregnolon wird reguliert, indem es teilweise in das inaktive Pregnolonsulfat umgewandelt wird. Freie Catecholamine (beispielsweise Dopamin und Adrenalin) werden schnell abgebaut und liegen überwiegend in modifizierter Form vor, die sich aber bei verschiedenen Säugetieren unterscheidet. Bei Menschen ist die Sulfatierung die wichtigste Modifikation, während es bei Ratten die Glucuronidierung ist. Im Gegensatz zu anderen Reaktionen der Catecholamine ist die Sulfatierung reversibel. Viele Fremdstoffe inklusive Medikamente werden durch Sulfatierung deaktiviert und als Sulfate ausgeschieden. Eine Ausnahme stellte des Medikament Minoxidil dar, dessen im Körper gebildetes Sulfat die eigentlich aktive Verbindung ist.[102]

Indoxylsulfat wird beim Abbau von überschüssigem Tryptophan gebildet

Die Konjugatbildung durch Sulfatierung dient vielfach zur leichteren Ausscheidung verschiedener Stoffe, sowohl körpereigener als auch körperfremder. Sulfotransferasen kommen vermehrt in der Leber vor und können schlecht wasserlösliche Verbindungen sulfatiert werden. Eine wichtige Gruppe von Verbindungen, die so ausgeschieden werden, sind Phenole. Zu den körperfremden phenolischen Verbindungen, die so modifiziert werden, gehört beispielsweise para-Nitrophenol.[105] Phenol war die erste Verbindung, bei der die Metabolisierung durch Bildung eines Sulfat nachgewiesen wurde.[15] Im Fettsäurestoffwechsel ist die Sulfatierung wichtig für die Ausscheidung der dabei gebildeten Gallensäuren.[106] Überschüssiges Tryptophan wird im Körper zu Indoxylsulfat abgebaut.[107] Der Abbau und das Recycling der endogenen Schilddrüsenhromone Triiodthyronin und Tetraiodthyronin verläuft ebenfalls über eine Sulfatierung.[102] Auch über die Nahrung aufgenommene Flavonoide werden sulfatiert, beispielsweise wird aus Quercetin und seinen Glycosiden das Quercetin-3'-O-sulfat gebildet.[108] Andere körperfremde Stoffe, die im Metabolismus nachweislich zu Sulfaten umgesetzt werden, sind die Medikamente Salbutamol bzw. Levosalbutamol[109] und das in Alkaloid Harmin, das über Harmol zu Harmolsulfat metabolisiert wird.[110] Harmin ist in der Natur weitverbreitet und kommt unter anderem in vielen Pflanzen vor.[111]

Sulfatierung von Kohlenhydraten

Glycosaminoglycane sind Kohlenhydratketten, die aus zwei sich abwechselnden Zuckereinheiten bestehen: Einer Uronsäure und einem Aminozucker, die zusätzlich mehr oder weniger stark sulfatiert sind. Die Verbindungen weisen eine große Strukturvielfalt auf, was Kettenlänge und Sulfatierungsgrad angeht. Bei den sogenannten Proteoglycanen sind Glycosaminoglycanketten an Proteine gebunden. Die Proteoglycane erfüllen vielfältige biologische Funktionen unter anderem beim Aufbau von Geweben und der biochemischen Signaltransduktion.[102][112] Bei der Biosynthese von Glycosaminoglycanen durch Sulfotransferasen werden zunächst allgemeine Vorläufermoleküle gebildet, die zum Ende der Biosynthese an eine bestimmte biologische Funktion angepasst werden.[103] Die Polysaccharid-Kette wird dabei sulfatiert, wobei im Allgmeinen mehrere Sulfatgruppen pro Wiederholeinheit auftreten. Das genaue Muster der Sulfatgruppen ist aber je nach genauer Funktion der Moleküle unterschiedlich.[112]

Mögliche Wiederholeinheit des Chondroitinsulfats, in diesem Fall mit nur einer Sulfatgruppe

Beim Chondroitinsulfat sind die Zucker-Einheiten Glucuronsäure und N-Acetylgalactosamin. Chondroitinsulfat-Varianten regulieren beispielsweise die Vermehrung von Stammzellen und das Wachstum von Nervenzellen (Neurogenese) und sind an der Bildung des Gehirns beteiligt.[112] Chondroitinsulfate sind außerdem Bestandteil des Proteoglycans Aggrecan, das eine wichtige Strukturkomponente von Knorpel ist.[113] Die Hauptkomponenten von Knorpel neben Wasser sind Kollagen und Aggrecan. Durch die negative Ladung der Sulfatgruppen am Aggrecan nimmt der Knorpel Wasser auf und schwillt an, dieser Kraft entgegen wirken die Kollagenfasern. Dieses Zusammenspiel ist die Grundlage des charakteristischen elastischen Verhaltens von Knorpel.[114] Chondroitinsulfate kommen in sehr unterschiedlichen Tieren vor, sowohl in Säugetieren (inklusive Menschen) als auch in Wirbellosen wie Tintenfischen.[115] Beim Keratansulfat sind die Einheiten Galactose und N-Acetyllactosamin, es ist das einzige der Glycosaminoglycan, das statt einer Uronsäure eine unoxidierten Zucker (Galactose) enthält. Eine geringe Anzahl von Keratansulfat-Einheiten kommt im Aggrecan in Knorpel (siehe oben) vor. Besonders viel kommen Keratansulfat-Proteoglycane in der Hornhaut vor, wo sie dazu dienen, das Auge feucht und damit die Hornhaut transparent zu halten.[116] Beim Dermatansulfat sind die Zuckereinheiten Iduronsäure und N-Acetylgalactosamin. Dermatansulfat kommt vor allem in der unteren Hautschicht (Dermis) vor, nach der es auch benannt ist. Es macht bis zu 0,3 % des Trockengewichts der Haut aus. Dermatansulfat ist unter anderem an der Wundheilung beteiligt.[117] Dermatansulfat entsteht aus Chondroitinsulfat: Durch eine Epimerisierungsreaktion ändert sich die Stereokonfiguration der Glucuronsäure, wodurch die Iduronsäure-Einheiten entstehen.[118] Beim Heparansulfat sind die Zucker-Einheiten Glucuronsäure oder Iduronsäure, sowie N-Acetylglucosamin.[18] Funktionalisiertes Heparansulfat ist unter anderem wichtig für die Regulierung der Blutgerinnung und die Angiogenese (Bildung von Blutgefäßen).[18][103] Heparin besteht aus denselben Zuckereinheiten wie das Heparansulfat, allerdings in anderen Mengenverhältnissen, außerdem weist das Heparin mehr Sulfatgruppen auf.[18] Es wirkt gerinnungshemmend und dient der körpereigenen Regulierung der Blutgerinnung. Für die Wirkung ist dabei eine spezifische Abfolge von fünf Zuckereinheiten essentiell, die in der Kette mehrfach vorliegen kann.[18][119]

Verschiedene Pathogene gelangen in Zellen, indem sie zunächst an Proteoglycane beziehungsweise deren Glycosaminoglycane mit bestimmten Eigenschaften binden. Für den parasitischen Malaria-Erreger Plasmodium falciparum handelt es sich um Chondroitinsulfat, das einen geringen Sulfatierungsgrad aufweisen muss, beim Herpes-simplex-Virus einen hohen.[112] Das Dermatansulfat-Proteoglycan Decorin ist wichtig als Bindungspunkt für den Borreliose-Erreger Borrelia burgdorferi.[117] Dengue-Viren binden über Heparansulfat an Zellen.[120]

Mucine sind Glycoproteine, also kohlenhydrat-modifizierte Proteine, und die strukturgebende Komponente von Schleim, wie er unter anderem auf Schleimhäuten auftritt.[121] Der Schleim hat auf den Schleimhäuten verschiedene wichtige Funktionen, darunter als Gleitmittel, zum Erhalt einer Feuchtigkeitsschicht und als Schutzschicht, beispielsweise gegen Pathogene.[122] Die Kohlenhydratkomponenten der Mucine bestehen überwiegend aus Fucose, Galactose, N-Acetylgalactosamin und N-Acetylglucosamin, sowie Sialinsäuren. Die Kohlenhydratketten sind zusätzlich teilweise mit Sulfatgruppen modifiziert. Mit Wasser bilden die Mucine ein Gel, das für die Konsistenz des Schleims verantwortlich ist. Durch die Sialinsäure- und Sulfatgruppen sind die Mucine negativ geladen, wodurch sie Wasser binden, sowie Kationen wie Calcium, die zusätzliche elektrostatische Wechselwirkungen zwischen Molekülen ermöglichen. Die negative Ladung ist demnach ein wichtiger Faktor für die Fähigkeit zur Gelbildung.[121]

Glycolipide sind Biomoleküle bei denen ein Lipid, z. B. ein Glycerinester, zusätzlich ein oder mehrere Zuckereinheiten trägt. Glycolipide mit Sulfatgruppen, beispielsweise Sphingolipide kommen unter anderem im Myelin, in der Leber und in Spermatozoen vor.[102] In Myelin und Leber kommen die Sulfatide vor. Dabei handelt es sich um Ceramid-Lipide, die zusätzlich eine Galactosesulfat-Einheit tragen. In Spermatozoen kommen die Seminolipide vor, die eine ähnliche Struktur aufweisen und ebenfalls eine Galactosesulfat-Einheit tragen. Im Gegensatz zu den Ceramid-Derivaten tragen sie an der Glycerin-Einheit jedoch keine Amid-Gruppe.[123] Im Gehirn und Nervensystem kommen auch noch weitere strukturell verwandte Verbindungen vor. Sulfatide sind steuern die Bildung und den Erhalt von Nervenfasern. In Tierversuchen an Mäusen konnte gezeigt werden, dass sie für die neurologische Entwicklung wichtig sind.[124]

Sulfatierung von Peptiden und Proteinen

Die Sulfatierung von Tyrosineinheiten in Peptiden und Proteinen ist eine weit verbreitete post-translationale Modfikation und hat ebenfalls wichtige biologische Funktionen. Essentiell ist die Modifikation von Tyrosin beispielsweise bei dem Peptidhormon Cholecystokinin, das unter anderem die Verdauung reguliert und dessen Sulfatform eine 250-mal höhere Wirkung hat. Das Thyroglobulin, das der Biosynthese der Schilddrüsenhormone in Wirbeltieren dient, weist neben diversen anderen post-translationalen Modifikationen auch Sulfatgruppen auf.[102] Die Sulfatierung ist außerdem wichtig für den Eintritt von HIV-1-Viren in Zellen, andererseits ermöglichen Sulfatgruppen an Antikörpern auch eine Bindung an diese Viren bei der Immunantwort.[103]

Sulfatierte Naturstoffe aus Meerestieren

Die Rote Seescheide (Halocynthia papillosa) bildet Isooctylsulfat
Nordpazifischer Seestern

Sulfatierte Naturstoffe kommen in diversen Meerestieren vor. Seegurken der Familie Holothuriidae verfügen über Giftstoffe, die als Holothurine bezeichnet werden. Diese sind auf der Körperoberfläche und in den Cuvierschen Schläuchen vorhanden, die der Verteidigung dienen, werden aber auch ins Wasser abgesondert und sind tödlich giftig für Fische, wodurch die Seegurken gut gegen Fressfeinde geschützt sind.[125] Die Holothurine sind Triterpenglycoside mit verschiedenen biologischen Aktivitäten und Funktionen. Sie dienen unter anderem zur Verteidigung gegen Fressfeinde und als biologische Regulatoren, um die Reifung von Eizellen zu synchronisieren. Sie können Zellmembranen schädigen, worauf ihre hämolytische und fungizide Wirkung beruht.[126] Das Holothurin A verursacht eine irreversible Blockade neuromuskulärer Synapsen. Die negative Ladung durch die Sulfatgruppe ist ein wichtiges Element für die biologische Aktivität der Verbindung. Eine Studie an Mäusen zeigte für ein desulfatiertes Analogon bei gleicher Konzentration eine zehnfach schwächere Wirkung, die zudem teilweise reversibel war.[127] Auch für die membranschädigende Wirkung ist das Sulfat wichtig.[126] Holothurin A kommt in Actinopyga agassizii vor.[128] Das verwandte Holothurin A2 kommt in Holothuria edulis vor.[129] In Seegurken kommen außerdem Alkylsulfate wie Octylsulfat und Decylsulfat vor.[130] Auch in Seescheiden wurden mehrere Alkyl- und Alkenylsulfate nachgewiesen, beispielsweise Isooctylsulfat in der Roten Seescheide (Halocynthia papillosa).[131] Seesterne bilden Steroidglycoside (Saponine), die als Asterosaponine bezeichnet werden und teilweise zusätzlich mit Sulfatgruppen modifiziert sind. Zu den Seesternen, in denen sulfatierte Saponine nachgewiesen wurden, gehören der Nordpazifische Seestern (Asterias amurensis), der Asterosaponin A bildet,[132] und Aphelasterias japonica.[133] Bei der Art Patiria pectinifera wurde nachgewiesen, dass Asterosaponine aus Cholesterol und Cholesterolsulfat biosynthetisiert werden.[134]

Vorkommen in Pflanzen

Glucosinolate

Pflanzen der Ordnung Brassicales wie Brunnenkresse und Papaya enthalten Glucosinolate

Glucosinolate sind pflanzliche Sekundärmetaboliten, die sich von Aminosäuren ableiten und eine Sulfatgruppe tragen. Sie kommen in der Ordnung der Brassicales vor, insbesondere in der Familie der Kreuzblütler (Brassicaceae). Glucosinolate sind eine wichtige Stoffgruppe, die einerseits der Verteidigung (z. B. gegen Insekten) dient, andererseits aber auch für den charakteristischen Geschmack vieler Speisepflanzen aus der Familie verantwortlich ist.[135][136] Zu diesen Speisepflanzen gehören veile Kreuzblütler wie Weiß- und Rotkohl, Brokkoli, Grünkohl, Blumenkohl, Rosenkohl, Pak Choi, Raps, sowie Gartenkresse und Brunnenkresse, aber auch Senf und Meerrettich, für deren Schärfe die aus den Glucosinolaten entstehenden Isothiocyanate verantwortlich sind. Zu den Speisepflanzen aus anderen Familien der Ordnung Brassicales, die ebenfalls Glucosinolate enthalten, gehören beispielsweise Kapern und Papaya.[136][137] In den Brassicales machen die Glucosinolate zum Teil einen Anteil am Trockengewicht der Pflanzen um 1 % aus.[136] Stand 2018 waren knapp 90 verschiedene Glucosinolate bekannt, die vollständig und eindeutig charakterisiert waren.[16] Beispielsweise kommen in der Gartenkresse Glucotropaeolin (mit einer Benzylseitenkette) und Gluconasturtiin (mit einer Phenylethyl-Seitenkette) vor.[138]

Aufbau der Glucosinolate am Beispiel des Glucotropaeolins: In der Mitte die Thiohydroxyiminoester-Struktur. Links in Blau die Glucose-Einheit. Oben in Gelb die Sulfatgruppe. Rechts in Grün die variable Seitenkette, diese ist beim Glucotropaeolin eine Benzylgruppe

Die variable Seitenkette wird in der Biosynthese als erstes aufgebaut und jeweils durch eine Aminosäure bestimmt, die Ausgangspunkt der Biosynthese ist, beispielsweise Alanin, Leucin, Isoleucin, Valin, Phenylalanin, Tyrosin und besonders häufig Methionin oder Tryptophan.[135][137] Direkter Vorläufer ist aber oft eine kettenverlängerte Aminosäure, beispielsweise Homomethionin oder Homophenylalanin. Der Strukturteil der allen Glucosinolaten gemeinsam ist, ist ein Thiohydroxyiminoester, der am S-Atom zusätzlich eine Glucoseeinheit trägt und am O-Atom eine Sulfat-Einheit.[139] Dieser gleichbleibende Teil wird in der Biosynthese nach dem Vorläufer der Seitenkette aufgebaut. Intermediate sind dabei ein Oxim und eine Thiohydroxyiminosäure. Das Schwefelatom wird die Aminosäure Cystein zur Verfügung gestellt. Die letzten beiden Schritte der Biosynthese sind die Glycosylierung (Einführung der Glucose-Einheit) und die Sulfatierung (Einführung der Sulfat-Einheit).[137]

In den Brassicaceae liegt ein nennenswerter Teil des vorhandenen Schwefels in Form von Glucosinolaten vor. Der Gehalt an Schwefel ist in dieser Pflanzenfamilie höher als in anderen Pflanzen und sie benötigen für ein gesundes Wachstum eine erhöhte Zufuhr im Vergleich zu anderen Pflanzen. Die Menge an biosynthetisierten Glucosinolaten hängt auch mit der verfügbaren Konzentration an Schwefel im Boden zusammen. Zum Teil kommen im Wurzelbereich von Kreuzblütlern symbiotische Mikroorganismen vor, die elementaren Schwefel oxidieren und als Sulfat verfügbar machen können.[140]

Die Glucosinolate selbst sind biologisch kaum aktiv.[141] Wird die Pflanze jedoch beschädigt, kommen die Glucosinolate in Kontakt mit dem separat vorliegenden Enzym Myrosinase, das den Abbau der Verbindungen katalysiert, wobei die eigentlich wirksamen Stoffe, insbesondere Nitrile und Isothiocyanate, freigesetzt werden.[135][141] Der Abbau beginnt durch die Deglycosylierung, also die Entfernung der Glucose-Einheit, durch die Myrosinase. Dadurch wird das jeweilige Molekül instabil und zerfällt im Allgemeinen durch intramolekulare Eliminierung von Sulfat, wobei ein Isothiocyanat entsteht.[139][141] Die Sulfatgruppe ist als Strukturelement notwendig, damit die Glucosinolate durch Myrosinase abgebaut werden können, Glucosinolat-Derivate ohne Sulfatgruppe werden durch das Enzym nicht erkannt.[141] In bestimmten Fällen werden statt Isothiocyanaten entweder Nitrile oder Thiocyanate freigesetzt.[139]

Abbau eines Glucosinolats (1). Im ersten Schritt wird durch die Myrosinase die Glucoseeinhei (2) abgespalten. Durch die intramolekulare Eliminierung von Sulfat entsteht ein Isothiocyanat (3)
Die Harlekin-Wanze Murgantia histrionica

Glucosinolate dienen der Verteidigung. Ihre Abbauprodukte (insbesondere Isothiocyanate) wirken abschreckend, wachstumshemmend oder sogar giftig auf viele Fressfeinde und Pathogene der Pflanzen, inklusive Säugetiere, Vögel, Insekten, Mollusken, Bakterien und Pilze.[137][139] Für bestimmte Insekten, die auf glucosinolat-haltige Pflanzen als Nahrungsquelle oder für die Eiablage spezialisiert sind, dienen Glucosinolate und ihre Abbauprodukte als Kairomone (chemische Erkennungsmerkmale) um Wirtspflanzen zu finden. Einige Insekten können sogar Glucosinolate sequestrieren, also aufnehmen und einlagern, die ihnen als Abwehr gegen Vögel und Eidechsen dienen. Beispiele sind die Harlekinwanze (Murgantia histrionica) und die Kohlblattlaus (Brevicoryne brassicae). Letztere verfügt über eine eigene Myrosinase zur Aktivierung von Glucosinolaten.[137] Auch gibt es Pilze und Insekten, die durch entsprechende Anpassungen die Verteidigung umgehen können.[139] Die Kohlmotte ist beispielsweise auf Kreuzblütler als Nahrungspflanzen spezialisiert und verfügt über einen Mechanismus zur Inaktivierung der Glucosinolat-Verteidigung dieser Pflanzen durch Entfernung der Sulfatgruppen mittels der Glucosinolat-Sulfatase, was eine Freisetzung von Giftstoffen durch die Myrosinase verhindert.[141]

Flavonoidsulfate

Wasserpfeffer enthält Persicarin

Sulfate von Flavonoiden sind bei Bedecktsamigen Pflanzen weit verbreitet und kommen in mindestens 250 Arten aus 32 Familien vor, beispielsweise in den Familien der Korbblütler (Asteraceae), der Süßgräser (Gramineae) und der Palmengewächse (Palmae).[142] Als erstes Flavonoidsulfat wurde 1937 das Persicarin (Isorhamnetinsulfat) aus Wasserpfeffer (Polygonum hydropiper) isoliert.[17] Schon 1988 waren über 100 Vertreter der Gruppe bekannt, darunter besonders viele, die sich von dem Flavonol Quercetin oder den Flavonen Apigenin und Luteolin ableiten. Die Verbindungen liegen natürlicherweise als Kalium-, Natrium- oder Calciumsalz vor.[142] Beispielsweise enthält Flaveria bidentis (Tageteae) viele Flavonoid-Sulfate, unter anderem Derivate von Quercetin und Isorhamnetin mit einer bis vier Sulfatgruppen.[143] Die Biosynthese von Flavonoidsulfaten in Flaveria chloraefolia wurde detailliert untersucht. Die Art enthält Sulfotransferasen, die Flavonole an spezifischen Positionen sulfatieren können. So werden sie zunächst durch eine Sulfotransferase in Position 3 sulfatiert, wodurch beispielsweise Quercetin zu Quercetin-3-O-sulfat umgesetzt wird. Flavonol-3-sulfate werden durch andere Enzyme in weiteren spezifischen Positionen sulfatiert zu Flavonol-3,3‘- und Flavonol-3,4‘-sulfaten.[144] In der traditionellen Chinesischen Medizin wird die Pflanze Eclipta alba als blutstillendes Mittel verwendet. Verantwortlich für diese Wirkung ist das Luteolin-7-O-sulfat.[145] Einige sulfatierte Flavonoide sind gleichzeitig auch Glycoside. Die Theograndine sind zwei Glucoside, die in Cupuaçu (Theobrona grandiflorum) vorkommen. Sie leiten sich von Isoscutellarin und Hypolaetin ab und unterscheiden sich demnach nur in einer Hydroxylgruppe. Beide tragen eine Sulfatgruppe an der Glucoseeinheit.[146]

Weitere Vorkommen in Pflanzen

In den Korbblütlern, insbesondere in der Unterfamilie Cichorioideae, kommen verschiedene sulfatierte Sesquiterpenlactone vor. Dazu gehören die Sulfoscorzonine in Scorzonera divaricata (Gattung Schwarzwurzeln),[147] sowie Derivate des Lactucins im Milchsaft des Gartensalats, beispielsweise 15-Deoxylactucin-8-sulfat.[148] Das Atractylosid ist ein pflanzliches Gift, das insbesondere für grasende Weidetiere gefährlich ist. Es handelt sich um ein Terpenoid-Glycosid, das an der Glucoseeinheit zusätzlich sulfatiert ist. Die Giftwirkung beruht auf der Störung des Citratzyklus. Zuerst isoliert wurde es 1873 aus dem Gummi-Spindelkraut (Atractylis gummifera). Später wurde die Verbidnung auch in vielen weiteren Pflanzen auf unterschiedlichen Kontinenten nachgewiesen. Dazu gehören Atractylis carduus (aus der gleichen Gattung), sowie mehrere Arten der Gattung Wedelia, die Gewöhnliche Spitzklette und Kaffeebohnen.[14] Sulfate von 1-Coumarylglucosid und 1-Caffeoylglucosid wurden ebenfalls in verschiedenen Pflanzen nachgewiesen. Derivate beider Verbindungen wurden im Adlerfarn nachgewiesen. Sulfate des 1-Caffeoylglucosids wurden außerdem im Gewöhnlichen Frauenhaarfarn und im Milzfarn nachgewiesen.[149] Die Carrageene sind eine Gruppe von Polysacchariden, die in großer Menge in Rotalgen vorkommen, beispielsweise im Knorpeltang (Chondrus crispus). Die Struktur ist linear, besteht überwiegend aus Galactose-Einheiten, und ist mit einer variablen Anzahl an Sulfatgruppen modifiziert.[150]

Vorkommen in Mikroorganismen

Grünlippmuschel

Mikroorganismen bilden verschiedene sulfatierte Naturstoffe. Auch sogenannte Muschelgifte, die in Meeresfrüchten vorkommen, werden durch Mikroorganismen synthetisiert. Zu dieser Gruppe gehören beispielsweise die Gonyautoxine, eine Gruppe von giftigen sulfatierten Naturstoffen aus marinen Dinoflagellaten. Ihre Giftwirkung basiert auf einer Hemmung spannungsabhängiger Natriumkanäle.[151] Das Yessotoxin gehört ebenfalls zu dieser Gruppe und wurde als Verunreinigung in Grünlippmuscheln nachgewiesen. Die Verbindung weist zwei Sulfatgruppen auf. Es wird beispielsweise von den Dinoflagellaten Protoceratium reticulatum und Gonyaulax spinifera (Gattung Gonyaulax) produziert.[152][153] Die Biosynthese des natürliche Antibiotikums Ficellomycin aus Streptomyces ficellus verläuft über ein Sulfat. Dabei wird eine Hydroxymethylgruppe an einem Pyrrolidinring durch eine Sulfotransferase mittels Phosphoadenosinphosphosulfat in ein Sulfat umgewandelt. Durch einen intramolekularen nucleophilen Angriff des Stickstoffatoms des Pyrrolidins wird das Sulfat abgespalten und ein Aziridinring gebildet.[154]

Verschiedene Bakterien und Archaeen können Schwefelverbindungen wie Schwefelwasserstoff, Thiosulfat oder Tetrathionat zur Energiegewinnung oxidieren, wobei der enthaltene Schwefel im Allgemeinen zu Sulfat oxidiert wird.[155] Bei phototrophen Bakterien, die Energie aus dem Sonnenlicht ziehen, dient beispielsweise Schwefelwasserstoff als Reduktionsmittel zur Gewinnung organischer Verbindungen aus Kohlenstoffdioxid. Der Schwefelwasserstoff wird dabei zunächst zu elementarem Schwefel und dann weiter zu Sulfat oxidiert. Zu diesen Bakterien gehören unter anderem die Familien Chromatiaceae und Rhodospirillaceae.[156] Bestimmte Bakterien können auch sulfidische Minerale wie Pyrit oxidieren, wodurch sie Sulfat bilden und zur Verwitterung der Minerale beitragen.[157]

Andererseits ist die Nutzung von Sulfat als Elektronenakzeptor, die sogenannte Sulfatatmung, ein Stoffwechselweg bei anaeroben Prokaryoten, sowohl Bakterien als auch Archaeen. Die Sulfatatmung ist vermutlich ein evolutionär alter Mechanismus und ist weit verbreitet, wobei die Gene für die Enzyme der Sulfatatmung im Allgemeinen eine große Ähnlichkeit aufweisen, selbst bei genetisch weit voneinander entfernten Organismen. Sulfatatmende Mikroorganismen kommen beispielsweise in unterirdischen, sauerstofffreien, wasserführenden Gesteinsschichten vor.[158] Ein großer Lebensraum solcher Bakterien ist das Schwarze Meer, dessen Sedimente und untere Wasserschichten frei von Sauerstoff sind und große Mengen an Schwefelverbindungen enthalten. Viele der dort lebenden Bakterien gehören zur Familie Desulfobaceraceae. Die Umsetzung organischer Verbindungen verläuft praktisch ausschließlich über Sulfatatmung und Methanogenese.[159] Im Großen Salzsee in Utah in den USA wurden in anoxischen (sauerstofffreien) Bereichen ebenfalls Bakterien nachgewiesen, die Sulfat reduzieren, zum Beispiel aus der Gattung Desulfohalobium.[59] Diese Bakterien verwenden Sulfat und Thiosulfat als Elektronenakzeptor zur Energiegewinnung.[160] Sulfatreduzierende Mikroorganismen setzen bevorzugt leichtere Schwefelisotope um (Isotopeneffekt), vor allem 32S-Sulfat gegenüber 34S-Sulfat, sodass die Isotopenzusammensetzung von Schwefelverbindungen zum Teil Aufschluss über die Entstehung geben kann.[161] Sulfatreduzierende Bakterien kommen außerdem in der menschlichen Darmflora vor. Bei vielen Menschen, jedoch nicht bei allen, kommen methanbildende Bakterien im Darm vor. Bei Menschen, auf die dies nicht zutrifft, kommen die sulfatreduzierenden Bakterien in deutlich größerer Zahl vor. Die Mehrheit der sulfatreduzierenden Darmbakterien gehören zur Gattung Desulfovibrio.[162]

Abbau und Herstellung

Viele Metallsalze der Schwefelsäure wie Gips und Baryt kommen natürlich vor und einige davon werden bergmännisch gewonnen. Daneben können sie auch aus elementaren Metallen oder aus Metallsalzen wie Carbonaten durch Reaktion mit Schwefelsäure hergestellt werden. Für die Herstellung von Schwefelsäureestern ist eine größere Zahl an Synthesemethoden bekannt, wobei die Herstellung durch direkte Umsetzung von Alkoholen mit Schwefelsäure von untergeordneter Bedeutung ist. Zu den wichtigsten Reagenzien in diesem Bereich gehören die Komplexe des Schwefeltrioxids. Daneben kommen auch noch verschiedene Derivate der Schwefelsäure zum Einsatz sowie Methoden die über die Oxidation von Sulfiten laufen.

Gewinnung und Herstellung von Schwefelsäuresalzen

Verschiedene Sulfatminerale werden in großen Mengen in natürlichen Vorkommen abgebaut. Dazu gehören vor allem Calciumsulfat in der Form von Anhydrit und Gips,[163] sowie Baryt (Bariumsulfat).[164] Magnesiumsulfat wird aus verschiedenen Mischsalzen gewonnen, die als Erze vorkommen, darunter Kieserit, Kainit und Langbeinit.[165]

Metallsulfate können durch Umsetzung der elementaren Metalle mit Schwefelsäure gewonnen werden oder durch Umsetzung geeigneter Salze mit Schwefelsäure, insbesondere Oxide und Carbonate. So wird Chrom(III)-sulfat durch Erhitzen von Chromit oder metallischem Chrom mit Schwefelsäure gewonnen:[166]

Kupfersulfat wird insbesondere durch Umsetzung von Kupfer(II)-oxid mit Schwefelsäure gewonnen:[166]

Eisen(II)-sulfat kann durch Auflösen von Eisen in Schwefelsäure gewonnen werden.[167] Lithiumsulfat wird so aus Lithiumcarbonat gewonnen,[168] Mangansulfat aus Mangancarbonat oder Mangan(II)-oxid,[169] Nickelsulfat aus elementarem Nickel oder Nickel(II)-oxid.[170] Kaliumsulfat kann durch Umsetzung von Kaliumchlorid mit Schwefelsäure gewonnen werden. Für einen rentablen Prozess muss der gleichzeitig anfallende Chlorwasserstoff ebenfalls sinnvoll eingesetzt werden. Ein alternatives Verfahren ist die Umsetzung von Kaliumchlorid mit Magnesiumsulfat, die unter geeigneten Bedingungen – Temperatur und Mischungsverhältnisse – ebenfalls Kaliumsulfat ergibt.[171] Kaliumalaun und Ammoniumalaun werden durch Umsetzung von Aluminiumhydroxid mit Schwefelsäure und Kaliumsulfat beziehungsweise Ammoniumsulfat hergestellt.[9]

Gips entsteht bei diversen Prozessen als Nebenprodukt, unter anderem bei der Herstellung von Titandioxid.[172] Außerdem werden viele Säuren durch Umsetzung ihrer Calciumsalze mit Schwefelsäure hergestellt, wobei Calciumsulfat in Form von Gips als Nebenprodukt entsteht.[163] Beispielsweise wird ein Großteil der weltweit genutzten Phosphorsäure hergestellt, indem Fluorapatit mit Schwefelsäure umgesetzt wird.[173] Analog entsteht Calciumsulfat durch die Herstellung von Fluorwasserstoff aus Fluorit (Calciumfluorid) und die Herstellung von Zitronensäure, Weinsäure und Oxalsäure.[163] Da Kupfererze oft auch Nickel enthalten, fällt Nickelsulfat zum Teil als Nebenprodukt bei der Kupfergewinnung an.[170]

Herstellung von Schwefelsäureestern

Verschiedene Verfahren zur Herstellung von Schwefelsäureestern sind bekannt. Die direkte Veresterung von Alkoholen mit Schwefelsäure ist von eher geringer Bedeutung. Weitverbreitet ist sind Umsetzungen mit Schwefeltrioxid, entweder direkt oder in Form von verschiedenen Komplexen, deren Handhabung einfacher ist und deren Reaktivität je nach Anforderungen eingestellt werden kann. Die Größe der Sulfatgruppe ist vergleichbar mit der der tert-Butylgruppe, hat also einen großen Raumbedarf, sodass die sterischen Verhältnisse im Molekül einen erheblichen Einfluss darauf haben, wie leicht sich eine Sulfatgruppe einführen lässt.[21]

Umsetzung mit Schwefelsäure

Mit Dicyclohexylcarbodiimid (DCC) kann Schwefelsäure für eine Veresterung aktiviert werden

Die direkte Veresterung von Alkoholen mit Schwefelsäure ist möglich, ergibt aber je nach Edukt oft schlechte Ausbeuten. Einige Edukte, beispielsweise Cellulose, lassen sich dagegen gut mit Schwefelsäure verestern.[174] Schwefelsäure kann durch Dicyclohexylcarbodiimid (DCC) aktiviert werden, wodurch bei der Veresterung von Alkylalkoholen sowie von Phenolen und Oximen gute Ausbeuten erreicht werden können. Nachteilig ist hierbei, dass oft ein großer Überschuss an DCC eingesetzt werden muss, sodass anschließend auch eine große Menge des Nebenprodukts Dicyclohexylharnstoff abgetrennt werden müssen. Die Veresterung mit Aktivierung durch DCC wurde zum Beispiel für die Sulfatierung von Kohlenhydraten eingesetzt.[174] Säureempfindliche Edukte können nicht direkt mit Schwefelsäure verestert werden.[175]

Das Reaktionsverhalten bei der Veresterung mit Schwefelsäure/DCC in Dimethylformamid als Lösungsmittel hängt von der Konzentration der Lösung ab. Wird in vergleichsweise verdünnter Lösung, also mit viel Lösungsmittel gearbeitet, werden nur aliphatische Hydroxylgruppen verestert. In konzentrierter Lösung, also mit wenig Lösungsmittel reagieren auch phenolische Hydroxylgruppen. Dies ermöglicht in einigen Fällen die selektive Sulfatierung einer von mehreren Hydroxylgruppen, beispielsweise bei Estradiol.[176] Ist die Erzielung einer solchen Selektivität nicht nötig, ist die Reaktion in konzentrierterer Lösung vorteilhaft. Bei 1-Octanol, 1-Tetradecanol und Cyclohexanol werden so bessere Ausbeuten erzielt. Phenol wird in eher verdünnter Lösung sogar kaum bis gar nicht umgesetzt.[177]

Schwefelsäure kann an die Doppelbindungen von Alkenen addiert werden, wodurch Monoalkyl- und Dialkylsulfate entstehen.[178] So ist beispielsweise die Addition von Schwefelsäure an zwei Moleküle Ethylen eine Methode, um Diethylsulfat herzustellen.[179] Bei der Reaktion von Butenen mit Isobutan zur Herstellung von Alkylatkraftstoff kann als Katalysator Schwefelsäure verwendet werden. In diesem Fall wird in einem Zwischenschritt der Reaktion die Schwefelsäure an die Butene addiert.[180]

Durch Addition von Schwefelsäure an zwei Moleküle Ethylen kann Diethylsulfat gewonnen werden

Umsetzung mit Schwefelsäurederivaten

Tetrabutylammoniumhydrogensulfat, Amidosulfonsäure, Sulfurylchlorid und Chlorsulfonsäure sind Derivate der Schwefelsäure, die sich ebenfalls zur Herstellung von Schwefelsäureestern eignen.

Analog zur Veresterung mit Schwefelsäure ist auch die Veresterung mit Tetrabutylammoniumhydrogensulfat und Dicyclohexylacarbodiimid möglich. Diese Methode wurde unter anderem zur Herstellung von Flavonoidsulfaten, beispielsweise aus Apigenin, Luteolin, Quercetin, Rhamnetin und Isorhamnetin, eingesetzt.[145][181][182]

Die Umsetzung primärer Alkohole mit Amidosulfonsäure ergibt Schwefelsäuremonoester als Ammoniumsalz.[183] Amidosulfonsäure ist vergleichsweise teuer und wenig reaktiv, wurde aber für die Veresterung primärer gesättigter Alkohole sowie von Kohlenhydraten eingesetzt, wobei oft Katalysatoren wie Harnstoff eingesetzt werden.[174] Beispielsweise eignet sich Amidosulfonsäure zur Sulfatierung von Galactomannanen in Dioxan in Gegenwart von Harnstoff.[184] Mit Pyridin als Katalysator wurde Amidosulfonsäure zur Sulfatierung von Flavonoiden eingesetzt, darunter Apigenin, Luteolin, Kaempferol und Quercetin.[182]

Sulfate können durch Umsetzung von Sulfurylchlorid mit entsprechenden Alkoholen oder Phenolen hergestellt werden. Beispielsweise ergibt die Reaktion von Brenzcatechin mit Sulfurylchlorid in Gegenwart von Pyridin ein cyclisches Sulfat. Ebenso können aus Propanol Dipropylsulfat und aus Butanol Dibutylsulfat hergestellt werden.[185] Die direkte Umsetzung von Diolen mit Sulfurylchlorid zur Synthese cyclischer Sulfate ergibt nur mäßige Ausbeuten, selbst bei sehr niedrigen Temperaturen durchgeführt werden (beispielsweise −90 °C).[186]

Die Umsetzung von Chlorsulfonsäure mit Alkoholen ergibt Monoester der Schwefelsäure. Werden diese über Natriumsulfat destilliert, werden Dialkylsulfate erhalten. Dieses Verfahren dient beispielsweise zur Herstellung von Diethylsulfat.[187] Chlorsulfonsäure wurde außerdem zur Sulfotierung verschiedener Isoflavonoide wie Daidzein und Genistein verwendet.[182]

Eine Methode aus dem Jahr 2023 basiert auf einer Kombination aus Tetrabutylammoniumhydrogensulfat und entweder Dimethylsulfat oder Diisopropylsulfat. Diese Dialkylsulfate, die meistens zur Übertragung von Alkylgruppen dienen, können unter geeigneten Bedingungen auch eine Umesterung eingehen, also ihre Sulfatgruppe auf einen Alkohol, ein Phenol oder ein Kohlenhydrat übertragen. Die beiden Sulfate weisen unterschiedlich große Substituenten auf, wodurch in Verbindungen mit mehreren Hydroxylgruppen je nach eingesetztem Sulfat eine selektive Reaktion erzielen lässt.[188]

Umsetzung mit Schwefeltrioxid und seinen Komplexen

Dimethylsulfat kann aus Dimethylether und Schwefeltrioxid (SO3) hergestellt werden, die Reaktion ergibt Dimethylsulfat in guter Ausbeute und Reinheit.[21][187] Analoge Reaktionen für Schwefelsäureester mit längeren Alkylketten funktionieren oft schlecht, da solche Alkylgruppen bei der Reaktion oxidiert werden.[187]

Ein wichtiges Verfahren zur Veresterung von Alkoholen zu Sulfaten ist deren Umsetzung mit Schwefeltrioxid, oft in Form eines Komplexes, beispielsweise mit Dioxan. Verschiedene Alkohole können durch direkte Reaktion mit Schwefeltrioxid verestert werden. Beispielsweise ergibt die Reaktion von Methanol mit gasförmigem SO3 oder mit SO3 in Tetrachlormethan das Monomethylsulfat. Destillation von Monomethylsulfat ergibt Dimethylsulfat. Diese Methode wurde historisch für die kommerzielle Gewinnung von Dimethylsulfat eingesetzt. Auch Fettalkohole wie 1-Dodecanol oder 1-Tetradecanol können durch Schwefeltrioxid, entweder gasförmig oder gelöst in Schwefeldioxid, sulfatiert werden. Reines Schwefeltrioxid ist allerdings hochreaktiv und schwierig in der Handhabung, da es leicht polymerisiert, was oft zu schlecht reproduzierbaren Resultaten führt. Als Lewis-Säure, kann Schwefeltrioxid mit einer Lewis-Base einen Elektronen-Donor-Akzeptor-Komplex bilden. Die Koordinierung an das Schwefeltrioxid erfolgt dabei über ein freies Elektronenpaar der Base. Der Einsatz als Komplex ermöglicht eine einfachere Handhabung und eine Einstellung der Reaktivität.[21] Schwefeltrioxid bildet so vergleichsweise stabile Komplexe, die als Feststoffe vorliegen, u. a. mit Pyridin, Trimethylamin, Triethylamin und Dimethylformamid.[174]

Vergleichsweise starke Basen wie Trimethylamin oder Triethylamin führen zu einer geringeren Reaktivität, schwächere Basen wie Pyridin zu einer höheren Reaktivität, obwohl diese immer noch deutlich geringer ist als bei freiem Schwefeltrioxid. Schwefeltrioxid-Pyridin ist eine stabile Verbindung, die auch kommerziell erhältlich ist, und eignet sich zur Sulfatierung von Alkoholen, inklusive Sterolen und Kohlenhydraten. Eine Isolierung ist aber nicht immer nötig, beispielsweise kann auch ein Reagenz für die Herstellung von Sulfaten zubereitet werden, indem Chlorsulfonsäure in einen Überschuss an Pyridin gegeben wird. Schwefeltrioxid-Dioxan ist ein deutlich reaktiveres Mittel zur Herstellung von Sulfaten als der Pyridin-Komplex und ist auch deutlich weniger stabil, sodass es vor der Verwendung im Allgemeinen frisch zubereitet wird. Schwefeltrioxid-Trimethylamin und Schwefeltrioxid-Triethylamin weisen ähnliche Eigenschaften auf: Sie sind sehr milde Sulfatierungsmittel und können – im Gegensatz zum Pyridinkomplex – auch in wässriger Lösung eingesetzt werden. Der Triethylaminkomplex ist dabei etwas reaktiver. Auch andere Basen wurden schon in SO3-Komplexen eingesetzt, beispielsweise Dimethylanilin und Dimethylformamid.[21] Bei der Reaktion mit einem Schwefeltrioxid-Aminkomplex wird das Produkt als Ammoniumsalz erhalten, wobei die Stickstoffbase aus dem Komplex das Kation liefert. Eine wichtige Frage bei der Auswahl eines Komplexes bzw. einer Base ist also auch, wie stabil das Produktsalz mit dem entsprechenden Kation ist und wie gut es sich aufreinigen lässt.[174]

Schwefeltrioxid-Dioxan eignet sich zur Sulfatierung vieler Alkohole, wobei die Reaktion oft quantitativ (vollständig) ist. Zu den Alkoholen, die derart umgesetzt werden können, gehören primäre Alkohole wie Ethanol, 1-Butanol und Benzylalkohol, sekundäre wie Cyclohexanol und Borneol, tertiäre wie tert-Butanol und Kohlenhydrate wie Glucose und Galactose. Sterole wie Cholesterol und Ergosterol lassen sich gut mittels Schwefeltrioxid-Pyridin sulfatieren.[21] Die Komplexe mit Trimethylamin und Triethylamin eignen sich für die Sulfatierung aliphatischer Alkohole inkl. Sterole und Kohlenhydrate.[174] Beispielsweise wurde eine große Zahl an Sterolen erfolgreich mit Schwefeltrioxid-Triethylamin in die entsprechenden Sulfate umgewandelt.[189] Letzteres wurde auch für die Herstellung von Quercetin-Sulfaten verwendet, wobei aber ein Gemisch verschiedener Verbindungen erhalten wurde.[190] Quercetin-3’-O-sulfat wurde gezielt durch Einsatz von Schwefeltrioxid-Dimethylformamid synthetisiert, nachdem die verschiedenen Hydroxyl-Gruppen zum Teil als Benzylether geschütz waren.[191] Schwefeltrioxid-Dimethylformamid eignet sich auch zur Sulfatierung von Tyrosin-Einheiten in Peptiden[192] oder zur Herstellung von Sulfaten aus Aminosäuren mit Hydroxylgruppen wie Serin und Threonin vor der Synthese von Peptiden daraus.[193] Die vollständige Sulfotierung kleiner Moleküle mit mehreren Hydroxygruppen ist im Allgemeinen schwierig wegen des geringen Abstands der negativen Sulfatgruppen. Solche Reaktionen sind jedoch möglich durch Verwendung von Schwefeltrioxid-Pyridin oder Schwefeltrioxid-Trimethylamin unter Einwirkung von Mikrowellen.[194]

Oxidationsreaktionen

Durch Reaktion eines Alkohols oder Phenols mit Ethylchlorsulfit wird ein gemischtes Sulfit gebildet. Dieses kann mit Ruthenium(III)-chlorid und Natriumperiodat zum Sulfat oxidiert werden und die Ethylgruppe mit Natriumiodid abgespalten werden.[174] Wichtig ist die Synthese über Sulfite insbesondere bei cyclischen Sulfaten, bei denen andere Methoden schlechte Ergebnisse liefern. Auch diese können hergestellt werden, indem zunächst ein cyclisches Sulfit gewonnen und dieses mit Rutheniumchlorid/Natriumperiodat beziehungsweise mit Ruthenium(VIII)-oxid oxidiert wird. Für die Herstellung cyclischer Sulfite gibt es wiederum mehrere Methoden. Sie können beispielsweise durch Umsetzung eines Epoxids mit Schwefeldioxid und anschließendes Erhitzen gewonnen werden. Mit anderen Methoden können auch größere Ringe erzeugt werden. Mit Diethylaminoschwefeltrifluorid können sowohl 1,2-Diole als auch 1,3-Diole zu cyclischen Sulfiten umgesetzt werden. Bei der Umsetzung eines Diols mit Thionylchlorid oder einem Dialkylsulfit können zusätzlich auch 1,4-Diole umgesetzt werden.[186] Bei der Elbs-Persulfat-Oxidation wird ein aromatisches Edukt oxidiert und eine vollständige Sulfatgruppe eingeführt. Ausgangsprodukt ist ein Phenol, das mit Kaliumperoxodisulfat umgesetzt wird. Die Sulfatgruppe wird im Allgemeinen gegenüber der Hydroxylgruppe des Phenols eingeführt (para-Position) oder, falls diese Position besetzt ist, neben der Hydroxylgruppe (ortho-Position). Die Reaktion wird im Allgemeinen dazu genutzt, eine weitere Hydroxylgruppe einzuführen, indem das Sulfat hydrolysiert wird.[195] Monomethylsulfat kann durch die katalytische Oxidation von Methan mit Oleum hergestellt werden, wobei sich als Katalysator verschiedene Iodverbindungen eignen, inklsuive elementarem Iod, Natriumiodid, Kaliumiodid, Iod(V)-oxid oder Kaliumiodat.[196]

Enzymatische Herstellung

Neben klassischen synthetischen Methoden existieren auch biotechnologische Methoden zur Herstellung von Schwefelsäureestern. Dabei werden Sulfotransferasen beispielsweise aus Tieren oder Mikroorganismen eingesetzt. Sulfotransferasen können zur Sulfatierung zahlreicher Verbindungen eingesetzt werden. Ein Nachteil ist, dass sie als Sulfatquelle überwiegend Phosphoadenosinphosphosulfat (PAPS) benötigen, das einerseits instabil und damit schlecht handhabbar ist, andererseits teuer in der Gewinnung. Zudem werden die Sulfotransferasen durch Phosphoadenosinphosphat (PAP), das Abbauprodukt des PAPS, inhibiert, was die Umsetzungen wenig effizient macht. Es sind jedoch Reaktionssysteme bekannt, bei denen zwei Sulfotransferasen zum Einsatz kommen, wobei eine die eigentliche Reaktion katalysiert, während die zweite das PAPS aus PAP regeneriert. Als stöchiometrischer Sulfatüberträger kommt insbesondere para-Nitrophenylsulfat zum Einsatz. So muss nur eine geringe Menge an PAP bzw. PAPS zur Reaktion zugesetzt werden.[197] Bakterielle Sulfotransferasen eignen sich zum Teil auch dazu, eine SO3-Gruppe direkt von para-Nitrophenylsulfat auf eine Hydroxylgruppe zu übertragen. Mit den meisten davon können jedoch nur phenolische (also an Aromaten gebundene) Hydroxylgruppen sulfatiert werden.[198] Ein typisches Beispiel für diese Enzymgruppe, die einen Phenylester als Sulfatquelle verwenden kann und nur aromatische Hydroxylgruppen umsetzt, ist eine Sulfotransferase aus Clostridium innocuum.[199] Ein System aus zwei Sulfotransferasen wurde beispielsweise genutzt zur Sulfatierung von Phenol, Brenzcatechin und Biphenyl-4,4'-diol.[197] Eine Sulfotransferase aus Desulfitobacterium hafniense ist, im Gegensatz zu den meisten verwandten Enzymen nicht nur in der Lage, viele Phenole zu sulfatieren, sondern auch aliphatische Hydroxylgruppen, beispielsweise in 1-Butanol, 1-Pentanol oder 2-Phenylethanol.[198] Ein neueres System verwendet statt para-Nitrophenylsulfat das N-Hydroxysuccinimidsulfat. Dessen Reaktionsprodukt, N-Hydroxysuccinimid ist weniger giftig und leichter vom Produkt abzutrennen, als para-Nitrophenol.[200]

Reaktionen

Schwefelsäuresalze sind eher wenig reaktiv, lassen sich bei starker Erhitzung jedoch zersetzen und können durch entsprechend drastische Bedingungen reduziert werden. Schwefelsäureester sind hingegen reaktive Verbindungen, die als starke Alkylierungsmittel wirken und sich oft leicht hydrolysieren lassen. Die Salze der Schwefelsäuremonoester sind vergleichsweise stabil.

Reaktionen von Schwefelsäuresalzen

Viele Metallsulfate zersetzen sich beim Erhitzen, allerdings erst bei einer Temperatur von mehreren hundert Grad. Bei der Reaktion wird Schwefeltrioxid frei und es bleiben Metalloxide zurück. Enthält eine Verbindung Kristallwasser, wird bei der Erhitzung erst dieses abgegeben.[201] Werden Hydrogensulfate wie Natriumhydrogensulfat oder Kaliumhydrogensulfat stark erhitzt, können Hydrogensulfat-Ionen unter Wasserabspaltung zu Pyrosulfat dimerisieren.[202][203] Ab etwa 500 °C zersetzt sich Pyrosulfat unter Abspaltung von Schwefeltrioxid, wobei Sulfat zurückbleibt.[203]

Metallsulfate können außerdem reduziert werden, beispielsweise mit Wasserstoff, wobei je nach Kation verschiedene Produkte entstehen. Die Sulfate der Erdalkalimetalle (Calciumsulfat, Strontiumsulfat und Bariumsulfat), sowie Nickelsulfat, Cobaltsulfat und Cadmiumsulfat werden zu den jeweiligen Sulfiden reduziert. Im Falle von Aluminiumsulfat, Magnesiumsulfat und Berylliumsulfat wird ebenfalls das Schwefelatom reduziert, allerdings zum Schwefeldioxid, sodass die Salze in Oxide umgewandelt werden. Im Falle von Eisen(II)-sulfat, Mangansulfat, Zinksulfat und Bleisulfat tritt ein Gemisch von Oxiden und Sulfiden auf. Bei anderen Verbindungen wird stattdessen das Kation reduziert, beispielsweise von Eisen(III)-sulfat zu Eisen(II)-sulfat und von Kupfer(II)-sulfat über Kupfer(I)-sulfat zu elementarem Kupfer.[204] Natriumsulfat kann auch mit Kohlenstoff reduziert werden. Dies kommt unter anderem bei der Rückgewinnung von Natriumsulfid aus Natriumsulfat beim Kraftprozess zum Einsatz.[205] Andererseits können Sulfat-Ionen, beispielsweise in einer Ammoniumsulfat-Lösung, elektrochemisch zu Peroxodisulfat oxidiert werden.[206]

Alkylierungen oder Substitutionsreaktionen

Dialkylsulfate sind starke Alkylierungsmittel. Die Reaktivität ist größer, je kürzer der Alkylsubstituent ist.[207] Die Bildung eines Sulfats kann so zur Aktivierung von Alkoholen dienen, beispielsweise um diese in ein Alkylchlorid zu überführen.[208] Dialkylsulfate können diverse Verbindungen alkylieren, beispielsweise Phenole, Carbonsäuren und deren Salze, Aromaten und Thiole.

Alternativ zu Diazomethan eignet sich Dimethylsulfat als Reagenz für eine einfache Umwandlung von Carbonsäuren in ihre Methylester. Das Proton der Carbonsäure muss hierbei durch eine geeignete Base neutralisiert werden. Dafür eignet sich beispielsweise Dicyclohexylethylamin. Eine Alternative ist die Deprotonierung der Carbonsäure mit Lithiumhydroxid vor der Umsetzung mit Dimethylsulfat.[209][210] Dimethylsulfat kann außerdem für eine Williamson-Ethersynthese eingesetzt werden, beispielsweise zur Methylierung von Phenol zu Anisol.[211] Dialkylsulfate eignen sich für die Alkylierung von Thiolgruppen zu Sulfiden. So kann beispielsweise para-Thiokresol mittels Dimethylsulfat oder Diethylsulfat in das entsprechende Methyl- oder Ethylsulfid überführt werden.[212] Dialkylsulfate können zudem zur Alkylierung von Aromaten verwendet werden. Die Reaktionsbedingungen entsprechen im Wesentlichen einer Friedel-Crafts-Alkylierung, bei der normalerweise eine Lewis-Säure wie Aluminiumchlorid sowie ein Alkylhalogenid als Alkylierungsmittel verwendet wird. Letzteres kann jedoch durch ein Dialkylsulfat ersetzt werden, beispielsweise Dimethylsulfat, Diethylsulfat, Diisopropylsulfat oder Dibutylsulfat.[213] Schließlich können Dialkylsulfate auch Carbonsäureamide zu Iminiumsalzen alkylieren. Ein Beispiel hierfür ist die Methylierung von Dimethylformamid mit Dimethylsulfat.[214]

Über ein cyclisches Sulfat können aus einem Diol andere difunktionalisierte Moleküle hergestellt werden. Der Ring kann durch verschiedene Nucleophile geöffnet werden, unter anderem durch Azid-Ionen, Fluorid-Ionen (beispielsweise mit Tetrabutylammoniumfluorid), Thiocyanat-Ionen, Nitrat-Ionen, Carboxylat-Ionen, Alkoholaten, Thiolaten, Acetyliden, Aminen, Cyanid, Organocuprate oder Hydrid (beiepielsweise aus Lithiumaluminiumhydrid).[186][215] Dadurch entsteht ein offener Schwefelsäuremonoester. Dieser kann hydrolysiert werden, um einen α-funktionalisierten Alkohol zu erhalten, oder mit einem zweiten Nucleophil umgesetzt werden. Ein Beispiel für letzteres ist die Bildung eines Aziridins durch intramolekulare Reaktion. Dabei wird das cyclische Sulfat mittels Lithiumazid geöffnet und die Azidgruppe durch Lithiiumaluminiumhydrid reduziert. Die intramolekulare Substitution ergibt den Ringschluss zum Aziridin.[215] Analog kann durch Umsetzung mit Di-tert-butylmalonat und Natriumhydrid ein Cyclopropanring gebildet werden.[186]

Hydrolyse

Schwefelsäurediester und -monoester können in wässriger Lösung leicht hydrolysiert werden: Beispielsweise kann Dimethylsulfat über Monomethylsulfat zu Methanol und Sulfat hydrolysiert werden. Analog wird Ethylensulfat in zwei Schritten zu Ethylenglycol und Sulfat hydrolysiert. Dabei treten unterschiedliche Reaktionsmechanismen auf: Bei der Reaktion eines Diesters zum Monoester wird eine C-O-Bindung gebrochen, das heißt der Schwefelsäuremonoester ist die Abgangsgruppe. Das gleiche gilt bei der Hydrolyse eines Monoesters in basischer Lösung. Bei der Hydrolyse eines Monoesters im Sauren hingegen wird eine S-O-Bindung gebrochen, die Abgangsgruppe ist der Alkohol.[216] Monoalkylsulfate sind als Salze, z. B. als Natriumsalze, vergleichsweise stabil. In protonierter Form können sie jedoch selbst in unpolaren, inerten Lösungsmitteln wie Diethylether oder Tetrahydrofuran hydrolysiert werden, wenn diese Spuren von Verunreinigungen enthalten, beispielsweise von Wasser.[217] Monoarylsulfate sind demgegenüber vergleichsweise stabil. Die Hydrolyse von Diphenylsulfat zu Monophenylsulfat ohne Weiterreaktion ist also problemlos möglich.[218]

Verwendung

Die Salze und Ester der Schwefelsäure werden in vielen Anwendungsbereichen eingesetzt. Einige natürlich vorkommende Sulfate dienen als Primärrohstoffe, andererseits sind Sulfate auch Intermediate bei der Aufbereitung anderer Erze. Calciumsulfat ist ein wichtiges Produkt der Baustoffindustrie und wird beispielsweise zum Verputzen von Wänden und als Zusatzstoff in Zement gebraucht. In der Medizin wird Calciumsulfat in Form von Gips für Gipsverbände eingesetzt. Diverse andere Schwefelsäuresalze wie Magnesiumsulfat und Schwefelsäureester wie Avibactam werden ebenfalls medizinisch eingesetzt. Chrom(III)-sulfat ist der wichtigste Gerbstoff. Daneben werden Sulfate unter anderem auch als Tenside, Farbstoffe und Düngemittel verwendet.

Rohstoffgewinnung und chemische Industrie

Baryt-Bergwerk in Schottland

Verschiedene Sulfatminerale sind industriell relevante Erze. So ist Baryt (Bariumsulfat) das wichtigste Bariumerz. Es dient als Ausgangsstoff für die Herstellung anderer Bariumverbindungen, wobei es in der Regel zunächst zu Bariumsulfid reduziert wird.[164] Coelestin (Strontiumsulfat) ist neben Strontianit (Strontiumcarbonat) eines von zwei industriell relevanten Strontiumerzen. Coelestin wird im Allgemeinen zunächst zu Strontiumcarbonat umgesetzt, aus dem die meisten anderen Strontiumverbindungen hergestellt werden.[219] Das wichtigste Bleierz ist Galenit (Bleisulfid), die Lagerstätten enthalten aber oft auch durch Oxidation entstandenes Anglesit (Bleisulfat), das beim Abbau mit verwertet wird.[220]

Aluminiumsulfat ist nach Aluminiumoxid die zweitwichtigste Aluminiumverbindung in der Industrie und wird als Ausgangsstoff zur Herstellung der meisten anderen Aluminiumverbindungen verwendet.[9] Auch viele andere Sulfate sind Intermediate in der Herstellung anderer Verbindungen aus den Erzen, beispielsweise Magnesiumsulfat,[169] Nickelsulfat[170] und Kaliumsulfat.[171] Mangansulfat dient beispielsweise zur Herstellung von elementarem Mangan sowie von Manganlinolat und verwandten Verbindungen, die als Sikkative eingesetzt werden.[169] Titanylsulfat ist ein Intermediat bei der Herstellung von Titandioxid nach dem Sulfat-Prozess. Hierbei wird das Titanerz Ilmenit mit Schwefelsäure zu Titanylsulfat umgesetzt, dieses hydrolysiert und dann bei etwa 950 °C kalziniert.[221] Bei der Gewinnung von Seltenerdmetallen aus Erzen wird Schwefelsäure zum Aufschluss eingesetzt, wodurch Sulfate als Intermediate entstehen.[222] Die mengenmäßig wichtigste Verwendung von Bariumsulfat ist in Bohrflüssigkeit in der Erdölgewinnung.[223] Das Bariumsulfat erhöht die Dichte der Flüssigkeit, die unter anderem dazu dient, Gesteinsmaterial aus dem Bohrloch auszuschwemmen und die Bohrvorrichtung zu kühlen.[224]

Dialkylsulfate eignen sich als Alkylierungsmittel, zum Beispiel für die Umsetzung von Carbonsäuren zu deren Alkylestern oder von Aminen zu quartären Ammoniumverbindungen. Industriell ist Dimethylsulfat die mit Abstand wichtigste Verbindung aus der Gruppe der Dialkylsulfate, lediglich Diethylsulfat hat ebenfalls eine gewisse (wenn auch geringe) Bedeutung. Dimethylsulfat wird beispielsweise zur Herstellung von Methylsalicylat aus Salicylsäure verwendet sowie zur Umsetzung von Kaliumiodid zu Methyliodid. Diethylsulfat eignet sich beispielsweise zur Herstellung von Ethylestern von Fettsäuren, die als Weichmacher verwendet werden.[207]

Bauwesen

Sulfate spielen eine enorme Rolle im Bauwesen. Calciumsulfate sind in Zement enthalten, insbesondere in Form von Gips (Dihydrat), der je nach Grad der Erhitzung bei der Produktion auch zu Calciumsulfat-Hemihydrat oder Anhydrit (ohne Kristallwasser) entwässert wird. Das Calciumsulfat verbessert die Abbindeeigenschaften des Zements, der sonst zu schnell fest wird, was eine praktische Verarbeitung verhindert.[2][225] Die langsamere Aushärtung beruht auf der Bildung von Ettringit in der angerührten Zementmischung.[225] Der Einsatz als Reaktionsverzögerer in Zement macht einen erheblichen Anteil des weltweit gewonnenen Gipses aus.[226]

Gips wird außerdem zum Verputzen von Wänden sowie in Form fertiger Platten verwendet.[69][227] Wichtig für die Verwendung als Wandverputz ist, dass Calciumsulfat einerseits leicht durch Erhitzung dehydriert werden kann, dass die Hydrate durch Anmischen mit Wasser aber andererseits leicht wieder zurückgebildet werden.[226] Gipskartonplatten bestehen hauptsächlich aus gehärtetem Gips, der zwischen zwei Schichten Papier zusammengehalten wird.[228] Weitere Verwendungen sind Fertigbauelemente und Deckenplatten. Gips als Baumaterial hat verschiedene vorteilhafte Eigenschaften wie vergleichsweise geringes Gewicht, brandhemmende Eigenschaften (durch das enthaltene Kristallwasser) und schallisolierende Eigenschaften.[69] Baryt (Bariumsulfat) ist Bestandteil von Schwerbeton, der zur Abschirmung von Strahlung eingesetzt wird, beispielsweise in Atomkraftwerken und medizinischen Einrichtungen, aber auch in Betongewichten.[229]

Medizin

Gipsverband an einem Handgelenk

Verschiedene Sulfatsalze werden medizinisch genutzt. Das meistgenutzte Präparat zur Supplementierung von Eisen bei Eisenmangelanämie ist Eisen(II)-sulfat. Eisenmangelanämie ist eine verbreitete Mangelerkrankung, insbesondere bei Kindern, und tritt auf, wenn über die Ernährung zu wenig Eisen aufgenommen wird.[230] Bariumsulfat ist ein wichtiges Kontrastmittel für die Computertomographie des Gastrointestinaltrakts.[231] Magnesiumsulfat wird zur Behandlung eklamptischer Krämpfe sowie gegen akuten Magnesiummangel eingesetzt.[13] Lithiumsulfat wird gelegentlich in der Lithiumtherapie genutzt, beispielsweise bei bipolaren Störungen. Gegenüber dem hauptsächlich genutzten Lihtiumcarbonat hat es jedoch nur untergeordnete Bedeutung.[232][233] Gips wird für Gipsverbände zur Behandlung von Knochenbrüchen verwendet. Er ist billig, einfach in der Anwendung, wird beim Trocknen porös, verhindert also eine Ansammlung von Feuchtigkeit darunter, und ist für Röntgenstrahlung durchlässig, was eine Untersuchung von Knochen unter dem Gips ermöglicht. Aufgrund dieser Eigenschaften sind Gipsverbände auch heute noch verbreitet in Gebrauch.[12]

Ceftazidim & Avibactam

Sulfatgruppen sind in verschiedenen Wirkstoffen aus der Gruppe der β-Lactamase-Inhibitoren enthalten, die zusammen mit β-Lactam-Antibiotika eingesetzt werden. β-Lactam-Antibiotika stören die Peptidoglycansynthese in Bakterien, was zu instabilen Zellwänden und schließlich zum Absterben der Zellen führt.[234] Antibiotika-Resistenzen gegen diese Wirkstoffe sind allerdings weit verbreitet. Ein Mechanismus, der eine solche Resistenz verursacht, ist die Bildung von β-Lactamasen durch die Bakterien. Dabei handelt es sich um Enzyme, die die Amidbindung in den β-Lactam-Molekülen spalten und die Antibiotika somit wirkungslos machen können. Dies kann durch den zusätzlichen Einsatz eines β-Lactamase-Inhibitors verhindert werden.[235] Der erste solche Wirkstoff, der zum Einsatz kam, ist das Avibactam.[236] Das Kombinationspräparat mit dem Antibiotikum Ceftazidim wurde im Februar 2015 in den USA zugelassen. Die Kombination kommt gegen verschiedene antibiotikaresistente Pathogene zum Einsatz, beispielsweise entsprechende Stämme von Pseudomonas aeruginosa.[237] Avibactam ist ein kovalanter Inhibitor für verschiedene β-Lactamasen, der mittels seinem C7-Carbonyl als Carbamat an ein Serin im aktiven Zentrum bindet. Die Verbindung hat strukturelle Ähnlichkeit zum Ceftazidim, mit dem zusammen sie eingesetzt wird. Die Sulfatgruppe des Avibactams mit seiner negativen Ladung entspricht dabei der Carboxylatgruppe des Ceftazidims. Durch die Hemmung der β-Lactamase wird ein Abbau des eigentlich wirksamen Antibiotikums verhindert. Die Kombination Ceftazidim-Avibactam wirkt so auch gegen Bakterien, die β-Lactamasen produzieren und durch Ceftazidim allein nicht abgetötet werden.[234] Durlobactam ist eine mit Avibactam strukturell eng verwandte Verbindung, die ähnlich verwendet wird. Ein Kombinationspräparat mit Sulbactam wurde im Mai 2023 in den USA zugelassen und wird für die Behandlung bestimmter β-lactamresistenter Bakterien verwendet, insbesondere resistenter Stämme von Acinetobacter baumannii, das in Bezug auf Antibiotika-Resistenzen zu den problematischsten Pathogenen gehört.[236]

Fondaparinux

Sucralfat ist ein Komplex aus Aluminiumhydroxid und sulfatierter Saccharose und wird in verschiedenen Ländern bei Krankheitsbildern eingesetzt, die mit Magengeschwüren einhergehen. Sucralfat wird kaum resorbiert und bildet eine Schutzschicht, wodurch eine Heilung befördert wird.[238] Heparin wird insbesondere aus Schweinedärmen extrahiert und als gerinnungshemmendes Medikament (Antikoagulans) eingesetzt gegen Thrombosen und Lungenembolien. Ein synthetisches Oligosaccharid mit analoger gerinnungshemmender Wirkung ist das Fondaparinux. Seine Struktur entspricht genau der Abfolge aus fünf Zuckern, die für die gerinnungshemmende Wirkung des Heparins verantwortlich ist. Fondaparinux ist seit 2003 auf dem Markt.[119] Zur Verbesserung der Eigenschaften, insbesondere der Wasserlöslichkeit, werden Medikamente oft in eine ionische Form überführt und als Salz eingesetzt. Dabei muss ein geeignetes Gegenion verwendet werden, da dieses ebenfalls Einfluss auf die Eigenschaften der Formulierung hat. Eine im Jahr 2007 publizierte Analyse aller von der FDA in den USA zugelassenen Medikamente ergab, dass etwa 38 % ionische Verbindungen waren, bei denen das Kation, die aktive Komponente ist. Das mit Abstand häufigste Gegenion war dabei das Chlorid, gefolgt von Sulfat.[239]

Farbstoffe und Pigmente

Reaktive Black 5, ein Reaktivfarbstoff

Reaktivfarbstoffe sind solche Farbstoffe, die beim Färbeprozess mit dem Substrat (beispielsweise Textilfasern) kovalente Bindungen ausbilden, und gehören zu den industriell wichtigsten Farbstoffen. Eine Variante sind Verbindungen, die eine Sulfatgruppe als Bestandteil einer Sulfooxyethylsulfonylgruppen enthalten, beispielsweise beim Reactive Black 5.[240] Die eigentlich reaktive Gruppe, die die kovalente Bindung ausbildet, ist eine Vinylsulfongruppe. Diese ist als β-Sulfatoethylsulfongruppe maskiert.[241] Beim Erhitzen des Farbstoffs bei hohem pH-Wert während des Färbeprozesses wird Sulfat eliminiert und so die reaktive Gruppe freigesetzt.[241][242] Die Farbstoffe werden durch Veresterung von Hydroxyethylsulfonen mit Schwefelsäure gewonnen und neutralisiert (z. B. mit Natriumhydroxid), um ein Salz zu erhalten. Sie eignen sich beispielsweise für die Färbung von Wolle und Baumwolle.[242] Gefälltes Bariumsulfat dient als Beschichtungspigment in der Papierherstellung, sowie als Füllstoff in Farben, Lacken und Tinte.[223] Lithopone ist eine Weißpigment, das aus Bariumsulfat und Zinksulfid besteht. Hergestellt wird es, indem in Lösung Bariumsulfid mit Zinksulfat gemischt wird.[243] Es wird beispielsweise als Pigment für Farben und in Kunststoff verwendet.[244]

Sonstige Verwendungen

Chrom(III)-sulfat ist der bedeutendste Gerbstoff in der Lederherstellung.[166][245] In der Gerberei werden Tierhäute zu Leder verarbeitet, wobei sie derart modifiziert werden, dass sie haltbar werden und eine höhere thermische Stabilität aufweisen, gleichzeitig aber die Flexibilität einer frischen Haut behalten. Chrom(III)-ionen vernetzen Kollagen-Stränge sowohl durch Wasserstoffbrücken als auch durch kovalante Brücken zwischen den Carboxylgruppen von Asparaginsäure- und Glutaminsäureresten. Auf dieser Vernetzung beruht die Haltbarkeit des Materials. Die Koordination von Sulfationen an die Chromionen beeinflusst die Reaktivität und führt zu besseren Materialeigenschaften (höherer thermischer Stabilität) als in Abwesenheit von Sulfat. Andere Gerbereireagenzien sind gegenüber Chromsulfat von untergeordneter Bedeutung, zu diesen gehören organische Gerbstoffe aber auch Aluminiumsulfat.[245]

Die Monoester der Schwefelsäure mit längerkettigen Alkoholen (Fettalkoholen) werden als Fettalkoholsulfate bezeichnet und in Reinigungsmitteln und Hygieneprodukten verwendet. Da sie in freier Form nicht stabil sind, werden sie als Salze, beispielsweise als Natriumsalze, verwendet. Wichtige Vertreter sind das Natriumlaurylsulfat (vom Laurylalkohol mit 12 Kohlenstoffatomen), aber auch Verbindungen mit 14, 16 oder 18 Kohlenstoffatomen in der Alkylkette. Verwendet werden sie als Tenside in Wasch- und Spülmitteln. Die Alkylethersulfate verfügen zwischen der Sulfatgruppe und dem Alkylrest zusätzlich über ein bis vier Ethylenglycol-Gruppen (-CH2CH2O-). Alkylethersulfate bilden besonders viel Schaum, weshalb sie beispielsweise in Schaumbädern und Shampoos verwendet werden.[246] Neben den Natriumsalzen werden Alkylethersulfate auch als Ammonium- und Magnesiumsalze in Hygieneprodukten verwendet, beispielsweise Ammoniumlaurylethersulfat und Magnesiumlaurylethersulfat.[247]

Carrageen ist ein natürliches sulfatiertes Polysaccharid, das viel in der Lebensmitteltechnik verwendet wird, beispielsweise als Verdickungs- und Geliermittel. Für die Gewinnung von Carrageen werden Rotalgen, beispielsweise solche der Gattung Kappaphycus, kommerziell angebaut.[248] Viele Sulfatsalze werden als Dünger eingesetzt, beispielsweise Ammoniumsulfat und das Doppelsalz Ammoniumsulfatnitrat,[249] ebenso das Magnesium-Mineral Kieserit.[250] Auf mangan-armen Böden wird Mangansulfat als Dünger eingesetzt.[169] Der mit Abstand wichtigste Kaliumdünger ist Kaliumchlorid. Das teurere Kaliumsulfat wird nur in besonderen Fällen eingesetzt, wenn die Gefahr der Versalzung des Bodens besteht oder bei Pflanzen, die empfindlich auf Chlorid reagieren, beispielsweise Tabak und Zitrusfrüchten.[171] Kupfersulfat-Pentahydrat wird in der Landwirtschaft als Fungizid eingesetzt.[166]

Rhodinierter Ring

Ein wichtiger Anwendungsbereich von Aluminiumsulfat ist die Papierindustrie, wo es unter anderem zur Fixierung von Schlichtemitteln und Farben, sowie als Beschichtung für Glanzpapier dient. Die andere wichtige Verwendung ist als Flockungsmittel in der Wasseraufbereitung.[9] Die wichtigste Verwendung von Nickelsulfat ist die galvanische Vernickelung, also Beschichtung mit metallischem Nickel.[170] Analog wird Rhodium(III)-sulfat zur Rhodinierung (Beschichtung mit Rhodium) verwendet.[251]

Natriumsulfat und Magnesiumsulfat werden zum Trocknen organischer Lösungsmittel verwendet.[252] Wasserfreies Kupfersulfat eignet sich ebenfalls zum Trocknen organischer Lösungsmittel sowie durch die Farbänderung bei der Hydratbildung als Indikator für die Anwesenheit von Wasser in Lösungsmitteln.[166]

Nachweis

Sulfat kann durch Turbidimetrie quantitativ bestimmt werden also durch Messung einer Trübung. Dabei wird Bariumchlorid in die sulfathaltige Lösung gegeben, das zur Entstehung von Bariumsulfat führt, welches die Trübung verursacht.[253]

Sulfate werden in der klassischen Analytik mit Bariumchlorid in Salzsäure nachgewiesen. Dabei entsteht ein schwerlöslicher Niederschlag aus weißem Bariumsulfat:

Sulfat-Ionen bilden mit Barium-Ionen einen weißen, säureunlöslichen Niederschlag von Bariumsulfat.

Die Säure wird zur Entstörung zugesetzt, da Carbonat, Phosphat oder Sulfit mit Barium in Wasser ebenfalls schwerlösliche Salze bilden, die im Gegensatz zu Bariumsulfat aber in Salzsäure löslich sind. Wird der Nachweis in Gegenwart von Permanganat durchgeführt, bilden sich violett gefärbte Mischkristalle. Das darin eingebaute Permanganat kann dann nicht mehr einfach mit Reduktionsmitteln reagieren, die Kristalle also nicht dadurch entfärbt werden. Ein weiterer Nachweis, der ebenfalls auf der Bildung von Bariumsulfat beruht, verwendet Bariumchlorid und Natriumrhodizonat. Aus den beiden Reagenzien wird rotes Bariumrhodizonat gebildet, das bei Zugabe von Sulfat durch Bildung von Bariumsulfat entfärbt wird.[254]

Anhang

Weblinks

Wiktionary: Sulfate – Bedeutungserklärungen, Wortherkunft, Synonyme, Übersetzungen

Einzelnachweise

  1. Paolo Vitti: Mortars and masonry—structural lime and gypsum mortars in Antiquity and Middle Ages. In: Archaeological and Anthropological Sciences. Band 13, Nr. 10, Oktober 2021, doi:10.1007/s12520-021-01408-y.
  2. a b José da Silva Andrade Neto, Angeles G. De la Torre, Ana Paula Kirchheim: Effects of sulfates on the hydration of Portland cement – A review. In: Construction and Building Materials. Band 279, April 2021, S. 122428, doi:10.1016/j.conbuildmat.2021.122428.
  3. Zofia Anna Stos-Gale: Isotope archaeology: reading the past in metals, minerals, and bone. In: Endeavour. Band 16, Nr. 2, Juni 1992, S. 85–90, doi:10.1016/0160-9327(92)90007-C.
  4. W. Kloppmann, L. Leroux, P. Bromblet, P.-Y. Le Pogam, A. H. Cooper, N. Worley, C. Guerrot, A. T. Montech, A. M. Gallas, R. Aillaud: Competing English, Spanish, and French alabaster trade in Europe over five centuries as evidenced by isotope fingerprinting. In: Proceedings of the National Academy of Sciences. Band 114, Nr. 45, 7. November 2017, S. 11856–11860, doi:10.1073/pnas.1707450114, PMID 29078309, PMC 5692548 (freier Volltext).
  5. J. Ambers: Raman analysis of pigments from the Egyptian Old Kingdom. In: Journal of Raman Spectroscopy. Band 35, Nr. 8-9, August 2004, S. 768–773, doi:10.1002/jrs.1187.
  6. María Teresa Doménech-Carbó, María Luisa Vázquez de Agredos-Pascual, Laura Osete-Cortina, Antonio Doménech-Carbó, Núria Guasch-Ferré, Linda R. Manzanilla, Cristina Vidal-Lorenzo: Characterization of prehispanic cosmetics found in a burial of the ancient city of Teotihuacan (Mexico). In: Journal of Archaeological Science. Band 39, Nr. 4, April 2012, S. 1043–1062, doi:10.1016/j.jas.2011.12.001.
  7. Alana S. Lee, Peter J. Mahon, Dudley C. Creagh: Raman analysis of iron gall inks on parchment. In: Vibrational Spectroscopy. Band 41, Nr. 2, August 2006, S. 170–175, doi:10.1016/j.vibspec.2005.11.006.
  8. a b Karina Grömer, Gabriela Russ-Popa, Konstantina Saliari: Products of animal skin from Antiquity to the Medieval Period. In: Annalen des Naturhistorischen Museums in Wien. Serie A für Mineralogie und Petrographie, Geologie und Paläontologie, Anthropologie und Prähistorie. Band 119, 2017, S. 69–93, JSTOR:26342924.
  9. a b c d e Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 1. VCH, Weinheim Deerfield beach (Fla.) 1985, ISBN 3-527-20101-7, S. 527–533 (Eintrag zu 'Aluminium Compounds, Inorganic').
  10. James C. Hill: Johann Glauber's discovery of sodium sulfate - Sal Mirabile Glauberi. In: Journal of Chemical Education. Band 56, Nr. 9, September 1979, S. 593, doi:10.1021/ed056p593.
  11. Fortes, A. D.: "The Story of Epsomite." Abgerufen am 13. März 2024.
  12. a b B. Szostakowski, P. Smitham, W.S. Khan: Plaster of Paris–Short History of Casting and Injured Limb Immobilzation. In: The Open Orthopaedics Journal. Band 11, Nr. 1, 17. April 2017, S. 291–296, doi:10.2174/1874325001711010291, PMID 28567158, PMC 5420179 (freier Volltext).
  13. a b Linda A. Hunter, Karen J. Gibbins: Magnesium Sulfate: Past, Present, and Future. In: Journal of Midwifery & Women's Health. Band 56, Nr. 6, November 2011, S. 566–574, doi:10.1111/j.1542-2011.2011.00121.x.
  14. a b D.K Obatomi, P.H Bach: Biochemistry and Toxicology of the Diterpenoid Glycoside Atractyloside. In: Food and Chemical Toxicology. Band 36, Nr. 4, April 1998, S. 335–346, doi:10.1016/S0278-6915(98)00002-7.
  15. a b A Roy: Eugen Baumann and sulphate esters. In: Trends in Biochemical Sciences. Band 1, Nr. 10, Oktober 1976, S. N233–N234, doi:10.1016/0968-0004(76)90168-7.
  16. a b Ivica Blažević, Sabine Montaut, Franko Burčul, Carl Erik Olsen, Meike Burow, Patrick Rollin, Niels Agerbirk: Glucosinolate structural diversity, identification, chemical synthesis and metabolism in plants. In: Phytochemistry. Band 169, Januar 2020, S. 112100, doi:10.1016/j.phytochem.2019.112100.
  17. a b Jeffrey B. Harborne: Flavonoid sulphates: A new class of sulphur compounds in higher plants. In: Phytochemistry. Band 14, Nr. 5-6, Juni 1975, S. 1147–1155, doi:10.1016/S0031-9422(00)98585-6.
  18. a b c d e Dallas L. Rabenstein: Heparin and heparan sulfate: structure and function. In: Natural Product Reports. Band 19, Nr. 3, 23. Mai 2002, S. 312–331, doi:10.1039/b100916h.
  19. J D Gregory, P W Robbins: METABOLISM OF SULFUR COMPOUNDS (SULFATE METABOLISM). In: Annual Review of Biochemistry. Band 29, Nr. 1, Juni 1960, S. 347–364, doi:10.1146/annurev.bi.29.070160.002023.
  20. a b Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 8. VCH, Weinheim New York 1987, ISBN 978-3-527-20108-2, S. 493–494 (Eintrag zu 'Dialkyl Sulfates and Alkylsulfuric Acids').
  21. a b c d e f Everett E. Gilbert: The Reactions of Sulfur Trioxide, and Its Adducts, with Organic Compounds. In: Chemical Reviews. Band 62, Nr. 6, 1. Dezember 1962, S. 549–589, doi:10.1021/cr60220a003.
  22. Gilbert N. Lewis: THE ATOM AND THE MOLECULE. In: Journal of the American Chemical Society. Band 38, Nr. 4, April 1916, S. 762–785, doi:10.1021/ja02261a002.
  23. Laila Suidan, Jay K. Badenhoop, Eric D. Glendening, Frank Weinhold: Common Textbook and Teaching Misrepresentations of Lewis Structures. In: Journal of Chemical Education. Band 72, Nr. 7, Juli 1995, S. 583, doi:10.1021/ed072p583.
  24. Cory C. Pye, Wolfram W. Rudolph: An ab Initio and Raman Investigation of Sulfate Ion Hydration. In: The Journal of Physical Chemistry A. Band 105, Nr. 5, 1. Februar 2001, S. 905–912, doi:10.1021/jp003253n.
  25. William R. Cannon, B. Montgomery Pettitt, J. Andrew McCammon: Sulfate Anion in Water: Model Structural, Thermodynamic, and Dynamic Properties. In: The Journal of Physical Chemistry. Band 98, Nr. 24, Juni 1994, S. 6225–6230, doi:10.1021/j100075a027.
  26. S. John Louisnathan, Roderick J. Hill, G. V. Gibbs: Tetrahedral bond length variations in sulfates. In: Physics and Chemistry of Minerals. Band 1, Nr. 1, 1977, S. 53–69, doi:10.1007/BF00307979.
  27. Alexander V. Levanov, Oksana Ya. Isaikina, Ulkar D. Gurbanova, Valery V. Lunin: Dissociation Constants of Perchloric and Sulfuric Acids in Aqueous Solution. In: The Journal of Physical Chemistry B. Band 122, Nr. 23, 14. Juni 2018, S. 6277–6286, doi:10.1021/acs.jpcb.8b01947.
  28. Richard E. Lindstrom, Henry E. Wirth: Estimation of the bisulfate ion dissociation in solutions of sulfuric acid and sodium bisulfate. In: The Journal of Physical Chemistry. Band 73, Nr. 1, Januar 1969, S. 218–223, doi:10.1021/j100721a036.
  29. Greenwood, N. N., Earnshaw, A. (2012). Chemistry of the Elements. Deutschland: Elsevier Science. ISBN 978-0-08-050109-3
  30. a b c d Sulfate. Abgerufen am 10. März 2024.
  31. Vitriole. Abgerufen am 3. März 2024.
  32. a b Eberhard Schweda, Gerhart Jander, Ewald Blasius: Jander/Blasius anorganische Chemie. 1: Theoretische Grundlagen und Qualitative Analyse: mit 290 Abbildungen, 90 Formeln und 71 Tabellen und Poster "Taschenfalter". 19., völlig neu bearbeitete Auflage. Hirzel Verlag, Stuttgart 2022, ISBN 978-3-7776-3009-0, S. 247–248.
  33. Gmelins Handbuch der Anorganischen Chemie: Radium, System Nummer 31. Achte Auflage, Verlag Chemie GmbH, Berlin 1927, S. 61–62.
  34. Eintrag zu Ammoniumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  35. Eintrag zu Natriumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  36. Eintrag zu Kaliumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  37. Eintrag zu Magnesiumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  38. Eintrag zu Calciumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  39. Eintrag zu Strontiumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  40. Eintrag zu Bariumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  41. Eintrag zu Aluminiumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  42. Eintrag zu Chrom(III)-sulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  43. Eintrag zu Mangan(II)-sulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  44. Eintrag zu Eisen(II)-sulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  45. Eintrag zu Nickel(II)-sulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  46. Eintrag zu Kupfer(II)-sulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  47. Eintrag zu Zinksulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  48. Eintrag zu Natriumhydrogensulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 14. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  49. Eintrag zu Kaliumhydrogensulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 14. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  50. Eintrag zu Kaliumaluminiumsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 14. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  51. Eintrag zu Chromalaun in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 14. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  52. Eintrag zu Dimethylsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  53. Eintrag zu Diethylsulfat in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 10. März 2024. (JavaScript erforderlich)
  54. Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 8. VCH, Weinheim New York 1987, ISBN 978-3-527-20108-2, S. 502–503 (Eintrag zu 'Dialkyl Sulfates and Alkylsulfuric Acids').
  55. Svetlana Malkhazova, Dmitry Orlov, Natalia Shartova, Sergey Starikov, Tatiana Puzanova: Healing Springs of Russia. Springer International Publishing, Cham 2022, ISBN 978-3-03083533-0, doi:10.1007/978-3-030-83534-7.
  56. A. Longinelli, H. Craig: Oxygen-18 Variations in Sulfate Ions in Sea Water and Saline Lakes. In: Science. Band 156, Nr. 3771, 7. April 1967, S. 56–59, doi:10.1126/science.156.3771.56.
  57. a b F J Millero: The Physical Chemistry of Seawater. In: Annual Review of Earth and Planetary Sciences. Band 2, Nr. 1, Mai 1974, S. 101–150, doi:10.1146/annurev.ea.02.050174.000533.
  58. William M. Last: Geolimnology of salt lakes. In: Geosciences Journal. Band 6, Nr. 4, Dezember 2002, S. 347–369, doi:10.1007/BF03020619.
  59. a b Kasper Urup Kjeldsen, Alexander Loy, Trine Fredlund Jakobsen, Trine Rolighed Thomsen, Michael Wagner, Kjeld Ingvorsen: Diversity of sulfate-reducing bacteria from an extreme hypersaline sediment, Great Salt Lake (Utah): Diversity of SRB in Great Salt Lake. In: FEMS Microbiology Ecology. Band 60, Nr. 2, Mai 2007, S. 287–298, doi:10.1111/j.1574-6941.2007.00288.x.
  60. K. L. Falk, J. G. Tokuhisa, J. Gershenzon: The Effect of Sulfur Nutrition on Plant Glucosinolate Content: Physiology and Molecular Mechanisms. In: Plant Biology. Band 9, Nr. 5, September 2007, S. 573–581, doi:10.1055/s-2007-965431.
  61. a b c Shigeru Ōae, Joyce Takahashi Doi: Organic sulfur chemistry: structure and mechanism. CRC Press, Boca Raton, Fla 1991, ISBN 0-8493-4739-4, S. 360–363.
  62. Timothy H.J. Florin, Graeme Neale, Sara Goretski, John H Cummings: The Sulfate Content of Foods and Beverages. In: Journal of Food Composition and Analysis. Band 6, Nr. 2, Juni 1993, S. 140–151, doi:10.1006/jfca.1993.1016.
  63. a b c Sulfate. Abgerufen am 10. März 2024.
  64. a b Mineralsystematik nach Strunz 9. Auflage von 2001 (incl. spätere Erweiterungen) – 7. Sulfate. In: Mineralienatlas Lexikon. Geolitho Stiftung, abgerufen am 12. März 2024.
  65. Ernest H. Nickel, Monte C. Nichols: IMA/CNMNC List of Minerals 2009. (PDF; 1,9 MB) In: cnmnc.units.it. IMA/CNMNC, Januar 2009, abgerufen am 12. März 2024 (englisch).
  66. a b Stefan Weiß: Das große Lapis Mineralienverzeichnis. Alle Mineralien von A – Z und ihre Eigenschaften. Stand 03/2018. 7., vollkommen neu bearbeitete und ergänzte Auflage. Weise, München 2018, ISBN 978-3-921656-83-9.
  67. Richard V. Gaines, H. Catherine W. Skinner, Eugene E. Foord, Brian Mason, Abraham Rosenzweig: Dana’s New Mineralogy. 8. Auflage. John Wiley & Sons, New York u. a. 1997, ISBN 0-471-19310-0.
  68. David Barthelmy: Dana's New Sulfate Classification – 28 Sulfate Minerals. In: webmineral.com. Abgerufen am 12. März 2024 (englisch).
  69. a b c d e Manuel Bustillo Revuelta: Gypsum Products. In: Construction Materials. Springer International Publishing, Cham 2021, ISBN 978-3-03065206-7, S. 195–215, doi:10.1007/978-3-030-65207-4_8.
  70. Amit G. Reiss, Ittai Gavrieli, Yoav O. Rosenberg, Itay J. Reznik, Andreas Luttge, Simon Emmanuel, Jiwchar Ganor: Gypsum Precipitation under Saline Conditions: Thermodynamics, Kinetics, Morphology, and Size Distribution. In: Minerals. Band 11, Nr. 2, 30. Januar 2021, S. 141, doi:10.3390/min11020141.
  71. a b Niklas Wehmann, Christoph Lenting, Sandro Jahn: Calcium sulfates in planetary surface environments. In: Global and Planetary Change. Band 230, November 2023, S. 104257, doi:10.1016/j.gloplacha.2023.104257.
  72. R. C. Murray (2): Origin and Diagenesis of Gypsum and Anhydrite. In: SEPM Journal of Sedimentary Research. Vol. 34, 1964, doi:10.1306/74D710D2-2B21-11D7-8648000102C1865D.
  73. R. F. Parsons: Gypsophily in Plants-A Review. In: American Midland Naturalist. Band 96, Nr. 1, Juli 1976, S. 1, doi:10.2307/2424564.
  74. Amit G. Reiss, Ittai Gavrieli, Yoav O. Rosenberg, Itay J. Reznik, Andreas Luttge, Simon Emmanuel, Jiwchar Ganor: Gypsum Precipitation under Saline Conditions: Thermodynamics, Kinetics, Morphology, and Size Distribution. In: Minerals. Band 11, Nr. 2, 30. Januar 2021, S. 141, doi:10.3390/min11020141.
  75. Juan Manuel García-Ruiz, Roberto Villasuso, Carlos Ayora, Angels Canals, Fermín Otálora: Formation of natural gypsum megacrystals in Naica, Mexico. In: Geology. Band 35, Nr. 4, 2007, S. 327, doi:10.1130/G23393A.1.
  76. M. M. Al‐Kofahi, A. B. Hallak, H. A. Al‐Juwair, A. K. Saafin: Analysis of desert rose using PIXE and RBS techniques. In: X-Ray Spectrometry. Band 22, Nr. 1, Januar 1993, S. 23–27, doi:10.1002/xrs.1300220107.
  77. Robert D. Allen, Henry Kramer; Occurrence of bassanite in two desert basins in Southeastern California. American Mineralogist 1953;; 38 (11-12): 1266–1268.
  78. DUMITRAŞ, Delia-Georgeta, et al. "Gypsum and bassanite in the bat guano deposit from the “dry” Cioclovina cave (Sureanu Mountains, Romania)." Rom. J. Mineral Dep 81 (2004): 84-87.
  79. James J. Wray, Steven W. Squyres, Leah H. Roach, Janice L. Bishop, John F. Mustard, Eldar Z. Noe Dobrea: Identification of the Ca-sulfate bassanite in Mawrth Vallis, Mars. In: Icarus. Band 209, Nr. 2, Oktober 2010, S. 416–421, doi:10.1016/j.icarus.2010.06.001.
  80. Yves Langevin, François Poulet, Jean-Pierre Bibring, Brigitte Gondet: Sulfates in the North Polar Region of Mars Detected by OMEGA/Mars Express. In: Science. Band 307, Nr. 5715, 11. März 2005, S. 1584–1586, doi:10.1126/science.1109091.
  81. Martin Okrusch, Siegfried Matthes: Mineralogie: Eine Einführung in die spezielle Mineralogie, Petrologie und Lagerstättenkunde. 8. Auflage, Springer, Berlin / Heidelberg 2009, ISBN 978-3-540-78200-1, S. 107 ff.
  82. Harald G. Dill, Berthold Weber, Reiner Botz: Metalliferous duricrusts ("orecretes") - markers of weathering: A mineralogical and climatic-geomorphological approach to supergene Pb-Zn-Cu-Sb-P mineralization on different parent materials. In: Neues Jahrbuch für Mineralogie - Abhandlungen. Band 190, Nr. 2, 1. April 2013, S. 167, doi:10.1127/0077-7757/2013/0235.
  83. N. V. Zubkova, I. V. Pekov, D. A. Ksenofontov, V. O. Yapaskurt, D. Yu. Pushcharovsky, E. G. Sidorov: Arcanite from Fumarole Exhalations of the Tolbachik Volcano (Kamchatka, Russia) and Its Crystal Structure. In: Doklady Earth Sciences. Band 479, Nr. 1, März 2018, S. 339–341, doi:10.1134/S1028334X18030121.
  84. William M. Last: Geolimnology of salt lakes. In: Geosciences Journal. Band 6, Nr. 4, Dezember 2002, S. 347–369, doi:10.1007/BF03020619.
  85. Fabienne Bosselmann, Matthias Epple: Sulfate‐Containing Biominerals. In: Biomineralization. 1. Auflage. Wiley, 2008, ISBN 978-0-470-03525-2, S. 207–217, doi:10.1002/9780470986325.ch6.
  86. Crystallographic and morphological studies of the celestite skeleton of the acantharian species Phyllostaurus siculus. In: Proceedings of the Royal Society of London. Series B. Biological Sciences. Band 233, Nr. 1273, 23. Mai 1988, S. 393–405, doi:10.1098/rspb.1988.0029.
  87. John A. Raven, Andrew H. Knoll: Non-Skeletal Biomineralization by Eukaryotes: Matters of Moment and Gravity. In: Geomicrobiology Journal. Band 27, Nr. 6-7, 10. September 2010, S. 572–584, doi:10.1080/01490451003702990.
  88. a b Henry Tiemann, Ilka Sötje, Alexander Becker, Gerhard Jarms, Matthias Epple: Calcium sulfate hemihydrate (bassanite) statoliths in the cubozoan Carybdea sp. In: Zoologischer Anzeiger - A Journal of Comparative Zoology. Band 245, Nr. 1, Juli 2006, S. 13–17, doi:10.1016/j.jcz.2006.03.001.
  89. a b Henry Tiemann, Ilka Sötje, Gerhard Jarms, Carsten Paulmann, Matthias Epple, Bernd Hasse: Calcium sulfate hemihydrate in statoliths of deep-sea medusae. In: Journal of the Chemical Society, Dalton Transactions. Nr. 7, 26. März 2002, S. 1266–1268, doi:10.1039/b111524c.
  90. Fabienne Boßelmann, Matthias Epple, Ilka Sötje, Henry Tiemann: Statoliths of Calcium Sulfate Hemihydrate are used for Gravity Sensing in Rhopaliophoran Medusae (Cnidaria). In: Handbook of Biomineralization. 1. Auflage. Wiley, 2007, ISBN 978-3-527-31641-0, S. 261–272, doi:10.1002/9783527619443.ch15.
  91. T. Yoshimura, Y. Tamenori, H. Kawahata, A. Suzuki: Fluctuations of sulfate, S-bearing amino acids and magnesium in a giant clam shell. In: Biogeosciences. Band 11, Nr. 14, 24. Juli 2014, S. 3881–3886, doi:10.5194/bg-11-3881-2014.
  92. Natercia Barbosa, Jean-Michel Jaquet, Oscar Urquidi, Takuji B.M. Adachi, Montserrat Filella: Combined in vitro and in vivo investigation of barite microcrystals in Spirogyra (Zygnematophyceae, Charophyta). In: Journal of Plant Physiology. Band 276, September 2022, S. 153769, doi:10.1016/j.jplph.2022.153769.
  93. A. U. Dogan, M. Dogan, D. C. N. Chan, D. E. Wurster: Bassanite fromSalvadora persica: A new evaporitic biomineral. In: Carbonates and Evaporites. Band 20, Nr. 1, März 2005, S. 2–7, doi:10.1007/BF03175444.
  94. J. E. Penner, C. C. Chuang, K. Grant: Climate forcing by carbonaceous and sulfate aerosols. In: Climate Dynamics. Band 14, Nr. 12, 29. Oktober 1998, S. 839–851, doi:10.1007/s003820050259.
  95. O. Boucher, M. Pham: History of sulfate aerosol radiative forcings. In: Geophysical Research Letters. Band 29, Nr. 9, Mai 2002, doi:10.1029/2001GL014048.
  96. a b c Robert J. Charlson, Tom M. L. Wigley: Sulfate Aerosol and Climatic Change. In: Scientific American. Band 270, Nr. 2, Februar 1994, S. 48–57, doi:10.1038/scientificamerican0294-48.
  97. J. T. Kiehl, B. P. Briegleb: The Relative Roles of Sulfate Aerosols and Greenhouse Gases in Climate Forcing. In: Science. Band 260, Nr. 5106, 16. April 1993, S. 311–314, doi:10.1126/science.260.5106.311.
  98. Lauren R. Marshall, Elena C. Maters, Anja Schmidt, Claudia Timmreck, Alan Robock, Matthew Toohey: Volcanic effects on climate: recent advances and future avenues. In: Bulletin of Volcanology. Band 84, Nr. 5, Mai 2022, doi:10.1007/s00445-022-01559-3.
  99. M. Patrick McCormick, Larry W. Thomason, Charles R. Trepte: Atmospheric effects of the Mt Pinatubo eruption. In: Nature. Band 373, Nr. 6513, Februar 1995, S. 399–404, doi:10.1038/373399a0.
  100. Stefan Brönnimann, Daniel Krämer: Tambora and the “Year Without a Summer” of 1816. A Perspective on Earth and Human Systems Science. Geographica Bernensia, CH 1. Mai 2016, doi:10.4480/gb2016.g90.01.
  101. Matthew Toohey, Kirstin Krüger, Michael Sigl, Frode Stordal, Henrik Svensen: Climatic and societal impacts of a volcanic double event at the dawn of the Middle Ages. In: Climatic Change. Band 136, Nr. 3-4, Juni 2016, S. 401–412, doi:10.1007/s10584-016-1648-7.
  102. a b c d e f g h i Charles A. Strott: Sulfonation and Molecular Action. In: Endocrine Reviews. Band 23, Nr. 5, 1. Oktober 2002, S. 703–732, doi:10.1210/er.2001-0040.
  103. a b c d e f Eli Chapman, Michael D. Best, Sarah R. Hanson, Chi‐Huey Wong: Sulfotransferases: Structure, Mechanism, Biological Activity, Inhibition, and Synthetic Utility. In: Angewandte Chemie International Edition. Band 43, Nr. 27, 5. Juli 2004, S. 3526–3548, doi:10.1002/anie.200300631.
  104. Goran Malojčić, Robin L. Owen, Rudi Glockshuber: Structural and Mechanistic Insights into the PAPS-Independent Sulfotransfer Catalyzed by Bacterial Aryl Sulfotransferase and the Role of the DsbL/DsbI System in Its Folding. In: Biochemistry. Band 53, Nr. 11, 25. März 2014, S. 1870–1877, doi:10.1021/bi401725j.
  105. Nandita Shangari, Tom S. Chan, Peter J. O'Brien: Sulfation and Glucuronidation of Phenols: Implications in Coenyzme Q Metabolism. In: Methods in Enzymology. Band 400. Elsevier, 2005, ISBN 978-0-12-182805-9, S. 342–359, doi:10.1016/s0076-6879(05)00020-0.
  106. Vlasia Kastrinou Lampou, Birk Poller, Felix Huth, Audrey Fischer, Gerd A. Kullak-Ublick, Michael Arand, Heiko S. Schadt, Gian Camenisch: Novel insights into bile acid detoxification via CYP, UGT and SULT enzymes. In: Toxicology in Vitro. Band 87, März 2023, S. 105533, doi:10.1016/j.tiv.2022.105533.
  107. Sheldon Leong, Tammy Sirich: Indoxyl Sulfate—Review of Toxicity and Therapeutic Strategies. In: Toxins. Band 8, Nr. 12, 30. November 2016, S. 358, doi:10.3390/toxins8120358, PMID 27916890, PMC 5198552 (freier Volltext).
  108. Paul W. Needs, Paul A. Kroon: Convenient syntheses of metabolically important quercetin glucuronides and sulfates. In: Tetrahedron. Band 62, Nr. 29, Juli 2006, S. 6862–6868, doi:10.1016/j.tet.2006.04.102.
  109. David W. Boulton, J. Paul Fawcett: The Pharmacokinetics of Levosalbutamol: What are the Clinical Implications? In: Clinical Pharmacokinetics. Band 40, Nr. 1, 2001, S. 23–40, doi:10.2165/00003088-200140010-00003.
  110. Gerard J. Mulder, Aldert H. Hagedoorn: UDP glucuronyltransferase and phenolsulfotransferase in vivo and in vitro. In: Biochemical Pharmacology. Band 23, Nr. 15, August 1974, S. 2101–2109, doi:10.1016/0006-2952(74)90575-9.
  111. K Patel, M Gadewar, R Tripathi, Sk Prasad, Dinesh Kumar Patel: A review on medicinal importance, pharmacological activity and bioanalytical aspects of beta-carboline alkaloid “Harmine”. In: Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine. Band 2, Nr. 8, August 2012, S. 660–664, doi:10.1016/S2221-1691(12)60116-6, PMID 23569990, PMC 3609365 (freier Volltext).
  112. a b c d Tadahisa Mikami, Hiroshi Kitagawa: Biosynthesis and function of chondroitin sulfate. In: Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. Band 1830, Nr. 10, Oktober 2013, S. 4719–4733, doi:10.1016/j.bbagen.2013.06.006.
  113. H. Watanabe, Y. Yamada, K. Kimata: Roles of Aggrecan, a Large Chondroitin Sulfate Proteoglycan, in Cartilage Structure and Function. In: Journal of Biochemistry. Band 124, Nr. 4, 1. Oktober 1998, S. 687–693, doi:10.1093/oxfordjournals.jbchem.a022166.
  114. Nadeen O. Chahine, Faye H. Chen, Clark T. Hung, Gerard A. Ateshian: Direct Measurement of Osmotic Pressure of Glycosaminoglycan Solutions by Membrane Osmometry at Room Temperature. In: Biophysical Journal. Band 89, Nr. 3, September 2005, S. 1543–1550, doi:10.1529/biophysj.104.057315, PMID 15980166, PMC 1366659 (freier Volltext).
  115. Chiara Schiraldi, Donatella Cimini, Mario De Rosa: Production of chondroitin sulfate and chondroitin. In: Applied Microbiology and Biotechnology. Band 87, Nr. 4, Juli 2010, S. 1209–1220, doi:10.1007/s00253-010-2677-1.
  116. Vitor H. Pomin: Keratan sulfate: An up-to-date review. In: International Journal of Biological Macromolecules. Band 72, Januar 2015, S. 282–289, doi:10.1016/j.ijbiomac.2014.08.029.
  117. a b J. M. Trowbridge, R. L. Gallo: Dermatan sulfate: new functions from an old glycosaminoglycan. In: Glycobiology. Band 12, Nr. 9, 1. September 2002, S. 117R–125R, doi:10.1093/glycob/cwf066.
  118. Udo Häcker, Kent Nybakken, Norbert Perrimon: Heparan sulphate proteoglycans: the sweet side of development. In: Nature Reviews Molecular Cell Biology. Band 6, Nr. 7, Juli 2005, S. 530–541, doi:10.1038/nrm1681.
  119. a b Sultan N. Baytas, Robert J. Linhardt: Advances in the preparation and synthesis of heparin and related products. In: Drug Discovery Today. Band 25, Nr. 12, Dezember 2020, S. 2095–2109, doi:10.1016/j.drudis.2020.09.011, PMID 32947045, PMC 7718634 (freier Volltext).
  120. Yaping Chen, Terry Maguire, Ronald E. Hileman, Jonathan R. Fromm, Jeffrey D. Esko, Robert J. Linhardt, Rory M. Marks: Dengue virus infectivity depends on envelope protein binding to target cell heparan sulfate. In: Nature Medicine. Band 3, Nr. 8, August 1997, S. 866–871, doi:10.1038/nm0897-866.
  121. a b Ger J. Strous, Jan Dekker: Mucin-Type Glycoproteins. In: Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology. Band 27, Nr. 1-2, Januar 1992, S. 57–92, doi:10.3109/10409239209082559.
  122. Rama Bansil, Bradley S. Turner: Mucin structure, aggregation, physiological functions and biomedical applications. In: Current Opinion in Colloid & Interface Science. Band 11, Nr. 2-3, Juni 2006, S. 164–170, doi:10.1016/j.cocis.2005.11.001.
  123. Koichi Honke, Naoyuki Taniguchi: Sulfotransferases and sulfated oligosaccharides. In: Medicinal Research Reviews. Band 22, Nr. 6, November 2002, S. 637–654, doi:10.1002/med.10020.
  124. Matthias Eckhardt: The Role and Metabolism of Sulfatide in the Nervous System. In: Molecular Neurobiology. Band 37, Nr. 2-3, Juni 2008, S. 93–103, doi:10.1007/s12035-008-8022-3.
  125. G. J. Bakus: Defensive mechanisms and ecology of some tropical holothurians. In: Marine Biology. Band 2, Nr. 1, Oktober 1968, S. 23–32, doi:10.1007/BF00351634.
  126. a b Vladimir I. Kalinin, Dmitry L. Aminin, Sergey A. Avilov, Alexandra S. Silchenko, Valentin A. Stonik: Triterpene Glycosides from Sea Cucucmbers (Holothurioidea, Echinodermata). Biological Activities and Functions. In: Studies in Natural Products Chemistry. Band 35. Elsevier, 2008, ISBN 978-0-444-53181-0, S. 135–196, doi:10.1016/s1572-5995(08)80006-3.
  127. S.L. Friess, R.C. Durant, J.D. Chanley, F.J. Fash: Role of the sulphate charge center in irreversible interactions of holothurin A with chemoreceptors. In: Biochemical Pharmacology. Band 16, Nr. 8, August 1967, S. 1617–1625, doi:10.1016/0006-2952(67)90140-2.
  128. J. D. Chanley, R. Ledeen, J. Wax, R. F. Nigrelli, Harry Sobotka: Holothurin. I. The Isolation, Properties and Sugar Components of Holothurin A 1. In: Journal of the American Chemical Society. Band 81, Nr. 19, Oktober 1959, S. 5180–5183, doi:10.1021/ja01528a040.
  129. V. I. Kalinin, V. A. Stonik: Glycosides of marine invertebrates. Structure of holothurin A2 from the holothurianHolothuria edulis. In: Chemistry of Natural Compounds. Band 18, Nr. 2, März 1982, S. 196–200, doi:10.1007/BF00577193.
  130. Ming‐Ping La, Cui Li, Ling Li, Peng Sun, Hua Tang, Bao‐Shu Liu, Wei Gong, Hua Han, Yang‐Hua Yi, Wen Zhang: New Bioactive Sulfated Alkenes from the Sea Cucumber Apostichopus japonicus. In: Chemistry & Biodiversity. Band 9, Nr. 6, Juni 2012, S. 1166–1171, doi:10.1002/cbdv.201100324.
  131. Anna Aiello, Sabina Carbonelli, Giuseppe Esposito, Ernesto Fattorusso, Teresa Iuvone, Marialuisa Menna: Novel Bioactive Sulfated Alkene and Alkanes from the Mediterranean Ascidian Halocynthia papillosa. In: Journal of Natural Products. Band 63, Nr. 11, 1. November 2000, S. 1590–1592, doi:10.1021/np000281o.
  132. Susumu Ikegami, Yuji Kamiya, Saburo Tamura: A new steroidal sulfate obtained from a starfish saponin, asterosaponin a. In: Tetrahedron Letters. Band 14, Nr. 10, Januar 1973, S. 731–734, doi:10.1016/S0040-4039(01)95696-5.
  133. A. A. Kicha, N. V. Ivanchina, A. I. Kalinovsky, P. S. Dmitrenok, V. A. Stonik: [No title found]. In: Russian Chemical Bulletin. Band 50, Nr. 4, 2001, S. 724–727, doi:10.1023/A:1011337617808.
  134. Natalia V. Ivanchina, Alla A. Kicha, Timofey V. Malyarenko, Anatoly I. Kalinovsky, Pavel S. Dmitrenok, Valentin A. Stonik: Biosynthesis of polar steroids from the Far Eastern starfish Patiria (=Asterina) pectinifera. Cholesterol and cholesterol sulfate are converted into polyhydroxylated sterols and monoglycoside asterosaponin P1 in feeding experiments. In: Steroids. Band 78, Nr. 12-13, Dezember 2013, S. 1183–1191, doi:10.1016/j.steroids.2013.08.008.
  135. a b c Ruslan Yatusevich, Sarah G. Mugford, Colette Matthewman, Tamara Gigolashvili, Henning Frerigmann, Sean Delaney, Anna Koprivova, Ulf-Ingo Flügge, Stanislav Kopriva: Genes of primary sulfate assimilation are part of the glucosinolate biosynthetic network in Arabidopsis thaliana: Glucosinolate biosynthesis and sulfate assimilation. In: The Plant Journal. Band 62, Nr. 1, April 2010, S. 1–11, doi:10.1111/j.1365-313X.2009.04118.x.
  136. a b c Don Brian Clarke: Glucosinolates, structures and analysis in food. In: Analytical Methods. Band 2, Nr. 4, 2010, S. 310, doi:10.1039/b9ay00280d.
  137. a b c d e Barbara Ann Halkier, Jonathan Gershenzon: BIOLOGY AND BIOCHEMISTRY OF GLUCOSINOLATES. In: Annual Review of Plant Biology. Band 57, Nr. 1, 1. Juni 2006, S. 303–333, doi:10.1146/annurev.arplant.57.032905.105228.
  138. Fekadu Kassie, Brenda Laky, Richard Gminski, Volker Mersch-Sundermann, Gerlinde Scharf, Evelyn Lhoste, Siegfried Kansmüller: Effects of garden and water cress juices and their constituents, benzyl and phenethyl isothiocyanates, towards benzo(a)pyrene-induced DNA damage: a model study with the single cell gel electrophoresis/Hep G2 assay. In: Chemico-Biological Interactions. Band 142, Nr. 3, Januar 2003, S. 285–296, doi:10.1016/S0009-2797(02)00123-0.
  139. a b c d e Niels Agerbirk, Carl Erik Olsen: Glucosinolate structures in evolution. In: Phytochemistry. Band 77, Mai 2012, S. 16–45, doi:10.1016/j.phytochem.2012.02.005.
  140. K. L. Falk, J. G. Tokuhisa, J. Gershenzon: The Effect of Sulfur Nutrition on Plant Glucosinolate Content: Physiology and Molecular Mechanisms. In: Plant Biology. Band 9, Nr. 5, September 2007, S. 573–581, doi:10.1055/s-2007-965431.
  141. a b c d e Andreas Ratzka, Heiko Vogel, Daniel J. Kliebenstein, Thomas Mitchell-Olds, Juergen Kroymann: Disarming the mustard oil bomb. In: Proceedings of the National Academy of Sciences. Band 99, Nr. 17, 20. August 2002, S. 11223–11228, doi:10.1073/pnas.172112899, PMID 12161563, PMC 123237 (freier Volltext).
  142. a b Denis Barron, Luc Varin, Ragai K. Ibrahim, Jeffrey B. Harborne, Christine A. Williams: Sulphated flavonoids—an update. In: Phytochemistry. Band 27, Nr. 8, Januar 1988, S. 2375–2395, doi:10.1016/0031-9422(88)87003-1.
  143. Abdelali Hannoufa, Luc Varin, Ragai K. Ibrahim: Spatial Distribution of Flavonoid Conjugates in Relation to Glucosyltransferase and Sulfotransferase Activities in Flaveria bidentis. In: Plant Physiology. Band 97, Nr. 1, 1. September 1991, S. 259–263, doi:10.1104/pp.97.1.259, PMID 16668379, PMC 1080992 (freier Volltext).
  144. Luc Varin, Ragai K. Ibrahim: Partial Purification and Characterization of Three Flavonol-Specific Sulfotransferases from Flaveria chloraefolia. In: Plant Physiology. Band 90, Nr. 3, 1. Juli 1989, S. 977–981, doi:10.1104/pp.90.3.977, PMID 16666908, PMC 1061831 (freier Volltext).
  145. a b Zhikui He, Honghong Liu, Shanshan Gui, Huai Liu, Jianyuan Yang, Qigen Guo, Xiangrong Ye, Binghuo Zhang: Procoagulant substances and mechanisms of hemostatic herb Eclipta alba. In: Process Biochemistry. Band 122, November 2022, S. 103–114, doi:10.1016/j.procbio.2022.08.027.
  146. Hui Yang, Petr Protiva, Baoliang Cui, Cuiying Ma, Scott Baggett, Vanessa Hequet, Scott Mori, I. Bernard Weinstein, Edward J. Kennelly: New Bioactive Polyphenols from Theobroma g randiflorum (“Cupuaçu”). In: Journal of Natural Products. Band 66, Nr. 11, 1. Dezember 2003, S. 1501–1504, doi:10.1021/np034002j.
  147. Quan-Xiang Wu, Xiao-Feng He, Chun-Xiao Jiang, Wei Zhang, Zhuan-Ning Shi, Hong-Fang Li, Ying Zhu: Two novel bioactive sulfated guaiane sesquiterpenoid salt alkaloids from the aerial parts of Scorzonera divaricata. In: Fitoterapia. Band 124, Januar 2018, S. 113–119, doi:10.1016/j.fitote.2017.10.011.
  148. Reuben A. Sessa, Mark H. Bennett, Mervyn J. Lewis, John W. Mansfield, Michael H. Beale: Metabolite Profiling of Sesquiterpene Lactones from Lactuca Species. In: Journal of Biological Chemistry. Band 275, Nr. 35, September 2000, S. 26877–26884, doi:10.1016/S0021-9258(19)61456-0.
  149. Filippo Imperato: Sulphate esters of hydroxycinnamic acid—sugar derivatives from Adiantum capillus-veneris. In: Phytochemistry. Band 21, Nr. 11, Januar 1982, S. 2717–2718, doi:10.1016/0031-9422(82)83105-1.
  150. Antonin Chevenier, Diane Jouanneau, Elizabeth Ficko-Blean: Carrageenan biosynthesis in red algae: A review. In: The Cell Surface. Band 9, Dezember 2023, S. 100097, doi:10.1016/j.tcsw.2023.100097, PMID 37396716, PMC 10311240 (freier Volltext).
  151. John V. Mulcahy, James R. Walker, Jeffrey E. Merit, Alan Whitehead, J. Du Bois: Synthesis of the Paralytic Shellfish Poisons (+)-Gonyautoxin 2, (+)-Gonyautoxin 3, and (+)-11,11-Dihydroxysaxitoxin. In: Journal of the American Chemical Society. Band 138, Nr. 18, 11. Mai 2016, S. 5994–6001, doi:10.1021/jacs.6b02343.
  152. Masayuki Satake, Lincoln MacKenzie, Takeshi Yasumoto: Identification of Protoceratium reticulatum as the biogenetic origin of yessotoxin. In: Natural Toxins. Band 5, Nr. 4, Juli 1997, S. 164–167, doi:10.1002/19970504NT7.
  153. Lesley Rhodes, Paul McNabb, Miguel de Salas, Lyn Briggs, Veronica Beuzenberg, Melissa Gladstone: Yessotoxin production by Gonyaulax spinifera. In: Harmful Algae. Band 5, Nr. 2, März 2006, S. 148–155, doi:10.1016/j.hal.2005.06.008.
  154. Rong Yue, Meng Li, Yue Wang, Ying Guan, Jing Zhang, Zhongli Yan, Fufeng Liu, Fuping Lu, Huitu Zhang: Insight into enzyme-catalyzed aziridine formation mechanism in ficellomycin biosynthesis. In: European Journal of Medicinal Chemistry. Band 204, Oktober 2020, S. 112639, doi:10.1016/j.ejmech.2020.112639.
  155. Cornelius G. Friedrich: Physiology and Genetics of Sulfur-oxidizing Bacteria. In: Advances in Microbial Physiology. Band 39. Elsevier, 1997, ISBN 0-12-027739-5, S. 235–289, doi:10.1016/s0065-2911(08)60018-1.
  156. Daniel C. Brune: Sulfur oxidation by phototrophic bacteria. In: Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics. Band 975, Nr. 2, Juli 1989, S. 189–221, doi:10.1016/S0005-2728(89)80251-8.
  157. Harald G. Dill, Berthold Weber, Reiner Botz: Metalliferous duricrusts ("orecretes") - markers of weathering: A mineralogical and climatic-geomorphological approach to supergene Pb-Zn-Cu-Sb-P mineralization on different parent materials. In: Neues Jahrbuch für Mineralogie - Abhandlungen. Band 190, Nr. 2, 1. April 2013, S. 155, doi:10.1127/0077-7757/2013/0235.
  158. David A. Stahl, Susan Fishbain, Michael Klein, Brett J. Baker, Michael Wagner: [No title found]. In: Antonie van Leeuwenhoek. Band 81, Nr. 1/4, 2002, S. 189–195, doi:10.1023/A:1020506415921.
  159. Julie Leloup, Alexander Loy, Nina J. Knab, Christian Borowski, Michael Wagner, Bo Barker Jørgensen: Diversity and abundance of sulfate‐reducing microorganisms in the sulfate and methane zones of a marine sediment, Black Sea. In: Environmental Microbiology. Band 9, Nr. 1, Januar 2007, S. 131–142, doi:10.1111/j.1462-2920.2006.01122.x.
  160. Trine Fredlund Jakobsen, Kasper Urup Kjeldsen, Kjeld Ingvorsen: Desulfohalobium utahense sp. nov., a moderately halophilic, sulfate-reducing bacterium isolated from Great Salt Lake. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Band 56, Nr. 9, 1. September 2006, S. 2063–2069, doi:10.1099/ijs.0.64323-0.
  161. Pascal Philippot, Mark Van Zuilen, Kevin Lepot, Christophe Thomazo, James Farquhar, Martin J. Van Kranendonk: Early Archaean Microorganisms Preferred Elemental Sulfur, Not Sulfate. In: Science. Band 317, Nr. 5844, 14. September 2007, S. 1534–1537, doi:10.1126/science.1145861.
  162. G R Gibson, G T Macfarlane, J H Cummings: Sulphate reducing bacteria and hydrogen metabolism in the human large intestine. In: Gut. Band 34, Nr. 4, 1. April 1993, S. 437–439, doi:10.1136/gut.34.4.437.
  163. a b c Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 4. VCH, Weinheim Deerfield beach (Fla.) 1985, ISBN 978-3-527-20104-4, S. 560–562 (Eintrag zu 'Calcium Sulfate').
  164. a b Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 3. VCH, Weinheim Deerfield beach (Fla.) 1985, ISBN 978-3-527-20103-7, S. 328 (Eintrag zu 'Barium and Barium Compounds').
  165. Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 15. VCH, Weinheim New York 1990, ISBN 978-3-527-20115-0, S. 620 (Eintrag zu 'Magnesium Compounds').
  166. a b c d e Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 7. VCH, Weinheim New York 1986, ISBN 3-527-20107-6.
  167. Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 14. VCH, Weinheim New York 1989, ISBN 3-527-20114-9, S. 591–592 (Eintrag zu 'Iron Compounds').
  168. Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 15. VCH, Weinheim New York 1990, ISBN 3-527-20115-7, S. 410 (Eintrag zu 'Lithium and Lithium Compounds').
  169. a b c d Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 16. VCH, Weinheim New York 1990, ISBN 3-527-20116-5, S. 132–133 (Eintrag zu 'Manganese Compounds').
  170. a b c d Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 17. VCH, Weinheim New York 1991, ISBN 3-527-20117-3, S. 238 (Eintrag zu 'Nickel Compounds').
  171. a b c Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th completely rev. ed Auflage. Band 22. VCH, Weinheim 1993, ISBN 3-527-20122-X, S. 84–91 (Eintrag zu 'Potassium Compounds').
  172. Tomi Gominšek, Andrej Lubej, Ciril Pohar: Continuous precipitation of calcium sulfate dihydrate from waste sulfuric acid and lime. In: Journal of Chemical Technology & Biotechnology. Band 80, Nr. 8, August 2005, S. 939–947, doi:10.1002/jctb.1266.
  173. Zhilong Zhu, You Peng, T. Alan Hatton, Kamal Samrane, Allan S. Myerson, Richard D. Braatz: Crystallization of Calcium Sulphate During Phosphoric Acid Production: Modeling Particle Shape and Size Distribution. In: Procedia Engineering. Band 138, 2016, S. 390–402, doi:10.1016/j.proeng.2016.02.098.
  174. a b c d e f g Rami A. Al-Horani, Umesh R. Desai: Chemical sulfation of small molecules—advances and challenges. In: Tetrahedron. Band 66, Nr. 16, April 2010, S. 2907–2918, doi:10.1016/j.tet.2010.02.015, PMID 20689724, PMC 2913517 (freier Volltext).
  175. Ryo Takano, Shuichi Yoshikawa, Takashi Ueda, Kaeko Hayashi, Susumu Hirase, Saburo Hara: Sulfation of Polysaccharides with Sulfuric Acid Mediated by Dicyclohexylcarbodiimide. In: Journal of Carbohydrate Chemistry. Band 15, Nr. 4, Mai 1996, S. 449–457, doi:10.1080/07328309608005665.
  176. Charles P. Hoiberg, Ralph O. Mumma: Selective hydroxyl sulfation by a dicyclohexylcarbodiimide-mediated reaction. In: Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. Band 177, Nr. 1, Februar 1969, S. 149–151, doi:10.1016/0304-4165(69)90075-0.
  177. Charles P. Hoiberg, Ralph O. Mumma: Preparation of sulfate esters. Reactions of various alcohols, phenols, amines, mercaptans, and oximes with sulfuric acid and dicyclohexylcarbodiimide. In: Journal of the American Chemical Society. Band 91, Nr. 15, Juli 1969, S. 4273–4278, doi:10.1021/ja01043a041.
  178. H. G. Harris, D. M. Himmelblau: Kinetics of the Reaction of Ethylene with Sulfuric Acid. In: Journal of Chemical & Engineering Data. Band 9, Nr. 1, 1. Januar 1964, S. 61–65, doi:10.1021/je60020a018.
  179. Swades Kumar Chaudhuri, Man Mohan Sharma: Absorption of ethylene in concentrated sulfuric acid. In: Industrial & Engineering Chemistry Research. Band 30, Nr. 2, Februar 1991, S. 339–345, doi:10.1021/ie00050a010.
  180. Lyle F. Albright, Mark A. Spalding, James A. Nowinski, Robert M. Ybarra, Roger E. Eckert: Alkylation of isobutane with C4 olefins. 1. First-step reactions using sulfuric acid catalyst. In: Industrial & Engineering Chemistry Research. Band 27, Nr. 3, März 1988, S. 381–386, doi:10.1021/ie00075a003.
  181. Denis Barron, Ragal K. Ibrahim: Synthesis of flavonoid sulfates: 1. stepwise sulfation of positions 3, 7, and 4 using N,N'-dicyclohexylcarbodiimide and tetrabutylammonium hydrogen sulfate. In: Tetrahedron. Band 43, Nr. 22, Januar 1987, S. 5197–5202, doi:10.1016/S0040-4020(01)87695-X.
  182. a b c Marta Correia-da-Silva, Emília Sousa, Madalena M. M. Pinto: Emerging Sulfated Flavonoids and other Polyphenols as Drugs: Nature as an Inspiration: EMERGING SULFATED POLYPHENOLS AS DRUGS. In: Medicinal Research Reviews. Band 34, Nr. 2, März 2014, S. 223–279, doi:10.1002/med.21282.
  183. Martin Cupery: SULFAMIC ACID A NEW INDUSTRIAL CHEMICAL. In: Industrial & Engineering Chemistry. Band 30, Nr. 6, Juni 1938, S. 627–631, doi:10.1021/ie50342a005.
  184. Aleksandr S. Kazachenko, Yuriy N. Malyar, Natalya Yu. Vasilyeva, Valentina S. Borovkova, Noureddine Issaoui: Optimization of guar gum galactomannan sulfation process with sulfamic acid. In: Biomass Conversion and Biorefinery. Band 13, Nr. 11, Juli 2023, S. 10041–10050, doi:10.1007/s13399-021-01895-y.
  185. Organic chemistry of sulfur. Plenum Pr, New York, NY 1977, ISBN 0-306-30740-5, S. 656.
  186. a b c d Hoe-Sup Byun, Linli He, Robert Bittman: Cyclic Sulfites and Cyclic Sulfates in Organic Synthesis. In: Tetrahedron. Band 56, Nr. 37, September 2000, S. 7051–7091, doi:10.1016/S0040-4020(00)00494-4.
  187. a b c Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 8. VCH, Weinheim New York 1987, ISBN 978-3-527-20108-2, S. 495–497 (Eintrag zu 'Dialkyl Sulfates and Alkylsulfuric Acids').
  188. Shuaishuai Yue, Guoping Ding, Ye Zheng, Chunlan Song, Peng Xu, Biao Yu, Jiakun Li: Dimethyl sulfate and diisopropyl sulfate as practical and versatile O-sulfation reagents. In: Nature Communications. Band 15, Nr. 1, 29. Februar 2024, doi:10.1038/s41467-024-46214-x, PMID 38424087, PMC 10904734 (freier Volltext).
  189. J.P. Dusza, J.P. Joseph, Seymour Bernstein: Steroid conjugates IV. The preparation of steroid sulfates with triethylamine-sulfur trioxide. In: Steroids. Band 12, Nr. 1, Juli 1968, S. 49–61, doi:10.1016/S0039-128X(68)80079-0.
  190. Donald J.L. Jones, Rebekah Jukes-Jones, Richard D. Verschoyle, Peter B. Farmer, Andreas Gescher: A synthetic approach to the generation of quercetin sulfates and the detection of quercetin 3′-O-sulfate as a urinary metabolite in the rat. In: Bioorganic & Medicinal Chemistry. Band 13, Nr. 24, Dezember 2005, S. 6727–6731, doi:10.1016/j.bmc.2005.07.021.
  191. Paul W. Needs, Paul A. Kroon: Convenient syntheses of metabolically important quercetin glucuronides and sulfates. In: Tetrahedron. Band 62, Nr. 29, Juli 2006, S. 6862–6868, doi:10.1016/j.tet.2006.04.102.
  192. Shiroh Futaki, Takashi Taike, Takeshi Yagami, Toyoko Ogawa, Tadashi Akita, Kouki Kitagawa: Use of dimethylformamide–sulphur trioxide complex as a sulphating agent of tyrosine. In: J. Chem. Soc., Perkin Trans. 1. Nr. 6, 1990, S. 1739–1744, doi:10.1039/P19900001739.
  193. Socorro Vázquez Campos, Les P. Miranda, Morten Meldal: Preparation of novel O-sulfated amino acid building blocks with improved acid stability for Fmoc-based solid-phase peptide synthesis. In: Journal of the Chemical Society, Perkin Transactions 1. Nr. 5, 22. Februar 2002, S. 682–686, doi:10.1039/b107320f.
  194. Arjun Raghuraman, Muhammad Riaz, Michael Hindle, Umesh R. Desai: Rapid and efficient microwave-assisted synthesis of highly sulfated organic scaffolds. In: Tetrahedron Letters. Band 48, Nr. 38, September 2007, S. 6754–6758, doi:10.1016/j.tetlet.2007.07.100, PMID 18797498, PMC 2084256 (freier Volltext).
  195. Suresh M. Sethna: The Elbs Persulfate Oxidation. In: Chemical Reviews. Band 49, Nr. 1, 1. August 1951, S. 91–101, doi:10.1021/cr60152a002.
  196. Xiao Gang, Yimin Zhu, Henning Birch, Hans Aage Hjuler, Niels J. Bjerrum: Iodine as catalyst for the direct oxidation of methane to methyl sulfates in oleum. In: Applied Catalysis A: General. Band 261, Nr. 1, April 2004, S. 91–98, doi:10.1016/j.apcata.2003.10.039.
  197. a b Iván Ayuso‐Fernández, Miquel A. Galmés, Agatha Bastida, Eduardo García‐Junceda: Aryl Sulfotransferase from Haliangium ochraceum : A Versatile Tool for the Sulfation of Small Molecules. In: ChemCatChem. Band 6, Nr. 4, April 2014, S. 1059–1065, doi:10.1002/cctc.201300853.
  198. a b Michael A. van der Horst, Johan F. T. van Lieshout, Aleksandra Bury, Aloysius F. Hartog, Ron Wever: Sulfation of Various Alcoholic Groups by an Arylsulfate Sulfotransferase from Desulfitobacterium hafniense and Synthesis of Estradiol Sulfate. In: Advanced Synthesis & Catalysis. Band 354, Nr. 18, 14. Dezember 2012, S. 3501–3508, doi:10.1002/adsc.201200564.
  199. Vadim V. Mozhaev, Yuri L. Khmelnitsky, Fernando Sanchez‐Riera, Julie Maurina‐Brunker, Reinhardt A. Rosson, Alan D. Grund: Arylsulfotransferase from Clostridium innocuum —A new enzyme catalyst for sulfation of phenol‐containing compounds. In: Biotechnology and Bioengineering. Band 78, Nr. 5, 5. Juni 2002, S. 567–575, doi:10.1002/bit.10229.
  200. Aloysius F. Hartog, Ron Wever: Sulfation made easy: A new versatile donor for enzymatic sulfation by a bacterial arylsulfotransferase. In: Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. Band 129, Juli 2016, S. 43–46, doi:10.1016/j.molcatb.2016.04.007.
  201. Hiroaki Tagawa: Thermal decomposition temperatures of metal sulfates. In: Thermochimica Acta. Band 80, Nr. 1, Oktober 1984, S. 23–33, doi:10.1016/0040-6031(84)87181-6.
  202. Chunbin Guo, Jingjing Zou, Yinshan Jiang, Tianping Huang, Yan Cheng, Cundi Wei: Thermal activation of coal fly ash by sodium hydrogen sulfate for alumina extraction. In: Journal of Materials Science. Band 49, Nr. 12, Juni 2014, S. 4315–4322, doi:10.1007/s10853-014-8127-1.
  203. a b Rasmus Fehrmann, Niels Holger Hansen, Niels J. Bjerrum: Raman spectroscopic and spectrophotometric study of the system potassium pyrosulfate-potassium hydrogen sulfate in the temperature range 200-450.degree.C. In: Inorganic Chemistry. Band 22, Nr. 26, Dezember 1983, S. 4009–4014, doi:10.1021/ic00168a038.
  204. Fathi Habashi, Shaheer A. Mikhail, Kim Vo Van: Reduction of sulfates by hydrogen. In: Canadian Journal of Chemistry. Band 54, Nr. 23, 1. Dezember 1976, S. 3646–3650, doi:10.1139/v76-524.
  205. John H. Cameron, Thomas M. Grace: Kinetic study of sulfate reduction with carbon. In: Industrial & Engineering Chemistry Fundamentals. Band 22, Nr. 4, November 1983, S. 486–494, doi:10.1021/i100012a021.
  206. Sui-Qin Yang, Yu-Hong Cui, Ya-Yue Liu, Zheng-Qian Liu, Xue-Yan Li: Electrochemical generation of persulfate and its performance on 4-bromophenol treatment. In: Separation and Purification Technology. Band 207, Dezember 2018, S. 461–469, doi:10.1016/j.seppur.2018.06.071.
  207. a b Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 8. VCH, Weinheim New York 1987, ISBN 978-3-527-20108-2, S. 499–502 (Eintrag zu 'Dialkyl Sulfates and Alkylsulfuric Acids').
  208. Barry Martin Trost, Ian Fleming, Steven V. Ley: Comprehensive organic synthesis: selectivity, strategy & efficiency in modern organic chemistry. Band 6. Pergamon press, Oxford New York Seoul 1991, ISBN 0-08-035929-9, S. 206.
  209. Frank H. Stodola: Base-Catalyzed Preparation of Methyl and Ethyl Esters of Carboxylic Acids. In: The Journal of Organic Chemistry. Band 29, Nr. 8, August 1964, S. 2490–2491, doi:10.1021/jo01031a535.
  210. Asit K. Chakraborti, Basak, Vikas Grover: Chemoselective Protection of Carboxylic Acid as Methyl Ester: A Practical Alternative to Diazomethane Protocol. In: The Journal of Organic Chemistry. Band 64, Nr. 21, 1. Oktober 1999, S. 8014–8017, doi:10.1021/jo990035l.
  211. Maurizio Selva, Alvise Perosa: Green chemistry metrics: a comparative evaluation of dimethyl carbonate, methyl iodide, dimethyl sulfate and methanol as methylating agents. In: Green Chemistry. Band 10, Nr. 4, 2008, S. 457, doi:10.1039/b713985c.
  212. Henry Gilman, Nathaniel J. Beaber: THE ALKYLATION OF MERCAPTANS BY MEANS OF SULFONIC ESTERS. In: Journal of the American Chemical Society. Band 47, Nr. 5, Mai 1925, S. 1449–1451, doi:10.1021/ja01682a034.
  213. Howard L. Kane, Alexander Lowy: Reactions of Alkyl Sulfates, Tetraethyl Orthosilicate and Diethyl Carbonate in Friedel-Crafts Syntheses 1,2. In: Journal of the American Chemical Society. Band 58, Nr. 12, Dezember 1936, S. 2605–2608, doi:10.1021/ja01303a064.
  214. Comprehensive organic synthesis: selectivity, strategy, and efficiency in modern organic chemistry. 1st ed Auflage. Band 6. Pergamon Press, Oxford, England ; New York 1991, ISBN 978-0-08-035929-8, S. 503.
  215. a b Comprehensive organic synthesis: selectivity, strategy & efficiency in modern organic chemistry. Band 7. Pergamon Pr, Oxford 1991, ISBN 978-0-08-035929-8, S. 431–432.
  216. E. T. Kaiser, Manuel. Panar, F. H. Westheimer: The Hydrolysis of Some Cyclic Esters of Sulfuric Acid. In: Journal of the American Chemical Society. Band 85, Nr. 5, März 1963, S. 602–607, doi:10.1021/ja00888a028.
  217. Mayer B. Goren, Mary E. Kochansky: Stringent requirement for electrophiles in the facile solvolytic hydrolysis of neutral sulfate ester salts. In: The Journal of Organic Chemistry. Band 38, Nr. 20, Oktober 1973, S. 3510–3513, doi:10.1021/jo00960a016.
  218. Organic chemistry of sulfur. Plenum Press, New York 1977, ISBN 978-0-306-30740-9, S. 658.
  219. Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Wiliam E. Russey: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th completely rev. ed Auflage. Band 25. VCH, Weinheim 1994, ISBN 3-527-20125-4, S. 322 (Eintrag zu 'Strontium and Strontium Compounds').
  220. Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 15. VCH, Weinheim New York 1990, ISBN 978-3-527-20115-0, S. 195–196 (Eintrag zu 'Lead').
  221. Mohammad Hasan Sadeghi, Mohsen Nasr Esfahany: Development of a Safe and Environmentally Friendly Sulfate Process for the Production of Titanium Oxide. In: Industrial & Engineering Chemistry Research. Band 61, Nr. 4, 2. Februar 2022, S. 1786–1796, doi:10.1021/acs.iecr.1c03364.
  222. Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th completely rev. ed Auflage. Band 22. VCH, Weinheim 1993, ISBN 978-3-527-20122-8, S. 618 (Eintrag zu 'Rare Earth Elements').
  223. a b Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 3. VCH, Weinheim Deerfield beach (Fla.) 1985, ISBN 978-3-527-20103-7, S. 330–332 (Eintrag zu 'Barium and Barium Compounds').
  224. K.A. Fattah, A. Lashin: Investigation of mud density and weighting materials effect on drilling fluid filter cake properties and formation damage. In: Journal of African Earth Sciences. Band 117, Mai 2016, S. 345–357, doi:10.1016/j.jafrearsci.2016.02.003.
  225. a b Funda İnceoğlu, Nevin Karamahmut Mermer, Volkan Kırmızı, Gülden Tombaş: Influence of cement with different calcium sulfate phases on cementitious tile adhesive mortars: Microstructure and performance aspects. In: International Journal of Adhesion and Adhesives. Band 104, Januar 2021, S. 102744, doi:10.1016/j.ijadhadh.2020.102744.
  226. a b Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 4. VCH, Weinheim Deerfield beach (Fla.) 1985, ISBN 978-3-527-20104-4, S. 555 (Eintrag zu 'Calcium Sulfate').
  227. Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 4. VCH, Weinheim Deerfield beach (Fla.) 1985, ISBN 978-3-527-20104-4, S. 573–579 (Eintrag zu 'Calcium Sulfate').
  228. Yoshiyuki Kojima, Tamotsu Yasue: Synthesis of large plate-like gypsum dihydrate from waste gypsum board. In: Journal of the European Ceramic Society. Band 26, Nr. 4-5, Januar 2006, S. 777–783, doi:10.1016/j.jeurceramsoc.2005.06.018.
  229. İlker Bekir Topçu: Properties of heavyweight concrete produced with barite. In: Cement and Concrete Research. Band 33, Nr. 6, Juni 2003, S. 815–822, doi:10.1016/S0008-8846(02)01063-3.
  230. Jacquelyn M. Powers, George R. Buchanan, Leah Adix, Song Zhang, Ang Gao, Timothy L. McCavit: Effect of Low-Dose Ferrous Sulfate vs Iron Polysaccharide Complex on Hemoglobin Concentration in Young Children With Nutritional Iron-Deficiency Anemia: A Randomized Clinical Trial. In: JAMA. Band 317, Nr. 22, 13. Juni 2017, S. 2297, doi:10.1001/jama.2017.6846, PMID 28609534, PMC 5815003 (freier Volltext).
  231. Hailey I. Kilian, Huijuan Zhang, Mohammad Mahdi Shiraz Bhurwani, Anoop M. Nilam, Daewoon Seong, Mansik Jeon, Ciprian N. Ionita, Jun Xia, Jonathan F. Lovell: Barium sulfate and pigment admixture for photoacoustic and x-ray contrast imaging of the gut. In: Journal of Biomedical Optics. Band 28, Nr. 08, 10. Februar 2023, doi:10.1117/1.JBO.28.8.082803, PMID 36776721, PMC 9917716 (freier Volltext).
  232. Jinhua Wen, Darrell Sawmiller, Brendan Wheeldon, Jun Tan: A Review for Lithium: Pharmacokinetics, Drug Design, and Toxicity. In: CNS & Neurological Disorders - Drug Targets. Band 18, Nr. 10, 17. Januar 2020, S. 769–778, doi:10.2174/1871527318666191114095249.
  233. Ramadhan Oruch, Mahmoud A. Elderbi, Hassan A. Khattab, Ian F. Pryme, Anders Lund: Lithium: A review of pharmacology, clinical uses, and toxicity. In: European Journal of Pharmacology. Band 740, Oktober 2014, S. 464–473, doi:10.1016/j.ejphar.2014.06.042.
  234. a b George G. Zhanel, Christopher D. Lawson, Heather Adam, Frank Schweizer, Sheryl Zelenitsky, Philippe R. S. Lagacé-Wiens, Andrew Denisuik, Ethan Rubinstein, Alfred S. Gin, Daryl J. Hoban, Joseph P. Lynch, James A. Karlowsky: Ceftazidime-Avibactam: a Novel Cephalosporin/β-lactamase Inhibitor Combination. In: Drugs. Band 73, Nr. 2, Februar 2013, S. 159–177, doi:10.1007/s40265-013-0013-7.
  235. Fahd K. Majiduddin, Isabel C. Materon, Timothy G. Palzkill: Molecular analysis of beta-lactamase structure and function. In: International Journal of Medical Microbiology. Band 292, Nr. 2, 2002, S. 127–137, doi:10.1078/1438-4221-00198.
  236. a b Susan J. Keam: Sulbactam/Durlobactam: First Approval. In: Drugs. Band 83, Nr. 13, September 2023, S. 1245–1252, doi:10.1007/s40265-023-01920-6.
  237. Michael J Satlin: Languid Uptake of Ceftazidime-Avibactam for Carbapenem-Resistant Gram-Negative Infections and Continued Reliance on Polymyxins. In: Clinical Infectious Diseases. Band 72, Nr. 4, 16. Februar 2021, S. 622–625, doi:10.1093/cid/ciaa065.
  238. Suresh P. Sulochana, Muzeeb Syed, Devaraj V. Chandrasekar, Ramesh Mullangi, Nuggehally R. Srinivas: Clinical Drug–Drug Pharmacokinetic Interaction Potential of Sucralfate with Other Drugs: Review and Perspectives. In: European Journal of Drug Metabolism and Pharmacokinetics. Band 41, Nr. 5, Oktober 2016, S. 469–503, doi:10.1007/s13318-016-0335-4.
  239. G. Steffen Paulekuhn, Jennifer B. Dressman, Christoph Saal: Trends in Active Pharmaceutical Ingredient Salt Selection based on Analysis of the Orange Book Database. In: Journal of Medicinal Chemistry. Band 50, Nr. 26, 27. Dezember 2007, S. 6665–6672, doi:10.1021/jm701032y.
  240. Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th completely rev. ed Auflage. Band 22. VCH, Weinheim 1993, ISBN 3-527-20122-X, S. 653 (Eintrag zu 'Reactive Dyes').
  241. a b Guoqiang Cai, Liangxi Sun, Jindan Wu, Jiping Wang: Influence of Nonionic Surfactant on Hydrolysis of Vinyl Sulfone Reactive Dye. In: Journal of Surfactants and Detergents. Band 18, Nr. 6, November 2015, S. 1127–1135, doi:10.1007/s11743-015-1726-2.
  242. a b J. Heyna: Reactive Dyes Containing Vinylsulfonyl Groups. In: Angewandte Chemie International Edition in English. Band 2, Nr. 1, Januar 1963, S. 20–23, doi:10.1002/anie.196300201.
  243. W. J. O'Brien: A Study of Lithopone. In: The Journal of Physical Chemistry. Band 19, Nr. 2, 1. Februar 1915, S. 113–144, doi:10.1021/j150155a002.
  244. Han Gao, Shuxue Yang, Danjun Mao, Mingce Long, Xiaolei Qu: Significant zinc release from widely-used commercial lithopone pigments under solar irradiation. In: Environmental Pollution. Band 292, Januar 2022, S. 118352, doi:10.1016/j.envpol.2021.118352.
  245. a b Anthony D. Covington: Modern tanning chemistry. In: Chemical Society Reviews. Band 26, Nr. 2, 1997, S. 111, doi:10.1039/cs9972600111.
  246. Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 8. VCH, Weinheim New York 1987, ISBN 978-3-527-20108-2, S. 345–346 (Eintrag zu 'Detergents').
  247. Valerie C. Robinson, Wilma F. Bergfeld, Donald V. Belsito, Ronald A. Hill, Curtis D. Klaassen, James G. Marks, Ronald C. Shank, Thomas J. Slaga, Paul W. Snyder, F. Alan Andersen: Final Report of the Amended Safety Assessment of Sodium Laureth Sulfate and Related Salts of Sulfated Ethoxylated Alcohols. In: International Journal of Toxicology. Band 29, 4_suppl, Mai 2010, S. 151S–161S, doi:10.1177/1091581810373151.
  248. José G. Ortiz-Tena, Doris Schieder, Volker Sieber: Carrageenan and More: Biorefinery Approaches with Special Reference to the Processing of Kappaphycus. In: Tropical Seaweed Farming Trends, Problems and Opportunities. Springer International Publishing, Cham 2017, ISBN 978-3-319-63497-5, S. 155–164, doi:10.1007/978-3-319-63498-2_10.
  249. Fritz Ullmann: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 2. VCH, Weinheim Deerfield beach (Fla.) 1985, ISBN 3-527-20102-5, S. 252–255 (Eintrag zu 'Ammonium Compounds').
  250. Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th ed Auflage. Band 15. VCH, Weinheim New York 1990, ISBN 978-3-527-20115-0, S. 623 (Eintrag zu 'Magnesium Compounds').
  251. Fritz Ullmann, Barbara Elvers, Stephen Hawkins, Gail Schulz: Ullmann's encyclopedia of industrial chemistry. 5th completly rev. ed Auflage. Band 21. VCH, Weinheim New York 1991, ISBN 3-527-20121-1, S. 108 (Eintrag zu 'Platinum Group Metals and Compounds').
  252. Frank J Schenck, Patrick Callery, Peter M Gannett, Jonathan R Daft, Steven J Lehotay: Comparison of Magnesium Sulfate and Sodium Sulfate for Removal of Water from Pesticide Extracts of Foods. In: Journal of AOAC INTERNATIONAL. Band 85, Nr. 5, 1. September 2002, S. 1177–1180, doi:10.1093/jaoac/85.5.1177.
  253. R. T. Sheen, H. L. Kahler, E. M. Ross, W. H. Betz, L. D. Betz: Turbidimetric Determination of Sulfate in Water. In: Industrial & Engineering Chemistry Analytical Edition. Band 7, Nr. 4, 1. Juli 1935, S. 262–265, doi:10.1021/ac50096a022.
  254. Eberhard Schweda, Gerhart Jander, Ewald Blasius: Jander/Blasius anorganische Chemie. 1: Theoretische Grundlagen und Qualitative Analyse: mit 290 Abbildungen, 90 Formeln und 71 Tabellen und Poster "Taschenfalter". 19., völlig neu bearbeitete Auflage. Hirzel Verlag, Stuttgart 2022, ISBN 978-3-7776-3009-0, S. 249–250.

Dieser Artikel nimmt am Schreibwettbewerb teil. Bitte hilf mit, ihn zu verbessern!